ẢNH HƯỞNG CỦA KỸ THUẬT CHUẨN BỊ TINH TRÙNG ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG DÊ BOER TRƯỚC KHI ĐÔNG LẠNH

Trần Thị Thanh Khương; Nguyễn Lâm Khánh Duy; Nguyễn Nhật Tân; Hà Thị Ngọc Trang; Trần Văn Bé Nam

doi:10.34238/tnu-jst.11259

ẢNH HƯỞNG CỦA KỸ THUẬT CHUẨN BỊ TINH TRÙNG ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG DÊ BOER TRƯỚC KHI ĐÔNG LẠNH

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 07/10/24 Ngày hoàn thiện: 06/02/25 Ngày đăng: 07/02/25

Các tác giả

1. Trần Thị Thanh Khương , Trường Đại học Cần Thơ
2. Nguyễn Lâm Khánh Duy, Trường Đại học Cần Thơ
3. Nguyễn Nhật Tân, Trường Đại học Cần Thơ
4. Hà Thị Ngọc Trang, Trường Đại học Cần Thơ
5. Trần Văn Bé Nam, Trường Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Chuẩn bị tinh trùng là một kỹ thuật để lựa chọn tinh trùng chất lượng tốt cho việc đông lạnh tinh trùng và thụ tinh nhân tạo. Nghiên cứu này đã tìm hiểu ảnh hưởng của thời gian bơi lên và lực ly tâm nồng độ lên chất lượng tinh trùng dê Boer. Nghiên cứu được tiến hành trên hai con dê Boer đực, mẫu tinh dịch được thu nhận bằng cách sử dụng âm đạo nhân tạo. Sau đó, tinh dịch được lựa chọn bằng hai phương pháp: bơi lên (30, 45 và 60 phút) và ly tâm gradient với lực (250 g, 300 g, 350 g và 400 g). Kết quả nghiên cứu cho thấy thời gian bơi lên trong 30 phút đã cải thiện đáng kể chất lượng tinh trùng dê với tỷ lệ sống, di động tổng số, di động tiến tới, toàn vẹn của màng và acrosome lần lượt là 92,81%, 84,89%, 53,35%, 62,93% và 97,90% (p < 0,05). Lực ly tâm ở 350 g giúp tinh trùng dê đạt chất lượng tối ưu với tỷ lệ sống, di động tổng số, di động tiến tới, toàn vẹn của màng và acrosome lần lượt là 88,54%, 80,21%, 55,46%, 70,61% và 59,55% (p <0,05). Thời gian bơi lên trong 30 phút và lực ly tâm nồng độ gradient ở 350 g là những lựa chọn tối ưu cho quá trình lựa chọn tinh trùng dê Boer. Nghiên cứu nhằm nhấn mạnh việc tối ưu hóa các quy trình chuẩn bị tinh trùng dê, có ý nghĩa to lớn đối với các nỗ lực nhân giống và bảo tồn động vật.

Từ khóa

Dê Boer; Ly tâm gradient nồng độ; Thụ tinh; Tinh trùng; Swim-up

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] V. D. Nguyen, C. O. Nguyen, T. M. L. Chau, D. Q. D. Nguyen, A. T. Han, and T. T. H. Le, “Goat Production, Supply Chains, Challenges, and Opportunities for Development in Vietnam: A Review,” Animals (Basel), vol. 13, no. 15, p. 2546, 2023.

[2] J. P. C. Greyling, “Reproduction traits in the Boer goat doe,” Small Ruminant Research, vol. 36, no. 2, pp. 171-177, 2000.

[3] L. Ngoma, L. Kambulu, and M. Mwanza, “Factors Influencing Goat’s Semen Fertility and Storage A Literature Review,” Journal of Human Ecology, vol. 561, no. 2, pp. 114-125, 2016

[4] K. A. El-Battawy, “Preservation of goat semen at 5°C with emphasis on its freezability and the impact of melatonin,” International Journal of Veterinary Science, vol. 5, no. 2, pp. 035-038, 2019.

[5] M. Nijs and W. Ombelet, “Cryopreservation of human sperm,” Human fertility, vol. 4, no. 3, pp. 158-163, 2001.

[6] W. V. Holt, M. Hernandez, L. Warrell, and N. Satake, “The long and the short of sperm selection in vitro and in vivopp. swim-up techniques select for the longer and faster swimming mammalian sperm,” Journal of Evolutionary Biology, vol. 23, no. 3, pp. 598-608, 2010.

[7] C. J. D. Jonge, “Sperm Preparation for IVF and ICSI,” In D. K. Gardner, editor, Handbook of In Vitro Fertilization, Fourth Edition, pp. 131-142, 2017.

[8] K. Eun-Kyung, K. Eun-Ha, K. Eun-Ah, L. Kyung-Ah, S. Ji-Eun, and K. Hwang, “Comparison of the effect of different media on the clinical outcomes of the density-gradient centrifugation/swim-up and swim-up methods,” Clinical and Experimental Reproductive Medicine, vol. 42, no. 1, pp. 22-29, 2015.

[9] Y. Oguz, I. Guler, A. Erdem, et al., “The effect of swim-up and gradient sperm preparation techniques on deoxyribonucleic acid (DNA) fragmentation in subfertile patients,” Journal of assisted reproduction and genetics, vol. 35, pp. 1083-1089, 2018.

[10] I. Amiri, M. Ghorbani, and S. Heshmati, “Comparison of the DNA fragmentation and the sperm parameters after processing by the density gradient and the swim-up methods,” Journal of clinical and diagnostic researchpp, vol. 6, no. 9, pp. 1451, 2012.

[11] V. Jayaraman, D. Upadhya, P. K. Narayan, and S. K. Adiga, “Sperm processing by swim-up and density gradient is effective in elimination of sperm with DNA damage,” Journal of assisted reproduction and genetics, vol. 29, pp. 557-563, 2012.

[12] E. V. A. Åkerlöf, B. Fredricson, O. Gustafsson, et al., “Comparison between a swim‐up and a Percoll gradient technique for the separation of human spermatozoa,” International journal of andrology, vol. 10, no. 5, pp. 663-669, 1987.

[13] S. W. Kim, B. C. Jee, S. K. Kim, and S. H. Kim, “Sperm DNA fragmentation and sex chromosome aneuploidy after swim-up versus density gradient centrifugation,” Clinical and Experimental Reproductive Medicine, vol. 44, no. 4, p. 201, 2017.

[14] K. Amano, S. Oigawa, K. Ichizawa, et al., “Swim‐up method is superior to density gradient centrifugation for preserving sperm DNA integrity during sperm processing,” Reproductive Medicine and Biology, vol. 23, no. 1, p. e12562, 2024.

[15] N. C. Alves, S. A. Diniz, R. N. Viegas, et al., “Action of swim-up and caffeine on equine frozen sperm,” Animal Reproduction, vol. 19, no. 4, p. e20220056, 2022.

[16] F. Butt and M. A. Chohan, “Comparative efficacy of density gradient and swim-up methods of semen preparation in intrauterine insemination cycles,” Journal of the Pakistan Medical Association, vol. 66, no. 8, pp. 932-937, 2016.

[17] S.C. Karabekir and A. Özgörgülü, “Evaluation of semen samples before and after ‘Swim-up’ technique with mitotracker,” Bangladesh Journal of Medical Science, vol. 18, no. 03, pp. 479-483, 2019.

[18] J. Santiago-Moreno, M. C. Esteso, C. Castaño, et al., “Seminal plasma removal by density-gradient centrifugation is superior for goat sperm preservation compared with classical sperm washing,” Animal Reproduction Science, vol. 181, pp. 141-150, 2017.

[19] H. Atalla, K. Demir, R. Arici, N. Ersoy, A. Eser, and E. I. Armutak, “The effect of swim-up and Percoll gradient separation on ram sperm parameters, DNA integrity and embryo development,” Revue de Medecine Veterinaire, vol. 170, no. 4-6, pp. 87-94, 2019.

[20] NRC, National research councilpp. nutrient requirements of small ruminants, National Academy Press, Washington D.C., 2007.

[21] CTU Animal Ethics Committee, Letter of approval CTU-AEC24013, Can Tho University, Vietnam, 2024.

[22] V. Magdanz, S. Boryshpolets, C. Ridzewski, B. Eckel, and K. Reinhardt, “The motility-based swim-up technique separates bull sperm based on differences in metabolic rates and tail length,” PLOS ONE, vol. 14, no. 10, p. e0223576, 2019.

[23] S. G. Balachandran and G. Sumathy, “Sperm preparation-swim-up, density gradient, microfluidic sperm sorter method and magneticactivated cell sorting method - A comparative analysis,” Journal of Pharmaceutical Negative Results, vo. 13, no. 1, pp. 517-522, 2022.

[24] World Health Organization, WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen, 5th ed, World Health Organization, Genevapp, 2010.

[25] L. K. D. Nguyen, T. L. Bui, P. N. V. Ngo, and T. T. K. Tran, “Effects of storage medium and storage time on the goat spermatozoa quality,” TNU Journal of Science and Technology, vol. 229, no. 05, pp. 227-234, 2024.

[26] T. T. K. Tran, L. K. D. Nguyen, T. K. N. Nguyen, V. B. N. Tran, N. D. T. Duong, and P. T. Lam, “Cryopreservation of goat spermatozoa in the Mekong Delta region of Vietnam: evaluating cryoprotectant effectiveness,” Veterinary Integrative Sciences, vol. 22, no. 1, pp. 131-140, 2024.

[27] S. Ramu and R. S. Jeyendran, “The hypo-osmotic swelling test for evaluation of sperm membrane integrity,” Methods in Molecular Biology, vol. 927, pp. 21-25, 2013.

[28] K. D. Prihantoko, F. Yuliastuti, H. Haniarti, et al., “The acrosome integrity examination of post-thawed spermatozoa of several ongole grade bull in indonesia using giemsa staining method,” In IOP conference seriespp - Earth and environmental science, vol. 478, no. 1, p. 012042, 2020.

[29] G. Hernández-Silva, A. S. López-Torres, I. Maldonado-Rosas, et al., “Effects of Semen Processing on Sperm Function: Differences between Swim-up and Density Gradient Centrifugation,” The world journal of men's health, vol. 39, no. 4, pp. 740-749, 2021.

[30] S. K. Adiga and P. Kumar, “Influence of Swim-up Method on the Recovery of Spermatozoa from Different Types of Semen Samples,” Journal of Assisted Reproduction and Genetics, vol. 18, no. 3, pp. 160-164, 2001.

[31] R. R. Henkel and W. B Schill, “Sperm preparation for ART,” Reproductive Biology and Endocrinology, vol. 1, p. 108, 2013.

[32] W. Ombelet, N. Dhont, A. Thijssen, E. Bosmans, and T. Kruger, “Semen quality and prediction of IUI success in male subfertility: a systematic review,” Reproductive biomedicine online, vol. 28, no. 3, pp. 300-309, 2014.

[33] T. T. K. Tran, L. K. D. Nguyen, T. H. Nguyen, K. N. Phan, and N. D. T. Duong, “Improving indigenous Vietnamese Black Rabbit frozen sperm qualitypp. the role of glycine and sperm selection methods,” World Rabbit Science, vol. 31, no. 4, pp. 229-236, 2023.

[34] P. Yodmingkwan, S. Guntaprom, J. Jaksamrit, and K. Lertchunhakiat, “Effects of Extenders on Fresh and Freezing Semen of Boer Goat,” Agriculture and Agricultural Science Procedia, vol. 11, pp. 125-130, 2016.

[35] C. C. S. Olivares, J. M. G. Souza-Fabja, J. F. Fonseca, et al., “Comparison of Different Sperm Selection Techniques in Ram Frozen-Thawed Sperm,” Acta Scientiae Veterinariae, vol. 45, p. 1431, 2017.

[36] H. Pertoft, “Fractionation of cells and subcellular particles with Percoll,” Journal of Biochemical and Biophysical Methods, vol. 44, pp. 1-30, 2000.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.11259

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ