PHÂN LẬP, TUYỂN CHỌN CHỦNG VI KHUẨN CÓ HOẠT TÍNH PHÂN GIẢI LÂN KHÓ TAN | Giang | TNU Journal of Science and Technology

PHÂN LẬP, TUYỂN CHỌN CHỦNG VI KHUẨN CÓ HOẠT TÍNH PHÂN GIẢI LÂN KHÓ TAN

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 19/09/24                Ngày hoàn thiện: 17/11/24                Ngày đăng: 19/11/24

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Giang, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên
2. Phạm Thị Tuyết Mai, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên
3. Trịnh Thị Chung, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên
4. Trần Thị Tâm, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên
5. Lê Đức Duy, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên
6. Trần Văn Chí Email to author, Trường Đại học Nông Lâm – ĐH Thái Nguyên

Tóm tắt


Chế phẩm vi sinh ứng dụng trong sản xuất nông nghiệp thường chứa một vài chủng vi sinh vật có hoạt tính sinh học cao, một trong những vi sinh vật được quan tâm nhiều hiện nay là nhóm phân giải lân (PSM- Phosphate Solubilizing Microorganisms). Nghiên cứu này được thực hiện với mục tiêu tìm ra chủng vi khuẩn có khả năng phân giải lân hiệu quả. Từ 08 mẫu đất trồng, tiến hành phân lập trên môi trường NBRIP đã thu được 04 chủng vi khuẩn, tất cả đều có khả năng phân giải lân; trong đó, chủng BGL-16 thể hiện hoạt tính phân giải lân cao nhất, đạt 362,7 mg/L. Khuẩn lạc của chủng BGL-16 có dạng tròn, màu trắng ngả vàng, dẹt, bìa răng cưa, bề mặt trơn, láng khô, tế bào dạng que ngắn, Gram âm và có khả năng di động. Kết quả giải trình tự và so sánh trình tự gen 16S rRNA với các chủng chuẩn công bố trên dữ liệu EzBioCloud cho thấy chủng BGL-16 được coi là ứng viên loài mới thuộc chi Pseudomonas và được đặt tên khoa học là Pseudomonas sp. BGL-16. Qua đánh giá và so sánh với những công bố trước đó cho thấy, chủng Pseudomonas sp. BGL-16 rất có tiềm năng trong nghiên cứu để ứng dụng vào sản xuất chế phẩm vi sinh phục vụ sản xuất nông nghiệp bền vững.

Từ khóa


Lân khó tan; Phân giải; Phân lập; Tuyển chọn; Vi khuẩn

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo


[1] T. Nesme, G. S. Metson, and E. M. Bennett, “Global P flows through agricultural trade,” Glob. Environ, vol. 50, pp. 133-141, 2018.

[2] FAO, Food and Agriculture Organization, The United Nations, Rome, Italy, 2017.

[3] E. T. Alori, B. R. Glick, and O. Babalola, “Microbial phosphorus solubilization and its potential for use in sustainable agriculture,” Front. Microbiol, vol. 8, no. 971, pp. 1-8, 2017, doi: 10.3389/fmicb.2017.00971.

[4] S. C. Kang, G. C. Ha, T. G. Lee, and D. K. Maheshwari, “Solubilization of insoluble inorganic phosphates by a soil inhabiting fungus sp.,” Curr. Sci., vol. 79, pp. 439-442, 2002.

[5] N. K. Le, D. B. Ngo, D. H. Nguyen, and T. T. Le, "Assessing the current status of production and application of microbial products and proposing orientations for the development of microbial technology in agriculture in Vietnam," Journal of Science Technology and Agriculture of Vietnam, vol. 3, no. 112, pp. 98-106, 2020.

[6] M. H. Rashid, M. Kamruzzaman, A. N. A. Haque, M. Krehenbrink, R. S. Meena, S. Kumar, J. S. Bohra, and M. L. Jat, “Soil Microbes for Sustainable Agriculture,” In Sustainable Management of Soil and Environment. Springer: Singapore, 2019, pp. 339-382.

[7] A. K. Saxena, M. Kumar, H. Chakdar et al., “Bacillus species in soil as a natural resource for plant health and nutrition,” Journal of Applied Microbiology, vol. 128, no. 6, pp. 1583-1594, 2020, doi: 10.1111/jam.14506.

[8] V. C. Tran, V. H. La, M. T. Nguyen, T. G. Nguyen, and T. L. A. Hoang, "Selection of highly active bacterial strains for fixing nitrogen and synthesizing indole-3-acetic acid (IAA) from green tea cultivation soil at Tuc Tranh commune, Thai Nguyen province," Journal of Forestry Science and Technology, vol. 12, no. 6, pp. 34-39, 2023.

[9] B. Seiboth et al., “Metabolic engineering of inducer formation for cellulase and hemicellulase gene expression in Trichoderma reesei,” Subcell Biochem., vol. 64, pp. 367-390, 2012.

[10] E. Simo et al., “Development of a low-cost cellulase production process using Trichoderma reesei for Brazilian biorefineries,” Biotechnol. for Biofuels, vol. 10, no. 30, pp. 1-17, 2017, doi: 10.1186/ s13068-017-0717-0.

[11] C. H. Liu, S. K. Lee, I. C. Ou, K. J. Tsai, Y. Lee, Y. H. Chu, Y. T. Liao, and C. T. Liu, “Essential Factors That Affect Bioelectricity Generation by Rhodopseudomonas Palustris Strain PS3 in Paddy Soil Microbial Fuel Cells,” International Journal of Energy Research, vol. 45, pp. 2231-2244, 2021.

[12] J. K. Jansson and K. S. Hofmockel, “The soil microbiome - From metagenomics to metaphenomics,” Current Opinion in Microbiology, vol. 43, pp. 162-168, 2018, doi: 10.1016/j.mib.2018.01.013.

[13] M. Sakarika, J. Spanoghe, Y. Sui, E. Wambacq, O. Grunert, G. Haesaert, M. Spiller, and S. E. Vlaeminck, “Purple non-sulphur bacteria and plant production: benefits for fertilization, stress resistance and the environment,” Microbial Biotechnology, vol. 13, pp. 1336-1365, 2020.

[14] K. Surachat, D. Kantachote, P. Deachamag, and M. Wonglapsuwan, “In silico genomic analysis of Rhodopseudomonas palustris strains revealed potential biocontrol agents and crop yield enhancers,” Biological Control, vol. 176, 2022, Art. no. 105085, doi: 10.1016/j.biocontrol.2022.105085.

[15] S. B. Sharma, R. Z. Sayyed, M. H. Trivedi, and T. A. Gobi, “Phosphate solubilizing microbes: sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils,” Springerplus, vol. 2, pp. 587-600, 2013, doi: 10.1186/2193-1801-2-587.

[16] Ministry of Science and Technology, National Standard TCVN 7538-6:2010 Soil quality - how to collect, process and preserve soil samples? Hanoi: Science and Technology Publishing House, 2010.

[17] T. P. D. Ngo, T. Y. L. Huynh, and X. P. Huynh, "Isolation and selection of lactic acid bacteria with antibacterial properties," Can Tho University Journal of Science, vol. 19a, pp. 176-184, 2011.

[18] D. T. Nguyen, T. Q. Nguyen, V. C. Ha, and X. H. Pham, “Isolation and characterisation of salt tolerant and inorganic phosphate solubilising bacteria from the Mekong River Delta,” Vietnam Journal of Science and Technology, vol. 62, no. 2, pp. 49-53, 2020.

[19] X. T. Nguyen, T. H. Vu, T. B. Nguyen, and H. D. Nguyen, Specialized Microbiology Internship. Agricultural Publishing House, 2007.

[20] T. M. D. Vu, Microbiology internship. Hanoi National University Publishing House, 2001, p. 101.

[21] J. Sambrook and D. W. Russell, Molecular Cloning: a Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001, p. 170.

[22] T. H. Nguyen, T. T. H. Tran, and V. G. Nguyen, “Isolation and selection of bacteria capable of decomposing insoluble phosphate from rice root soil in Hai Duong province,” Vietnam Journal of Science, Technology and Engineering, vol. 60, no. 8, pp. 18-22, 2018.

[23] Q. Zeng, T. Lushi, Z. Yu, S. Yu, W. Wanting, W. Jiangchuan, D. Xiaolei, H. Xuejiao, and M. Bilal, “Isolation and characterization of phosphate-solubilizing bacteria from rhizosphere of poplar in road verge and their antagonistic potential against various phytopathogens,” BMC Microbiology, vol. 23, no. 221, pp. 1-12, 2023.

[24] H. P. Browne, S. C. Forster, and B. O. Anonye, “Culturing of “unculturable” human microbiota reveals novel taxa and extensive sporulation,” Nature, vol. 533, pp. 543-546, 2016.




DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.11143

Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved