Chia sẻ bài báo qua Email ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG BỔ SUNG VI LƯỢNG (Fe, Zn, Cu, Mn, Mo, Co, B) ĐẾN NĂNG SUẤT, HÌNH THÁI VÀ HÀM LƯỢNG HOẠT CHẤT CỦA CHỦNG NẤM Cordyceps militaris
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 22/10/24 Ngày hoàn thiện: 06/02/25 Ngày đăng: 07/02/25Các tác giả
1. Nguyễn Đức Hiếu
, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội2. Nguyễn Trường Khoa, Viện Di truyền Nông nghiệp Việt Nam
3. Nguyễn Thị Trà My, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
4. Nguyễn Thị Minh Ánh, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
5. Lê Thị Linh, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
6. Trần Thị Phương Thuý, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
7. Hà Huy Công, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
8. Lê Thị Tươi, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
Tóm tắt
Nấm Cordyceps militatis là loại nấm kí sinh côn trùng, chứa nhiều hoạt chất có lợi cho sức khoẻ, được nuôi trồng nhân tạo phổ biến nhằm đáp ứng nhu cầu tiêu dùng của con người. Yếu tố dinh dưỡng có thể ảnh hưởng đến năng suất và chất lượng của nấm C. militaris. Trong nghiên cứu này, công thức môi trường gạo-nhộng có bổ sung vi lượng ((iron (Fe), zinc (Zn), copper (Cu), manganese (Mn), molybdenum (Mo), cobalt (Co), và boron (B)) đến năng suất, hình thái và hàm lượng hoạt chất cordycepin và adenosin của hai chủng nấm (K7 và BioG) đã được đánh giá. Công thức môi trường gạo-nhộng cơ bản (đối chứng) được bổ sung lần lượt từng thành phần dinh dưỡng (công thức từ C2 đến C5) gồm vi lượng 2 mL/L, peptone 5 g/L, nước luộc khoai tây-giá đỗ 100 g/L mỗi loại, sucrose 40 g/L. Kết quả cho thấy từng thành phần dinh dưỡng bổ sung đều có ảnh hưởng tích cực đến việc tích luỹ sinh khối khô ở cả hai chủng nấm nghiên cứu với kết quả cao nhất đạt 5,76 g/bình (K7) và 6,00 g/bình (BioG), tỉ lệ khối lượng khô/tươi tương ứng đạt 17,4% và 16,6% ở công thức C5-công thức được thiết kế với việc bổ sung đầy đủ các yếu tố dinh dưỡng nghiên cứu. Công thức C4 và C5 làm tăng chiều dài và đường kính quả thể của chủng BioG và K7 tương ứng. Hàm lượng cordycepin và adenosine của chủng K7 tăng khi bổ sung yếu tố vi lượng vào môi trường cơ bản, với hàm lượng tương ứng đạt 1,84 mg/mL và 0,55 mg/mL (công thức C2). Những kết quả nghiên cứu này cho thấy việc bổ sung vi lượng vào môi trường nuôi cấy có thể là cách tiếp cận phù hợp trong việc cải thiện hình thái, năng suất và hàm lượng hoạt chất của chủng nấm C. militaris.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] L. Wang, W. M. Zhang, and B. Hu, “Genetic variation of Cordyceps militaris and its allies based on phylogenetic analysis of rDNA ITS sequence data,” Fungal Divers, vol. 31, pp. 147-155, 2008.
[2] H. H. Lee, S. Lee, K. Lee, Y. S. Shin, H. Kang, and H. Cho, “Anti-cancer effect of Cordyceps militaris in human colorectal carcinoma RKO cells via cell cycle arrest and mitochondrial apoptosis,” DARU, Journal of Pharmaceutical Sciences, vol. 23, no. 1, p. 35, 2015.
[3] G. Das, H. S. Shin, G. Leyva-Gómez, M. D. L. Prado-Audelo, H. Cortes, Y. D. Singh, M. K. Panda, A. P. Mishra, M. Nigam, S. Saklani, P. K. Chaturi, M. Martorell, N. Cruz-Martins, V. Sharma, N. Garg, R. Sharma, and J. K. Patra, “Cordyceps spp.: A Review on Its Immune-Stimulatory and Other Biological Potentials,” Frontiers in Pharmacology, vol. 11, 2021, Art. no. 602364.
[4] A. B. Reiss, D. Grossfeld, L. J. Kasselman, H. A. Renna, N. A. Vernice, W. Drewes, J. Konig, S. E. Carsons, and J. DeLeon, “Adenosine and the Cardiovascular System,” American Journal of Cardiovascular Drugs, vol. 19, no. 5, pp. 449-464, 2019.
[5] C. Corciulo, M. Lendhey, T. Wilder, H. Schoen, A. S. Cornelissen, G. Chang, O. D. Kennedy, and B. N. Cronstein, “Endogenous adenosine maintains cartilage homeostasis and exogenous adenosine inhibits osteoarthritis progression,” Nature Communications, vol. 8, 2017, Art. no. 15019.
[6] T. M. H. Nguyen and V. T. Bui, “Cultivation of Cordyceps militaris on artificial substrates and silkworm pupae,” Forestry science and Technology Journal, vol. 4, pp. 10-16, 2017.
[7] T. B. Do, H. N. Vu, T. T. Ma, V. H. Ha, M. C. Nguyen, H. T. Nguyen, and V. C. Duong, “Evaluation on cultivation techniques to fruiting body formation of Cordyceps militaris,” TNU Journal of Science and Technology, vol. 161, no. 01, pp. 113-118, 2017.
[8] T. T. Tran and V. V. Le, “Research on suitable medium for cultivation of Cordyceps militaris on hosts,” Can Tho University Science Journal, vol. 56, no. 5B, pp. 125-134, 2020.
[9] S. Y. Kim, B. Shrestha, G. H. Sung, S. K. Han, and J. M. Sung, “Optimum conditions for artificial fruiting body formation of Cordyceps cardinalis,” Mycobiology, vol. 38, no. 2, pp. 133-136, 2010.
[10] T. C. Wen, G. R. Li, J. C. Kang, C. Kang, and K. D. Hyde, “Optimization of solid-state fermentation for fruiting body growth and cordycepin production by Cordyceps militaris,” Chiang Mai J Sci, vol. 4, no. 4, pp. 858-872, 2014.
[11] C. H. Dong and Y. J. Yao, “Nutritional requirements of mycelial growth of Cordyceps sinensis in submerged culture,” J Appl Microbiol, vol. 99, no. 3, pp. 483-492, 2005.
[12] I. B. Prasher and G. S. Rawla, “Trace element requirements of some members of Saprolegniaceae”, In Rawla (Ed) Advances in Mycology, Panjab University, pp. 224-236, 1988.
[13] K. Simerjit, “Effect of carbon, nitrogen and trace elements on growth and sporulation of the Termitomyces striatus (Beeli) Heim,” Journal of Yeast and Fungal Research, vol. 2, no. 9, pp. 127-131, 2011.
[14] S. H. Hutner, L. Provasoli, A. Schatz, and C. P. Haskins, “Some approaches to the study of the role of metals in the metabolism of microorganisms,” Proc Amer Philosophical Soc, vol. 94, pp. 152-170, 1950.
[15] N. Kang, H. H. Lee, I. Park, and Y. S. Seo, “Development of high cordycepin-producing Cordyceps militaris strains,” Mycobiology, vol. 45, no. 1, pp. 31-38, 2017.
[16] M. D. Nguyen, T. P. D. Nguyen, T. T. H. Tran, D. K. Tran, and H. T. Khuat, “Effect of the nutritional medium and environment on artificial fruiting body formation of Cordyceps militaris,” Vietnam Journal of Science and Technology, vol. 20, no. 9, pp. 6-12, 2017.
[17] A. W. Hayes, P. W. Elwanda, and A. K. Patricia, “Environmental and nutritional factors affecting the production of rubratoxin B by Penicillium rubrum stoll,” Appl Microbiol, vol. 20, pp. 469-473, 1970.
[18] M. O. Garraway and R. C. Evans, Fungal Nutrition and Physiology, New York: Wiley, p. 401, 1984.
[19] K. J. Waldron, J. C. Rutherford, D. Ford, and N. J. Robinson, “Metalloproteins and metal sensing,” Nature, vol. 460, no. 7257, pp. 823-830, 2009.
[20] S. Wehmeier, E. Morrison, A. Plato, A. Raab, J. Feldmann, T. Bedekovic, D. Wilsom, and A. C. Brand, “Multi trace element profiling in pathogenic and non-pathogenic fungi,” Fungal Biol, vol. 124, no. 5, pp. 516-524, 2020.
[21] M. Ilmi, L. K. Putri, A. A. K. Muhamad, A. Cholishoh, and S. A. Ardiansyah, “Use of mung bean sprout (Tauge) as alternative fungal growth medium,” J. Phys.: Conf. Ser., vol. 1241, 2019, Art. no. 012015.
[22] T. T. Le, T. H. Le, T. K. Cao, D. H. Nguyen, T. H. Do, T. T. M. Le, and T. B. H. Vu, “Effect of coordination nutritional ingredients on the development and cordycepin, adenosin production of Cordyceps militaris,” HNUE Journal of Science, Natural Science, vol. 66, no. 4F, pp. 82-91, 2021.
[23] H. N. Vu, T. T. Ma, V. P. Tran, H. T. Nguyen, and V. C. Duong, “Effect of agar plate method on the formation of Cordyceps militaris fruiting body,” Vietnam Journal of Science and Technology, vol. 62, no. 2, pp. 40-43, 2019.
DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.11373
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu