PHÂN LẬP, TUYỂN CHỌN VI KHUẨN CỐ ĐỊNH ĐẠM  VÀ ĐÁNH GIÁ TÁC ĐỘNG TRÊN CÂY NGÔ

Đoàn Văn Thược; Phan Thị Thanh Thư; Trần Thị Định

doi:10.34238/tnu-jst.12807

PHÂN LẬP, TUYỂN CHỌN VI KHUẨN CỐ ĐỊNH ĐẠM VÀ ĐÁNH GIÁ TÁC ĐỘNG TRÊN CÂY NGÔ

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 14/05/25 Ngày hoàn thiện: 30/10/25 Ngày đăng: 31/10/25

Các tác giả

1. Đoàn Văn Thược , Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
2. Phan Thị Thanh Thư, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội
3. Trần Thị Định, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội

Tóm tắt

Trong nghiên cứu này, hai chủng vi khuẩn cố định đạm kí hiệu T22 và T27 đã được phân lập và tuyển chọn từ các mẫu đất vườn thu thập tại Hoài Đức, Hà Nội. Nồng độ NH₄⁺ cao nhất được tổng hợp bởi chủng T22 và T27 lần lượt là 24,9 g/L và 25,3 g/L. Chủng T22 là vi khuẩn Gram dương, tế bào hình que, có khả năng sinh catalase; chủng T27 là vi khuẩn Gram âm, tế bào dạng trực khuẩn ngắn, có khả năng sinh catalase và phân giải phosphate khó tan. Kết quả giải trình tự đoạn gene 16S rDNA cho thấy chủng T22 có quan hệ gần gũi với các loài thuộc chi Bacillus và chủng T27 thuộc loài Azotobacter chroococcum. Cả hai chủng vi khuẩn tuyển chọn đều có khả năng đồng hóa glucose, manitol và rỉ đường, sinh trưởng tốt ở 30 ^oC và pH trung tính. Khi được bổ sung vào trong đất trồng ngô, hai chủng vi khuẩn T22 và T27 đã thể hiện sự ảnh hưởng tích cực đến sự sinh trưởng cây ngô non sau bốn tuần thí nghiệm. Kết quả nghiên cứu cho thấy hai chủng vi khuẩn tuyển chọn (Bacillus sp. T22 và Azotobacter chroococcum T27) có tiềm năng sản xuất chế phẩm phân bón sinh học nhằm thúc đẩy sinh trưởng ở thực vật.

Từ khóa

Azotobacter; Bacillus; Cây ngô; Cố định đạm; Vi khuẩn

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] T. Searchinger, R. Waite, C. Hanson, J. Ranganathan, P. Dumas, E. Mathews, and A. Klirs, “Creating a sustainable food future: a menu of solutions to feed nearly 10 billion people by 2050,” World Resources Reports. World Resources Institute, 2019.

[2] S. E. Bloch, M-H. Ryu, B. Ozaydin, and R. Broglie, “Harnessing atmospheric nitrogen for cereal crop production,” Current Opinion in Biotechnology, vol. 62, pp. 181-188, 2020.

[3] K. Mahmud, S. Makaju, R. Ibrahim, and A. Missaoui, “Current progress in nitrogen fixing plants and microbiome research,” Plants, vol. 9, no. 1, Jan. 2020, Art. no. 97.

[4] S. Ranjan, S. Sow, S. R. Choudhury, S. Kumar, and M. Ghosh, “Biofertilizer as a novel tool for enhancing soil fertility and crop productivity: a review,” International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, vol. S11, pp. 653-665, 2020.

[5] P. Chaudhary, S. Singh, A. Chaudhary, A. Sharma, and G. Kumar, “Overview of biofertilizers in crop production and stress management for sustainable agriculture,” Frontiers in Plant Science, vol. 13, Aug. 2022, Art. no. 930340.

[6] S. A. Wani, S. Chand, M. A. Wani, M. Ramzan, and K. R. Hakeem, “Azotobacter chroococcum–a potential biofertilizer in agriculture: an overview,” in Soil Science: Agricultural and Environmental Prospectives, K. R. Hakeem, J. Akhtar, M Sabir, Ed., Springer, 2016, pp. 333-348.

[7] T. A. Bhat, L. Ahmad, M. A. Ganai, S. U. Haq, and O. A. Khan, “Nitrogen fixing biofertilizers; mechanism and growth promotion: a review,” Journal of Pure and Applied Microbiology, vol. 9, no. 2, pp. 1675-1690, 2015.

[8] F. Kawaka, “Characterization of symbiotic and nitrogen fixing bacteria,” AMB Express, vol. 12, Jul. 2022, Art. no. 99.

[9] A. Aasfar et al., “Nitrogen fixing Azotobacter species as potential soil biological enhancers for crop nutrition and yield stability,” Frontiers in Microbiology, vol. 12, Feb. 2021, Art. no. 628379.

[10] S. Sun, Y. Chen, J. Cheng, Q. Li, Z. Zhang, and Z. Lan, “Isolation, characterization, genomic sequencing, and GFP-marked insertional mutagenesis of a high-performance nitrogen-fixing bacterium, Kosakonia radicincitans GXGL-4A and visualization of bacterial colonization on cucumber roots,” Folia Microbiologica, vol. 63, no. 6, pp. 789–802, 2018.

[11] H. Mukhtar, H. Bashir, A. Nawaz, and I. Haq, “Optimization of growth conditions for Azotobacter species and their use as biofertilizer,” Journal of Bacteriology and Mycology, vol. 6, no. 5, pp. 274-278, 2018.

[12] J. G. Cappuccino and C. Welsh, Microbiology: a laboratory manual 51-142, Pearson, 2020.

[13] H. Heuer, M. Krsek, P. Baker, K. Smalla, and E. M. H. Wellington, “Analysis of actinomycete communities by speci¢c ampli¢cation of genes encoding 16S rRNA and gel-electrophoretic separation in denaturing gradients,” Applied and Environmental Microbiology, vol. 63, no. 8, pp. 3233-3241, 1997.

[14] K. Tamura, G. Stecher, and S. Kumar, “MEGA 11: molecular evolutionary genetics analysis version 11,” Molecular Biology and Evolution, vol. 38, no. 7, pp. 3022-3027, 2021.

[15] L. Zhou and C. E. Boyd, “Comparison of Nessler, phenate, salicylate and ion selective electrode procedures for determination of total amminia nitrogen in aquaculture,” Aquaculture, vol. 450, pp. 187-193, 2016.

[16] T. Q. Ha and T. T. H. Chu, “Selection of nitrogen fixation and phosphate solubilizing bacteria from cultivationg soil samples of Hung Yen province in Vietnam,” Journal of Vietnamese Environment, vol. 12, no. 2, pp. 162-168, 2020.

[17] S. A. Dar, R. A. Bhat, M. A. Dervash, Z. A. Dar, and G. H. Dar, “Azotobacter as biofertilizer for sustainable soil and plant health under saline environmental condition,” in Microbiota and Biofertilizers, K. R. Hakeem et al., (eds.), Springer Nature Switzerland AG, 2021, pp. 231-254.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.12807

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ