Chia sẻ bài báo qua Email ĐÁNH GIÁ MỘT SỐ THÀNH PHẦN HOÁ HỌC VÀ HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA MỘT SỐ CHỦNG NẤM Cordyceps militaris LAI HỮU TÍNH
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 03/05/24 Ngày hoàn thiện: 10/06/24 Ngày đăng: 24/06/24Các tác giả
1. Nguyễn Trường Khoa, Viện Di truyền Nông nghiệp Việt Nam2. Nguyễn Đình Việt, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
3. Trần Duy Cường, Viện Di truyền Nông nghiệp Việt Nam
4. Lê Thị Khánh, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
5. Trần Thị Phương Thuý, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
6. Hà Huy Công, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
7. Nguyễn Phương Đại Nguyên, Trường Đại học Tây Nguyên
8. Dương Văn Cường, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
9. Lê Thị Tươi
, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
Tóm tắt
Cordyceps militaris là loài nấm kí sinh trên côn trùng có giá trị cao về dược lí và kinh tế. Quy trình nuôi cấy nhân tạo loài nấm này đã thành công và ngày càng mở rộng, điều này đòi hỏi sự ổn định về chủng giống. Những kết quả nghiên cứu trước đây cho thấy chủng nấm lai từ bào tử đơn tính đảm bảo sự ổn định. Trong nghiên cứu này, các bào tử hữu tính từ các nguồn bố mẹ khác nhau được xác định kiểu gene giới tính MAT1-1-1 và MAT1-2-1 và được lai tạo trên môi trường gạo -nhộng. Hình thái và năng suất quả thể của 8 chủng lai cho thấy phép lai CT1 và CT2 có hình thái quả thể dài và năng suất khô tương ứng đạt 4,4 và 5,0 g/bình. Trong khi đó, dịch chiết quả thể phép lai CT4 có hàm lượng cordycepin, adenosin và phenolic tổng số, cũng như hoạt tính quét gốc tự do DPPH cao gần gấp hai lần so với phép lai CT1 và CT2. Hoạt tính ức chế enzyme tyrosinase của dịch chiết quả thể phép lai CT2 (59,0%) cao hơn các phép lai khác. Kết quả cho thấy các chủng lai CT1, CT2 và CT4 là những chủng tiềm năng cho chiến lược lai tạo phát triển chủng giống mới năng suất và chất lượng cao.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] L. Wang et al., “Genetic variation of Cordyceps militaris and its allies based on phylogenetic analysis of rDNA ITS sequence data,” Fungal Diversity, vol. 31, pp. 147-155, 2008.
[2] S. K. Das et al., “Medicinal uses of the mushroom Cordyceps militaris: current state and prospects,” Fitoterapia, vol. 81, no. 8, pp. 961-968, 2010.
[3] J. M. Sung et al., “Effect of preservation periods and subcultures on fruiting body formation of Cordyceps militaris in vitro,” Mycobiology, vol. 34, no. 4, pp. 196-199, 2006.
[4] H. Lou et al., “Advances in research on Cordyceps militaris degeneration,” Appl Microbiol Biotechnol, vol. 103, pp. 7835-7841, 2019.
[5] J. O. Lee et al., “Stable formation of fruiting body in Cordyceps bassiana,” Micobiology, vol. 35, no. 4, pp. 230-234, 2007.
[6] B. Shrestha et al., “Bipolar heterothallism, a principal mating system of C. militaris in vitro,” Biotechnology and Bioprocess Engineering, vol. 9, pp. 440-446, 2004.
[7] G. Zhang and Y. Liang, “Improvement of fruiting body production in Cordyceps militaris by molecular assessment,” Arch Microbiol, vol. 195, pp. 579-585, 2013.
[8] N. Kang et al., “Development of High Cordycepin-Producing Cordyceps militaris Strains,” Mycobiology, vol. 45, no. 1, pp. 31-38, 2017.
[9] H. H. Lee et al., “Characterization of Newly Bred Cordyceps militaris Strains for Higher Production of Cordycepin through HPLC and URP-PCR Analysis,” J Microbiol Biotechnol, vol. 27, no. 7, pp. 1223-1232, 2017.
[10] D.-O. Kim et al., “Quantification of polyphenolics and their antioxidant capacity in fresh plums,” Agric Food Chem, vol. 51, no. 22, pp. 6509-6515, 2003.
[11] L. J. Zhao et al., “Determination of Total Flavonoids Contents and Antioxidant Activity of Ginkgo biloba Leaf by Near-Infrared Reflectance Method,” Int J Anal Chem, vol. 2018, 2018, Art. no. 8195784.
[12] N. A. Mohammad et al., “Optimization of the antioxidant-rich xanthone extract from mangosteen (Garcinia mangostana L.) pericarp via microwave-assisted extraction,” Heliyon, vol. 5, no. 10, 2019, Art. no. e02571.
[13] A. Prommaban et al., “Comparison of chemical profiles, antioxidation, inhibition of skin extracellular matrix degradation, and anti-tyrosinase activity between mycelium and fruiting body of Cordyceps militaris and Isaria tenuipes,” Pharm Biol, vol. 60, no. 1, pp. 225-234, 2022.
[14] F. S. Reis et al., “The methanolic extract of Cordyceps militaris (L.) Link fruiting body shows antioxidant, antibacterial, antifungal and antihuman tumor cell lines properties,” Food Chem Toxicol, vol. 62, pp. 91-98, 2013.
[15] S. B. Maggirwar et al., “Adenosine acts as an endogenous activator of the cellular antioxidant defense system,” Biochem Biophys Res Commun, vol. 201, no. 2, pp. 508-515, 1994.
[16] K. J. Je ̨drejko, J. Lazur, and B. Muszyn ́ska, “Cordyceps militaris: An Overview of Its Chemical Constituents in Relation to Biological Activity,” Foods, vol. 10, no. 11, 2021, Art. no. 2634.
[17] H. M. Yu et al., “Comparison of Protective Effects between Cultured Cordyceps militaris and Natural Cordyceps sinensis against Oxidative Damage,” J. Agric. Food Chem., vol. 54, pp. 3132-3138, 2006.
[18] J. -Y. Cha and S.-Y. Kim, “Anti-melanogenesis in B16F0 Melanoma Cells by Extract of Fermented Cordyceps militaris Containing High Cordycepin,” Journal of Life Science, vol. 23, no. 12, pp. 1516-1524, 2013.
[19] H. Cui et al., “Antioxidant and tyrosinase inhibitory activities of seed oils from Torreya grandis Fort. ex Lindl,” Biomed Res Int., vol. 2018, 2018, Art. no. 5314320.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.10271
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu