Chia sẻ bài báo qua Email SÀNG LỌC MỘT SỐ THỰC VẬT THU HÁI Ở KIÊN GIANG CÓ HOẠT TÍNH KHÁNG VI KHUẨN GÂY BỆNH TRÊN ĐỘNG VẬT THỦY SẢN
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 27/03/25 Ngày đăng: 02/12/25Các tác giả
1. Hồng Mộng Huyền
, Trường Đại học Kiên Giang2. Nguyễn Thị Phường, Trường Đại học Kiên Giang
3. Phạm Trọng Nghĩa, Trường Đại học Kiên Giang
4. Lại Thị Mỹ Uyên, Trường Đại học Cần Thơ
5. Nguyễn Trường Duy, Trường Đại học Cần Thơ
6. Hồng Phúc Ngươn, Trung tâm xúc tiến đầu tư và hỗ trợ doanh nghiệp Cà Mau
7. Nguyễn Thị Trúc Linh, Trường Đại học Trà Vinh
Tóm tắt
Nghiên cứu sản xuất chế phẩm sinh học từ cây thảo dược để phòng trừ dịch bệnh trong nuôi trồng thủy sản theo hướng an toàn sinh học đang được quan tâm. Hoạt tính kháng khuẩn của chín loài thực vật hoang dại hoặc trồng phổ biến ở huyện Vĩnh Thuận và An Biên, tỉnh Kiên Giang được khảo sát và sàng lọc. Chất chiết từ lá Bình bát (Annona glabra) có hoạt tính kháng khuẩn cao nhất, đạt mức nhạy đối với Aeromonas hydrophyla, Streptococcus iniae và Vibrio Parahaemolyticus (đường kính kháng khuẩn > 14 mm). Thử nghiệm xác định nồng độ ức chế tối thiểu (MIC) và nồng độ diệt khuẩn tối thiểu (MBC) cho thấy cao chiết lá Bình bát có khả năng diệt khuẩn đối với cả 3 loại vi khuẩn trên. Thành phần có trong cao chiết lá Bình bát gồm có phenols tổng là 119,5±2,2 mg GAE/g, flavonoids tổng là 256,4±1,8 mg QE/g và alkaloids tổng là 137,2±2,3 mg AE/g. Nghiên cứu cho thấy lá Bình Bát là một trong những nguồn nguyên liệu tiềm năng để sản xuất chế phẩm phục vụ xu hướng nuôi trồng thủy sản an toàn sinh học.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] Z. Zhang, Q. Deng, L. Wan, X. Cao, Y. Zhou, and C. Song, “Bacterial communities and enzymatic activities in sediments of long-term fish and crab aquaculture ponds,” Microorganisms, vol. 9, no. 501, pp. 1-12, 2021.
[2] T. H. O. Dang, “Biochemical characters and ribotyping profiles of Aeromonas bacteria isolated from diseased fishes in aquaculture in the Mekong River Delta, Vietnam,” Can Tho University Journal of Science, vol. 5, pp. 85-94, 2006.
[3] T. M. T. Dang, T. T. C. Tran, C. P. L. Nguyen, D. H. Nguyen, and T. H. O. Dang, “Histopathology of Climbing perch (Anabas testudineus) infected with Aeromonas hydrohila and Streptococcus sp.,” Can Tho University Journal of Science, vol. 22c, pp. 183-193, 2012.
[4] T. H. O. Dang, Q. N. Truong, and D. H. Nguyen, “Isolation and pathogenicity of Aeromonas hydrophila on rice eel (Monopterus albus),” Can Tho University Journal of Science, vol. 22c, pp. 173-182, 2012.
[5] M. D. Pham, N. T. Tran, and T. T. H. Tran, “An investigation on pathogen infection to cultured snakehead (Channa striata) in An Giang and Dong Thap province,” Can Tho University Journal of Science, vol. 21b, pp. 124-132, 2012.
[6] M. D. Pham, N. T. Tran, and K. Hata, “Aeromonas hydrophila Infection in Fingerlings of Snakehead Channa striata in Viet Nam,” Fish Pathology, vol. 48, pp. 48-51, 2013.
[7] W. Agnew and A. C. Barnes, “Streptococcus iniae: An aquatic pathogen of global veterinary significance and a challenging candidate for reliable vaccination,” Veterinary Microbiology, vol. 122, no. 1-2, pp. 1-15, 2007.
[8] T. V. Huynh, D. H. Q. Vu, H. D. Nguyen and H. I. Wergeland, “Experimental Streptococcus iniae infecton in barramundi (Lates calcarifer) cultured in Vietnam,” International Journal of Aquatic Science, vol. 4, no.1, pp. 3-12, 2013.
[9] T. D. Tu, K. D. Nguyen, and T. N. T. Huynh, “Streptococcus iniae as a causative gent of “dark body” disease in limbing perch (Anabas testudineus) in the Mekong Delta,” Can Tho University Journal of Science, vol. 26, pp. 96-103, 2013.
[10] L. Tran, L. Nunan, R. M. Redman, L. L. Mohney, C. R. Pantoja, K. Fitzsimmons, and D.V. Lightner, “Determination of the infectious nature of the agent of acute hepatopancreatic necrosis syndrome affecting penaeid shrimp,” Diseases of Aquatic Organisms, vol. 105, pp. 45–55, 2013.
[11] H. Kondo, P. T. Van, L. T. Dang, and I. Hirono, “Draft genome sequences of non-Vibrio parahaemolyticus acute hepatopancreatic necrosis disease strain KC13.17.5, isolated from diseased shrimp in Vietnam,” Genome Announc, vol. 3, pp. 1-15. 2015.
[12] D. V. Lightner, C. R. Redman B. L. Pantoja, L.M. Noble, and T. Loc, “Documentation of an Emerging Disease (Early Mortality Syndrome) in SE Asia and Mexico,” OIE Reference Laboratory for Shrimp Diseases, Department of Veterinary Science & Microbiology, School of Animal and Comparative Biomedical Sciences, 2013.
[13] T. Citarasu, “Herbal biomedicines: a new opportunity for aquaculture industry,” Aquaculture International, vol. 18, no. 3, pp. 403-414, 2010.
[14] S. Direkbusarakom, “Application of Medicinal Herbs to Aquaculture in Asia,” Walailak Journal of Science and Technology, vol. 1, pp. 7–14, 2004.
[15] S. B. Chakraborty and C. Hancz, “Application of phytochemicals as immunostimulant, antipathogenic and antistress agents in finfish culture,” Reviews in Aquaculture, vol. 3, pp. 103–119, 2011.
[16] R. Harikrishnan, C. Balasundaram, and M. S. Heo, “Impact of plant products on innate and adaptive immune system of cultured finfish and shellfish,” Aquaculture, vol. 317, pp. 1–15, 2011.
[17] S. B. R. Castro, C. A. G. Leal, F. R. Freire, D. A. Carvalho, D. F. Oliveira, and H. C. P. Figueiredo, “Antibacterial activity of plant extracts from Brazil against fish pathogenic bacteria,” Brazilian Journal of Microbiology, vol. 39, no. 4, pp. 756-760, 2008.
[18] L. Roomiani, M. Soltani, A. Akhondzadeh, A. Basti, A. Mahmoodi, and F. Yadollahi, “Evaluation of the chemical composition and in vitro antimicrobial activity of Rosmarinus officinalis, Zataria multiflora, Anethum graveolens and Eucalyptus globulus against Streptococcus iniae; the cause of zoonotic disease in farmed fish,” Iranian Journal of Fisheries Sciences, vol. 12, no. 3, pp. 702-716, 2013.
[19] K. P. N. Phung, Fractionation Method for Organic Compounds. Viet Nam National University Ho Chi Minh Press, 2007, p. 528.
[20] H. H. Mohammed and C. R. Arias, “Protective efficacy of Nigellasativa seeds and oil against columnaris disease in fishes,” Journal of Fish Diseases, vol. 39, no. 6, pp. 693-703, 2016.
[21] M. Najiah, M. Nadirah, Z. Arief, S. Zahrol, L. W. Tee, A. D. Ranzi, and R. J. Aida, “Antibacterial activity of Malaysian edible herbs extracts on fish pathogenic bacteria,” Research Journal of Medicinal Plant, vol. 5, no. 6, pp. 772-778, 2011.
[22] J. Oonmetta-Aree, T. Suzuki, P. Gasaluck, and G. Eumkeb, “Antimicrobial properties and action of galangal (Alpinia galanga Linn.) on Staphylococcus aureus,” LWT-Food Science and Technology, vol. 39, no. 10, pp. 1214-1220, 2006.
[23] R. N. S. Yadav and M. Agarwala, “Phytochemical analysis of some medicinal plants,” Journal of Phytology, vol. 3, no. 12, pp. 10-14, 2011.
[24] V. L. Singleton, R. M. Orthofer & R. M. LamuelaRaventos, “Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent,” Methods Enzymol, vol. 299, pp. 152-178, 1999.
[25] C. Chang, M. Yang, H. Wen, and J. Chem, “Estimation of flavonoid total content in propolis by two complementary colorimetric methods,” Journal of Food and Drug Analisism, vol. 10, no. 3, pp. 178-182, 2002.
[26] F. Shamsa, H. Monsef, R. Ghamooshi, and M. Verdianrizi, “Strectrophotometric determination of total alkaloids in some Iranian medicinal plants,” Thai Journal of Pharmaceutical Sciences, vol. 32, pp. 17-20, 2008.
[27] K. D. Huynh, “Antibacterial activity of some medicinal plants in the Mekong Delta of Viet Nam against common fish pathogens,” Can Tho University Journal of Science, vol. 15b, pp. 222-229, 2010.
[28] P. Rattanachaikunsopon and P. Phumkhachorn, “Prophylactic effect of Andrographis paniculata extracts against Streptococcus agalactiae infection in Nile tilapia (Oreochromis niloticus),” Journal of Bioscience & Bioengineering, vol. 107, no. 5, pp. 579-582, 2009.
[29] D. S. K. Sivagnanam, M. Ram, and M. R. K. Rao, “In vitro inhibitory effects of Annona glabra on selected human pathogens,” Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, vol. 8, no. 1, pp. 1-6, 2016.
[30] N. Canillac and A. Mourey, “Antibacterial activity of the essential oil of Picea excelsa on Listeria, Staphylococcus aureus and coliform bacteria,” Food Microbiology, vol. 18, no. 3, pp. 261-268, 2001.
[31] B. Das, S. K. Dash, D. Mandal, T. Ghosh, S. Chattopadhyay, S. Tripathy, and S. Roy, “Green synthesized silver nanoparticles destroy multidrug resistant bacteria via reactive oxygen species mediated membrane damage,” Arabian Journal of Chemistry, vol. 10, no. 6, pp. 862-876, 2015.
[32] C. Kamel, “Tracing modes of action and the roles of plant extracts in nonruminants,” In: Garmsworthy, P.C. and Wiseman, J., Eds., Recent Advances in Animal Nutrition, Nottingham University Press, Nottingham, pp. 135-150, 2001.
[33] T. T. H. Tran, C. T. Nguyen, C. D. Tran, and T. L. V. Tran, “Study on the anti-bacterial activities of extracts from sakae naa (Combretum quadrangulare) on diseased aquatic animals-bacteria under in vitro conditions,” Can Tho University Journal of Science, vol. 54, pp. 151-157, 2020.
[34] J. M. Tomás, “The main Aeromonas pathogenic factors,” Frontiers in Microbiology, vol. 3, pp. 1-22, 2012.
[35] D. Ceccarelli, N. A. Hasan, and R. R. Colwell, “Vibrio parahaemolyticus: a review of pathogenicity and implications for risk assessment,” Frontiers in Microbiology, vol. 4, pp. 1-13, 2013.
[36] D. Gupta, R. Bharti, and P. Vishwakarma, “Annona glabra flavonoids act as antimicrobials by binding to Pseudomonas aeruginosa cell walls,” Frontiers in Microbiology, vol. 7, pp. 1-9, 2016.
[37] B. K. Diggles, G. A. Moss, J. Carson, and C. D. Anderson, “Luminous vibriosis in rock lobsterJasus verreauxi (Decapoda: Palinuridae) phyllosoma larvae associated withinfection by Vibrio harveyi,” Diseases of Aquatic Organisms, vol. 43, pp. 127–137, 2000.
[38] H. R. Vasanthi, N. ShriShriMal, and D. K. Das, “Phytochemicals from Plants to Combat Cardiovascular Disease,” Current Medicinal Chemistry, vol. 19, pp. 2242-2251, 2012.
[39] R. Castro, J. Lamas, P. Morais, M. L. Sanmartı´n, F. Orallo, and J. Leiro, “Resveratrol modulates innate and inflammatory responses in fish leucocytes,” Veterinary Immunology and Immunopathology, vol. 126, pp. 9–19, 2008.
[40] A. Scalbert, “Antimicrobial properties of tannins,” Phytochemistry, vol. 30, no. 12, pp. 3875-3883, 1991.
[41] K. Ahn, “The worldwide trend of using botanical drugs and strategies for developing global drugs,” BMB Reports, vol. 50, no. 3, pp. 111–116, 2017.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.12407
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu