Chia sẻ bài báo qua Email SO SÁNH KHẢ NĂNG ỨC CHẾ NẤM BOTRYTIS CINEREA GÂY BỆNH MỐC XÁM TRÊN DÂU TÂY CỦA HỆ NANO TINH DẦU THỰC VẬT MÀNG TANG, TỎI VÀ TIỂU HỒI HƯƠNG
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 07/08/24 Ngày hoàn thiện: 17/12/24 Ngày đăng: 18/12/24Các tác giả
1. Trần Thị Ngọc Mai
, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân2. Lê Xuân Cường, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
3. Vũ Ngọc Bích Đào, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
4. Nguyễn Ngọc Thùy Trang, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
5. Lê Văn Toàn, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
6. Phạm Bảo Ngọc, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
7. Nguyễn Minh Hiệp, Trung tâm Công nghệ bức xạ và Công nghệ sinh học - Viện Nghiên cứu Hạt nhân
Tóm tắt
Botrytis cinerea là loài nấm gây hại trên rất nhiều loại cây trồng khác nhau. Cho tới nay, nhiều nghiên cứu đã cho thấy tinh dầu thực vật có hiệu quả trong ức chế nấm gây bệnh, có tiềm năng thay thế cho thuốc trừ nấm tổng hợp hóa học. Nghiên cứu này so sánh hiệu quả ức chế nấm Botrytis cinerea gây bệnh mốc xám của các tinh dầu thực vật (màng tang, tỏi, tiểu hồi hương) ở dạng nano. Đầu tiên, nấm Botrytis cinerea được phân lập và làm thuần trên môi trường thạch khoai tây. Sau đó, hệ mang nano chứa tinh dầu thực vật (màng tang, tỏi, tiểu hồi hương) được tổng hợp bằng phương pháp đồng hóa tốc độ cao. Kết hợp với sử dụng sóng siêu âm. Hiệu quả ức chế sự phát triển của sợi nấm của các hệ nano chứa tinh dầu thực vật được thực hiện bằng phương pháp đĩa thạch. Kết quả cho thấy, ba hệ nano tinh dầu màng tang, tỏi, tiểu hồi hương đã được tổng hợp thành công có kích thước hạt trung bình nhỏ hơn 120 nm, ổn định sau 2 tháng bảo quản. Kết quả in vitro cho thấy hệ nano tinh dầu tỏi có hiệu quả ức chế nấm tốt nhất, sau đó đến hệ nano màng tang và hệ nano tiểu hồi hương.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] S. Petrasch, S. J. Knapp, J. A. L. V. Kan, and B. Blanco-Ulate, “Grey mould of strawberry, a devastating disease caused by the ubiquitous necrotrophic fungal pathogen Botrytis cinerea,” Molecular Plant Pathology, vol. 20, no. 6, pp. 877-892, 2019.
[2] E. D. Rosero-Hernández, J. Moraga, I. G. Collado, and F. Echeverri, “Natural compounds that modulate the development of the fungus Botrytis cinerea and protect Solanum lycopersicum,” Plants, vol. 8, p. 111, 2019.
[3] P. Fincheira, I. Jofré, J. Espinoza et al., “The efficient activity of plant essential oils for inhibiting Botrytis cinerea and Penicillium expansum: Mechanistic insights into antifungal activity,” Microbiological Research, vol. 277, 2023, Art. no. 127486.
[4] A. Vitoratos, D. Bilalis, A. Karkanis, and A. Efthimiadou, “Antifungal Activity of Plant Essential Oils Against Botrytis cinerea, Penicillium italicum and Penicillium digitatum,” Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, vol. 41, no. 1, pp. 86-92, 2013.
[5] L. Wang, W. Hu, J. Deng et al., “Antibacterial activity of Litsea cubeba essential oil and its mechanism against Botrytis cinerea,” RSC Advances, vol. 9, no. 50, pp. 28987-28995, 2019.
[6] C. K. Daniel, C. L. Lennox, and F. A. Vries, “In vivo application of garlic extracts in combination with clove oil to prevent postharvest decay caused by Botrytis cinerea, Penicillium expansum and Neofabraea alba on apples,” Postharvest Biology and Technology, vol. 99, pp. 88-92, 2015.
[7] M. H. Aminifard and S. Mohammadi, “Essential oils to control Botrytis cinerea in vitro and in vivo on plum fruits,” Journal of the Science of Food and Agriculture, vol. 93, no. 2, pp. 348-353, 2013.
[8] D. Tančinová, Z. Mašková, A. Mendelová, D. Foltinová, Z. Barboráková, and J. Medo, “Antifungal Activities of Essential Oils in Vapor Phase against Botrytis cinerea and Their Potential to Control Postharvest Strawberry Gray Mold,” Foods, vol. 11, no. 19, p. 2945, 2022.
[9] M. B. Allagui, M. Moumni, and G. Romanazzi, “Antifungal Activity of Thirty Essential Oils to Control Pathogenic Fungi of Postharvest Decay,” Antibiotics (Basel), vol. 13, no. 1, p. 28, 2024.
[10] S. Dziri, H. Casabianca, B. Hanchi, and K. Hosni, “Composition of garlic essential oil (Allium sativum L.) as influenced by drying method,” Journal of Essential Oil Research, vol. 26, no. 2, pp. 91-96, 2014.
[11] N. Dehariya, P. Guha, and R. K. Gupta, “Extraction and characterization of essential oil of garlic (Allium sativa L.)” International journal of chemical studies, vol. 9, no. 1, pp. 1455-1459, 2021.
[12] K. Yang, C. F. Wang, C. X. You, et al., “Bioactivity of essential oil of Litsea cubeba from China and its main compounds against Two Stored Product Insects,” Journal of Asia-Pacific Entomology, vol. 17, no. 3, pp. 459-466, 2014.
[13] M. Houshmandzad, A. Sharifzadeh, A. Khosravi, and H. Shokri, “Potential antifungal impact of citral and linalool administered individually or combined with fluconazole against clinical isolates of Candida krusei,” Journal of HerbMed Pharmacology, vol. 11, no. 2, pp. 269-277, 2022.
[14] M. S. M. A. El-Kareem, M. A. Rabbih, A. M. Rashad, and M. EL-Hefny, “Essential oils from fennel plants as valuable chemical products: gas chromatography–mass spectrometry, FTIR, quantum mechanical investigation, and antifungal activity,” Biomass Conversion and Biorefinery, 2024, doi: 10.1007/s13399-024-05675-2.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.10892
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu