Chia sẻ bài báo qua Email PHÂN TÍCH HÌNH THÁI KẾT HỢP SINH HỌC PHÂN TỬ TRONG ĐỊNH DANH MẪU RONG BIỂN CHI Padina THU TẠI ĐẢO CÔ TÔ, QUẢNG NINH, VIỆT NAM
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 20/06/25 Ngày hoàn thiện: 15/12/25 Ngày đăng: 15/12/25Các tác giả
1. Vũ Đình Phóng, Trường Đại học Hòa Bình; Học viện Khoa học và Công nghệ - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam2. Nguyễn Thị Bích Ngọc, Viện Sinh học - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
3. Huỳnh Thị Thu Huệ, Học viện Khoa học và Công nghệ - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam; Viện Sinh học - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
4. Lê Tất Thành
, Học viện Khoa học và Công nghệ - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam; Ban Kế hoạch – Tài chính - Viện Hàn lâm Khoa học và Công nghệ Việt Nam
Tóm tắt
Chi rong Padina có 59 loài đã được chấp nhận vể mặt phân loại. Chi này không chỉ đóng vai trò quan trọng trong hệ sinh thái biển mà còn là nguồn cung cấp các hợp chất có hoạt tính sinh học tiềm năng, mang lại giá trị cao trong lĩnh vực thực phẩm, mỹ phẩm và dược phẩm. Các loài chi Padina có hình thái khá giống nhau. Hầu hết các nghiên cứu phân loại trước đây về Padina đều sử dụng phương pháp hình thái. Nghiên cứu này kết hợp giữa phân tích hình thái và giải trình tự hai vùng gen lục lạp rbcL và ty thể cox3 nhằm định danh mẫu rong biển Padina (mẫu 5CT) thu tại đảo Cô Tô (tỉnh Quảng Ninh), đồng thời xác định mối quan hệ họ hàng của chúng với các loài trong chi. Kết quả phân tích hình thái mẫu 5CT cho thấy sự tương đồng với loài Padina australis Hauck. Trên cơ sở phân tích dữ liệu hai vùng gen rbcL và cox3, mẫu 5CT có mối quan hệ chặt chẽ với loài Padina australis Hauck. Điều đó thể hiện sự nhất quán trong việc định danh mẫu rong trên bằng phương pháp hình thái và sinh học phân tử. Qua đó nghiên cứu góp phần củng cố hiểu biết về tính đa dạng sinh học của chi Padina tại khu vực, đồng thời mở ra hướng nghiên cứu mới, phục vụ khai thác tiềm năng sinh học của loài rong này trong tương lai.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] A. A. Ansari, S. M. Alghanem, and M. Naeem, “Brown Alga Padina: A review,” International Journal of Botany Studies, vol. 4, no. 1, pp. 1-3, Jan. 2019.
[2] N.-N.-W. Win, T. Hanyuda, S. G. A. Draisma, P. E. Lim, S.-M. Phang, and H. Kawai, “Taxonomy of the genus Padina (Dictyotales, Phaeophyceae) based on morphological and molecular evidences, with key to species identification,” in Taxonomy of Southeast Asian Seaweeds II, S.-M. Phang and P.-E. Lim, Eds. Kuala Lumpur: University of Malaya Press, Monograph Series 15, 2013, pp. 119–174.
[3] M. D. Guiry, “AlgaeBase,” in Guiry, M. D. and Guiry, G. M., World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway. [Online]. Available: https://www.algaebase.org. [Accessed Jun. 19, 2025].
[4] V. T. Nguyen and N. H. Le, “Contribution to the study of brown algae (Ochrophyta–Phaeophyceae) from Vietnam,” (in Vietnamese), in Proceedings of the 2012 East Sea International Conference, Nha Trang, Vietnam, Sep. 12–14, 2012, pp. 119-129.
[5] A. D. Do, V. H. Tran, M. T. Bui, V. H. Nguyen, T. M. Nguyen, and D. H. Dang, “Species diversity of seaweed around Ly Son Island, Quang Ngai Province,” Hue Univ. J. Sci. Nat. Sci., vol. 128, no. 1A, pp. 5–17, Apr. 2019, doi: 10.26459/hueuni-jns.v128i1A.5114.
[6] T. T. H. Huynh et al., "Combining morphological and molecular data to identify Padina seaweed samples collected from Hon Thom, Phu Quoc in Vietnam," Journal of Biology, vol. 46.2, 2024, doi: 10.15625/2615-9023/20583.
[7] C. Asma, M. Hiba, and Z. Laurence, “Evaluation of brown seaweed (Padina pavonica) as biostimulant of plant growth and development,” Afr. J. Agric. Res., vol. 8, no. 13, pp. 1155-1165, Apr. 2013, doi: 10.5897/AJAR12.1346.
[8] A. P. Baliano et al., “Brown seaweed Padina gymnospora is a prominent natural wound-care product,” Rev. Bras. Farmacogn., vol. 26, pp. 714-719, Dec. 2016, doi: 10.1016/j.bjp.2016.07.003.
[9] V. S. Ramkumar et al., “Synthesis of platinum nanoparticles using seaweed Padina gymnospora and their catalytic activity as PVP/PtNPs nanocomposite towards biological applications,” Biomed Pharmacother, vol. 92, pp. 479-490, Aug. 2017, doi: 10.1016/j.biopha.2017.05.076.
[10] H. B. Kang et al., “Safety Assessment of Ethanolic Extract of Padina gymnospora as a Cosmetic Ingredient,” Asian J. Beauty Cosmetol., vol. 19, no. 4, pp. 555-568, Dec. 2021, doi: 10.20402/ajbc.2021.0214.
[11] H. S. Kalasariya, L. Pereira, and N. B. Patel, “Comprehensive Phytochemical Analysis and Bioactivity Evaluation of Padina boergesenii: Unveiling Its Prospects as a Promising Cosmetic Component,” Mar. Drugs, vol. 21, no. 7, Jun. 2023, doi: 10.3390/md21070385.
[12] K. Thiyagarasaiyar, C. K. Mahendra, B.-H. Goh, L. T. Gew, and Y.-Y. Yow, “UVB Radiation Protective Effect of Brown Alga Padina australis: A Potential Cosmeceutical Application of Malaysian Seaweed,” Cosmetics, vol. 8, no. 3, Art. no. 3, Sep. 2021, doi: 10.3390/cosmetics8030058.
[13] N.-N.-W. Win et al., “A taxonomic study of the genus padina (dictyotales, phaeophyceae) including the descriptions of four new species from japan, hawaii, and the andaman sea,” J. Phycol., vol. 47, pp. 1193-1209, Sep. 2011, doi: 10.1111/j.1529-8817.2011.01054.x.
[14] G. T. Kraft, G. W. Saunders, I. A. Abbott, and R. J. Haroun, “A Uniquely Calcified Brown Alga from Hawaii: Newhousia Imbricata Gen. Et Sp. Nov. (dictyotales, Phaeophyceae),” J. Phycol., vol. 40, no. 2, pp. 383-394, 2004, doi: 10.1111/j.1529-8817.2004.03115.x.
[15] R. Wattier and C. A. Maggs, “Intraspecific variation in seaweeds: The application of new tools and approaches,” in Advances in Botanical Research, vol. 35, Academic Press, 2001, pp. 171–212, doi: 10.1016/S0065-2296(01)35007-3.
[16] T. T. N. Nguyen, D. T. Sy, and T. P. T. Cao, “Using matK DNA barcodes to identify Cleome viscosa L. in Vietnam,” TNU Journal of Science and Technology, vol. 164, no. 4, pp. 147–152, Apr. 2017.
[17] T. T. T. Vu, T. T. N. Nguyen, P. H. Hoang, and H. M. Chu, “Using matK DNA barcodes to identify species of medicinal plant Paris poluphylla Sm. in Vietnam,” TNU Journal of Science and Technology, vol. 161, no. 01, pp. 81-87, Jan. 2017.
[18] P. D. N. Hebert, A. Cywinska, S. L. Ball, and J. R. deWaard, “Biological identifications through DNA barcodes,” Proc. Biol. Sci., vol. 270, no. 1512, pp. 313-321, Feb. 2003, doi: 10.1098/rspb.2002.2218.
[19] T. Silberfeld et al., “Species Diversity, Phylogeny and Large Scale Biogeographic Patterns of the Genus Padina (Phaeophyceae, Dictyotales),” J. Phycol., vol. 49, no. 1, pp. 130-142, 2013, doi: 10.1111/jpy.12027.
[20] S. Díaz-Martínez, G. C. Zuccarello, G. A. S. Chávez, F. F. Pedroche, and A. G. Avila-Ortiz, “Species of Padina (Dictyotales, Phaeophyceae) in tropical Mexican waters based on molecular-assisted taxonomy,” Phycologia, vol. 55, no. 6, pp. 673-687, Nov. 2016, doi: 10.2216/16-15.1.
[21] N.-N.- Win et al., “Global Diversity and Geographic Distributions of Padina Species (Dictyotales, Phaeophyceae): New Insights Based on Molecular and Morphological Analyses,” J. Phycol., vol. 57, no. 2, pp. 454-472, 2021, doi: 10.1111/jpy.13076.
[22] N.-N.- Win et al., “Taxonomy and species diversity of Padina (Dictyotales, Phaeophyceae) from the Indo-Pacific with the description of two new species,” Eur. J. Phycol., vol. 57, no. 1, pp. 1–17, Jan. 2022, doi: 10.1080/09670262.2021.1883742.
[23] N.-N.-W. Win et al., “Two new species of Padina (Dictyotales, Phaeophyceae), P. sulcata and P. calcarea, from tropical Indo-Pacific regions based on morphological and molecular evidence,” Phycologia, vol. 51, pp. 576-585, Jan. 2012.
[24] N.-N.- Win et al., “Four new species of Padina (Dictyotales, Phaeophyceae) from the western Pacific Ocean, and reinstatement of Padina japonica,” Phycologia, vol. 49, no. 2, pp. 136-153, Mar. 2010, doi: 10.2216/09-54.1.
[25] H. H. Pham, Marine algae of South Vietnam, (in Vietnamese), Sai Gon, Learning Resource Center, pp. 1-558, 1969.
[26] H. D. Nguyen, Q. N. Huynh, N. B. Tran, and V. T. Nguyen, “Marine macroalgae (in the North Vietnam),” (in Vietnamese), Ha Noi: Science and Technics Publishing House, pp. 1-364, 1993.
[27] D. T. Dam, M. L. Nguyen, A. D. Do, M. D. Dao, and T. M. A. Nguyen, “Seaweeds from some islands in northeastern Vietnam,” (in Vietnamese), 1st ed. Ha Noi: Natural Science and Technology Publishing, pp. 1-267, 2023.
[28] G. S. Ramakrishnan, A. A. Fathima, and M. Ramya, “A rapid and efficient DNA extraction method suitable for marine macroalgae,” 3 Biotech, vol. 7, no. 6, Dec. 2017, doi: 10.1007/s13205-017-0992-2.
[29] J. Tan, P.-E. Lim, S.-M. Phang, D. D. Hong, H. Sunarpi, and A. Q. Hurtado, “Assessment of four molecular markers as potential DNA barcodes for red algae Kappaphycus Doty and Eucheuma J. Agardh (Solieriaceae, Rhodophyta),” PloS One, vol. 7, no. 12, 2012, Art. no. e52905, doi: 10.1371/journal.pone.0052905.
[30] L. Bittner, C. E. Payri, A. Couloux, C. Cruaud, B. de Reviers, and F. Rousseau, “Molecular phylogeny of the Dictyotales and their position within the Phaeophyceae, based on nuclear, plastid and mitochondrial DNA sequence data,” Mol. Phylogenet. Evol., vol. 49, no. 1, pp. 211-226, Oct. 2008, doi: 10.1016/j.ympev.2008.06.018.
[31] Z. Sun, T. Hanyuda, P.-E. Lim, J. Tanaka, C. F. D. Gurgel, and H. Kawai, “Taxonomic revision of the genus Lobophora (Dictyotales, Phaeophyceae) based on morphological evidence and analyses rbcL and cox3 gene sequences,” Phycologia, vol. 51, no. 5, pp. 500-512, 2012, doi: 10.2216/11-85.1.
[32] K. M. Evans, A. H. Wortley, and D. G. Mann, “An Assessment of Potential Diatom “Barcode” Genes (cox1, rbcL, 18S and ITS rDNA) and their Effectiveness in Determining Relationships in Sellaphora (Bacillariophyta),” Protist, vol. 158, no. 3, pp. 349-364, 2007, doi: 10.1016/j.protis.2007.04.001.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.13090
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu