KHẢ NĂNG HÌNH THÀNH MÀNG SINH HỌC VÀ TÍNH NHẠY CẢM VỚI AMPICILLIN CỦA VI KHUẨN PHÂN LẬP TỪ DA VÙNG MẶT

Từ Mậu Xương; Ngô Thị Huỳnh My; Trần Hữu Hậu; Nguyễn Ngọc Thạnh; Bùi Hoàng Đăng Long; Trần Ngọc Dung; Huỳnh Xuân Phong

doi:10.34238/tnu-jst.13468

KHẢ NĂNG HÌNH THÀNH MÀNG SINH HỌC VÀ TÍNH NHẠY CẢM VỚI AMPICILLIN CỦA VI KHUẨN PHÂN LẬP TỪ DA VÙNG MẶT

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 24/08/25 Ngày hoàn thiện: 19/03/26 Ngày đăng: 20/03/26

Các tác giả

1. Từ Mậu Xương, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ; Bệnh viện Da liễu Cần Thơ
2. Ngô Thị Huỳnh My, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
3. Trần Hữu Hậu, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
4. Nguyễn Ngọc Thạnh, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
5. Bùi Hoàng Đăng Long, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
6. Trần Ngọc Dung, Trường Đại học Y Dược Cần Thơ
7. Huỳnh Xuân Phong , Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Mụn trứng cá là một bệnh lý viêm mãn tính của tuyến bã nhờn, được kích thích bởi androgen, dẫn đến sừng hóa bất thường, viêm và nhiễm trùng do vi khuẩn ở nang lông. Bệnh chủ yếu ảnh hưởng đến các vùng da nhạy cảm như mặt và cổ. Bệnh biểu hiện bằng các tổn thương, bao gồm mụn đầu trắng, mụn đầu đen, mụn mủ, sẩn và nốt sần. Trong nghiên cứu này, chín chủng vi khuẩn đã được phân lập từ các mẫu tổn thương mụn trứng cá. Các khuẩn lạc hình tròn và có màu trắng hoặc vàng trên môi trường TYG. Quan sát dưới kính hiển vi cho thấy các tế bào vi khuẩn có hình cầu, không di động và là vi khuẩn Gram dương. Phân tích sinh hóa cho thấy sáu trong số chín chủng có kết quả xét nghiệm dương tính với gelatinase. Tất cả các chủng vi khuẩn đều dương tính với catalase và methyl đỏ nhưng âm tính với oxidase, indole, lipase và tan máu. Đáng chú ý, chúng thể hiện khả năng hình thành màng sinh học, với 5 chủng vi khuẩn kháng ampicillin ở nồng độ 30 µg (đĩa khuếch tán Kirby-Bauer). Các chủng M1.2 và M1.5 thể hiện khả năng hình thành màng sinh học mạnh nhất và được xác định là thuộc chi Staphylococcus dựa trên kết quả giải trình tự gen 16S rRNA. Những phát hiện này cho thấy sự hiện diện của vi khuẩn hình thành màng sinh học và kháng kháng sinh trong mụn trứng cá, có thể góp phần làm cho mụn trứng cá dai dẳng và khó điều trị hơn. Do đó, việc nghiên cứu sâu hơn về đặc điểm sinh học của các chủng vi khuẩn này có thể hỗ trợ phát triển các phương pháp điều trị mụn trứng cá hiệu quả hơn.

Từ khóa

Mụn trứng cá; Ampicillin; Kháng sinh; Màng sinh học; Staphylococcus

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] B. Emma and L. Huiying. “Shaping of cutaneous function by encounters with commensals,” The Journal of Physiology, vol. 595, no. 2, pp. 437-450, 2017, doi: 10.1113/JP271638.

[2] D. Brigitte et al., “The skin microbiome: A new actor in inflammatory acne.” American Journal of Clinical Dermatology, vol. 21, no. Suppl 1, pp. 18-24, 2020, doi: 10.1007/s40257-020-00531-1.

[3] A. M. O’Neill and R. L. Gallo, “Host-microbiome interactions and recent progress into understanding the biology of acne vulgaris,” Microbiome, vol. 6, no. 1, pp. 1-16, 2028, doi: 10.1186/s40168-018-0558-5.

[4] H. P. M. Gollnick, “From new findings in acne pathogenesis to new approaches in treatment,” Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology, vol. 29, no. S5, pp. 1-7, 2015, doi: 10.1111/jdv.13186.

[5] H. C. Williams et al., “Acne vulgaris,” The Lancet, vol. 379, no. 9813, pp. 361-372, 2012, doi: 10.1016/S0140-6736(11)60321-8.

[6] K. Chilicka et al., “Microbiome and probiotics in acne vulgaris - A narrative review,” Life, vol. 12, no. 3, Art. no. 422, 2022, doi: 10.3390/life12030422.

[7] J. K. L. Tan and K. Bhate, “A global perspective on the epidemiology of acne,” British Journal of Dermatology, vol. 172, no. S1, pp. 3-12, 2015, doi: 10.1111/bjd.13462.

[8] P. Wolkenstein et al., “Acne prevalence and associations with lifestyle: A cross‐sectional online survey of adolescents/young adults in 7 European countries,” Journal of the European Academy of Dermatology and Venereology, vol. 32, no. 2, pp. 298-306, 2018, doi: 10.1111/jdv.14475.

[9] S. Sharma et al., “Microbial biofilm: A review on formation. infection. antibiotic resistance. control measures. and innovative treatment,” Microorganisms, vol. 11, no. 6, Art. no. 1614, 2023, doi: 10.3390/microorganisms11061614.

[10] N. V. An et al., “Antimicrobial resistance patterns of pathogens isolated from patients with wound infection at a teaching hospital in Vietnam,” Infection and Drug Resistance, vol. 17, pp. 3463-3473, 2024, doi: 10.2147/IDR.S472025.

[11] V. Puca et al., “Microbial species isolated from infected wounds and antimicrobial resistance analysis: Data emerging from a three-year retrospective study,” Antibiotics, vol. 10, no. 10, Art. no. 1162, 2021, doi: 10.3390/antibiotics10101162.

[12] DermNet, “Acne vulgaris,” 2014. [Online]. Available: https://dermnetnz.org/topics/acne-vulgaris. [Accessed June 2014].

[13] K. Ogai et al., “A comparison of techniques for collecting skin microbiome samples: Swabbing versus tape-stripping,” Frontiers in Microbiology, vol. 9, Art. no. 2362, 2018, doi: 10.3389/fmicb.2018.02362.

[14] T. H. Hau et al., “Inhibition of biofilm-forming bacteria and probiotic potential of Bacillus spp. isolated from aquaculture ponds,” Malaysian Journal of Microbiology, vol. 20, no. 4, pp. 430-437, 2024, doi: 10.21161/mjm.230403.

[15] S. B. Santos et al., “The use of antibiotics to improve phage detection and enumeration by the double-layer agar technique,” BMC Microbiology, vol. 9, Art. no. 148, 2009, doi: 10.1186/1471-2180-9-148.

[16] V.T. Anh et al., “Studies on antimicrobial and antioxidant activities of extracts from Pouzolzia zeylanica L. leaves and stems,” CTU Journal of Science, vol. 52, pp. 29-36, 2017, doi: 10.22144/ctu.jvn.2017.107.

[17] Y. Ren et al., “Identification of coccoidal bacteria in traditional fermented milk products from Mongolia, and the fermentation properties of the predominant species, Streptococcus thermophilus,” Korean Journal for Food Science of Animal Resources, vol. 35, no. 5, pp. 683-691, 2015, doi: 10.5851/kosfa.2015.35.5.683.

[18] V. Patil et al, “Inhibition of Propionibacterium acnes lipase by extracts of Indian medicinal plants,” International Journal of Cosmetic Science, vol. 34, no. 3, pp. 234-239, 2012, doi: 10.1111/j.1468-2494.2012.00706.x.

[19] K. Nakase et al., “Relationship between the severity of acne vulgaris and antimicrobial resistance of bacteria isolated from acne lesions in a hospital in Japan,” Journal of Medical Microbiology, vol. 63, no. 5, pp. 721-728, 2014, doi: 10.1099/jmm.0.067611-0.

[20] N. I. Muhammed and R. A. Dabbagh, “Isolation and identification of microorganisms in acne patients,” Zanco Journal of Medical Sciences, vol. 20, no. 2, pp. 1330-1336, 2016, doi: 10.15218/zjms.2016.0028.

[21] B. H. D. Long et al., “Isolation and optimization for culture conditions of lactic acid bacteria for antibacterial properties against Propionibacterium spp. isolated from human skin,” Vietnam Journal of Science Technology and Engineering, vol. 61, no. 7, pp. 21-28, 2019.

[22] K. Ruchiatan et al., “Characteristics of biofilm-forming ability and antibiotic resistance of Cutibacterium acnes and Staphylococcus epidermidis from acne vulgaris patients,” Clinical, Cosmetic and Investigational Dermatology, vol. 16, pp. 2457-2465, 2023, doi: 10.2147/CCID.S42248.

[23] P. Dash et al., “Antimicrobial resistance and biofilm formation of isolates from febrile cases: Findings from a rural cohort of Odisha, India,” Polish Journal of Microbiology, vol. 72, no. 2, pp. 209-214, 2023, doi: 10.33073/pjm-2023-005.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.13468

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ