TÁCH DÒNG VÀ XÁC ĐỊNH VÙNG TRÌNH TỰ GENE KHÁNG NGUYÊN MÃ HÓA PROTEIN MÀNG NGOÀI CỦA Vibrio parahaemolyticus N9
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 20/06/24                Ngày hoàn thiện: 16/10/24                Ngày đăng: 17/10/24Tóm tắt
Vibrio parahaemolyticus là một trong những tác nhân gây bệnh nguy hiểm cho động vật thủy sản, trong đó có cá. Các protein màng ngoài đóng vai trò quan trọng trong độc lực của vi khuẩn và là ứng cử viên tiềm năng để phát triển vaccine. Trong nghiên cứu này, độc lực của bốn chủng V. parahaemolyticus được nghiên cứu cho kết quả là chủng V. parahaemolyticus N9 có độc lực mạnh nhất với LD50 là 106,15 CFU/ml. Gene OmpK và OmpU của chủng V. parahaemolyticus N9 mã hóa các protein màng ngoài đã được xác định trình tự khung đọc mở (ORF) có kích thước lần lượt là 819 bp và 1014 bp. Ngoài ra, hai gene mã hóa kháng nguyên OmpK và OmpU đã tách dòng thành công lần lượt trong vector pGEM-T và pCE2 TA. Đây là bước đầu nghiên cứu phát triển vaccine phòng bệnh do V. parahaemolyticus gây ra ở một số loài cá biển.
Từ khóa
Toàn văn:
PDF (English)Tài liệu tham khảo
[1] I. Karunasagar, “Bacteria: Vibrio vulnificus,” Encycl Food Saf, vol. 1, pp. 564-569, 2014.
[2] M. Lopatek, K. Wieczorek, J. Osek, “Antimicrobial resistance, virulence factors, and genetic profiles of Vibrio parahaemolyticus from seafood,” Appl Environ Microbiol, vol. 84, no. 16, 2018, Art. no. e00537-18.
[3] E. G. Oh, K. T. Son, H. Yu, et al., “Antimicrobial resistance of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio alginolyticus strains isolated from farmed fish in Korea from 2005 through 2007,” J Food Prot, vol. 74, pp. 380-386, 2011.
[4] V. Letchumanan, P. Pusparajah, L. T. H. Tan, et al., “Occurrence and antibiotic resistance of Vibrio parahaemolyticus from shellfish in Selangor, Malaysia,” Front Microbiol, vol. 6, 2015, Art. no. 165945.
[5] T. T. T. Vu, T. T. H. Hoang, S. Fleischmann, H. N. Pham, T. L. H. Lai, T. T. H. Cam, L. O. Truong, V. P. Le, D. C. Phung, and T. Alter, “Quantification and antimicrobial resistance of Vibrio parahaemolyticus in retail seafood in Hanoi, Vietnam,” J Food Prot., vol. 85, no. 5, pp. 786-791, 2022.
[6] T. M. H. Truong, T. T. Pham, et al., “Current status of antibiotic usages and resistance of Vibrio paraheamilyticus causing acute hepatopancreatic necrosis disease on shrimp in Quynh Luu, Nghe An,” The Journal of Fisheries Science and Technology, vol. 4, pp. 57-64, 2016.
[7] C. T. Nguyen, T. N. L. Tran, and T. Q. N. Huynh, “Antibiotics resistance abilities of Vibrio parahaemolyticus bacteria that isolated from white leg shrimp (Litopenaeus vannamei) farming areas in Bac Lieu province in 2019,” The Journal of Fisheries Science and Technology, vol. 4, pp. 139-147, 2019.
[8] T. H. Ngo, X. N. Vu, D. L. O. Le, L. Q. Dang, T. T. M. Le, T. T. Pham, V. Q. Dong, and T. B. H. Vu, “The antibiotics resistance of Vibrio spp. isolated from aquaculture water in some areas of Northern Vietnam,” Hue Univ J Sci Nat Sci., vol. 131, no. 1C, pp. 83-93, 2022.
[9] F. Han, R. D. Walker, M. E. Janes, et al., “Antimicrobial susceptibilities of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio vulnificus isolates from Louisiana gulf and retail raw oysters,” Appl Environ Microbiol, vol. 73, 2007, Art. no. 7096.
[10] W. Y. Mo, Z. Chen, H. M. Leung, et al., “Application of veterinary antibiotics in China’s aquaculture industry and their potential human health risks,” Environ Sci Pollut Res Int., vol. 24, pp. 8978-8989, 2017.
[11] T. Defoirdt, P. Sorgeloos, and P. Bossier, “Alternatives to antibiotics for the control of bacterial disease in aquaculture,” Curr Opin Microbiol, vol. 14, pp. 251-258, 2011.
[12] P. Sivasankar, K. R. John, M. G. Rosalind, et al., “Prophylactics in shrimp aquaculture health management: A review,” Journal of Entomology and Zoology Studies, vol. 5, no. 4, pp. 1049-1055, 2017.
[13] S. H. Cai, S. Y. Yao, Y. S. Lu, et al., “Immune response in Lutjanus erythropterus induced by the major outer membrane protein (OmpU) of Vibrio alginolyticus,” Dis Aquat Organ. vol. 90, pp. 63-68, 2010.
[14] Z. Mao, L. Yu, Z. You, et al., “Cloning, expression and immunogenicity analysis of five outer membrane proteins of Vibrio parahaemolyticus zj2003,” Fish Shellfish Immunol, vol. 23, pp. 567-575, 2007.
[15] R. H. Qian, Z. H. Xiao, C. W. Zhang, et al., “A conserved outer membrane protein as an effective vaccine candidate from Vibrio alginolyticus,” Aquaculture, vol. 278, pp. 5-9, 2008.
[16] L. J. Reed and H. Muench, “A simple method of estimating fifty per cent endpoints,” Am J Epidemiol, vol. 27, pp. 493-497, 1938.
[17] S. Khouadja, F. Lamari, and A. Bakhrouf, “Characterization of Vibrio parahaemolyticus isolated from farmed sea bass (Dicentrarchus labrax) during disease outbreaks,” Int Aquat Res vol. 51, no. 5, pp. 1-11, 2013.
[18] T. Inoue, S. Matsuzaki, and S. Tanaka, “Cloning and sequence analysis of Vibrio parahaemolyticus OmpK gene encoding a 26-kDa outer membrane protein, OmpK, that serves as receptor for a broad-host-range vibriophage, KVP40,” FEMS Microbiol Lett., vol. 134, pp. 245-249, 1995.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.10621
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu