THÀNH PHẦN HÓA HỌC VÀ CÁC HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA TẢO NÂU Turbinaria conoides THU THẬP TẠI KIÊN GIANG, VIỆT NAM

Nguyễn Ngọc Trang Thùy; Lê Tú Trân; Nguyễn Phúc Huy; Vi Nhã Trân; Nguyễn Thị Kim Huê; Trần Thanh Mến

doi:10.34238/tnu-jst.13506

THÀNH PHẦN HÓA HỌC VÀ CÁC HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA TẢO NÂU Turbinaria conoides THU THẬP TẠI KIÊN GIANG, VIỆT NAM

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 28/08/25 Ngày hoàn thiện: 06/01/26 Ngày đăng: 09/01/26

Các tác giả

1. Nguyễn Ngọc Trang Thùy, 1) Trường Đại học Kỹ thuật-Công nghệ Cần Thơ, 2) Viện Công nghệ sinh học và thực phẩm - ĐH Cần Thơ
2. Lê Tú Trân, Trường Đại học Kỹ thuật-Công nghệ Cần Thơ
3. Nguyễn Phúc Huy, Trường Đại học Kỹ thuật-Công nghệ Cần Thơ
4. Vi Nhã Trân, Trường Đại học Kỹ thuật-Công nghệ Cần Thơ
5. Nguyễn Thị Kim Huê, Trường Khoa học tự nhiên - ĐH Cần Thơ
6. Trần Thanh Mến , Trường Khoa học tự nhiên - ĐH Cần Thơ

Tóm tắt

Nghiên cứu này đánh giá thành phần hóa học và hoạt tính sinh học của tảo nâu Turbinaria conoides nhằm xác định tiềm năng ứng dụng như nguồn hợp chất hoạt tính sinh học. Tảo khô đã được chiết xuất và tổng phenolic (Folin-Ciocalteu; GAE), flavonoid (phép đo màu AlCl₃; QE) và polysaccharides (acid phenol-sulfuric; đương lượng glucose) đã được định lượng; agar được xác định bằng phương pháp chiết nóng với acetic acid và thu hồi bằng đông lạnh-rã đông; và fucoidan được phân lập bằng phương pháp chiết nước nóng và kết tủa bằng ethanol. Kết quả phân tích cho thấy chiết xuất tảo nâu giàu polyphenol (65,17 ± 0,10 mg GAE/g), flavonoid (379,00 ± 0,01 mg QE/g) và polysaccharide (496,55 ± 0,01 mg GLUE/g), với hiệu suất agar 3,71% và fucoidan 6,40%. Các thí nghiệm in vitro chứng minh chiết xuất tảo có tiềm năng chống oxy hóa (DPPH, ABTS, năng lực khử), kháng viêm (ức chế biến tính protein), kháng khuẩn (Escherichia coli, Bacillus cereus) (phương pháp khuếch tán giếng thạch) và gây độc tế bào ung thư (HT-29) (thử nghiệm CCK). Những kết quả này khẳng định T. conoides là nguồn giàu hợp chất sinh học với tiềm năng ứng dụng trong thực phẩm bảo vệ sức khỏe, dược phẩm bổ sung và dược phẩm, đồng thời có giá trị kinh tế và môi trường như một nguồn tài nguyên biển bền vững.

Từ khóa

Kháng oxy hóa; Kháng viêm; Hoạt tính kháng khuẩn; Tài nguyên biển; Tảo nâu

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] H. S. El-Beltagi, A. A. Mohamed, H. I. Mohamed, K. M. A. Ramadan, A. A. Barqawi, and A. T. Mansour, “Phytochemical and Potential Properties of Seaweeds and Their Recent Applications: A Review,” Mar. Drugs, vol. 20, no. 6, 2022, doi: 10.3390/md20060342.

[2] L. Liu, M. Heinrich, S. Myers, and S. A. Dworjanyn, “Towards a better understanding of medicinal uses of the brown seaweed Sargassum in Traditional Chinese Medicine: a phytochemical and pharmacological review,” J. Ethnopharmacol, vol. 142, no. 3, pp. 591–619, 2012, doi: 10.1016/j.jep.2012.05.046.

[3] J.-C. Lee et al., “Marine algal natural products with anti-oxidative, anti-inflammatory, and anti-cancer properties,” Cancer Cell Int., vol. 3, no. 13, 2013, Art. no. 55, doi: 10.1186/1475-2867-13-55.

[4] N. Chattopadhyay, T. Ghosh, S. Sinha, K. Chattopadhyay, P. Karmakar, and B. Ray, “Polysaccharides from Turbinaria conoides: Structural features and antioxidant capacity,” Food Chem., vol. 118, no. 3, pp. 823–829, 2010, doi: 10.1016/j.foodchem.2009.05.069.

[5] S. Rajeshkumar et al., “Seaweed-mediated synthesis of gold nanoparticles using Turbinaria conoides and its characterization,” J. Nanostructure Chem., vol. 3, no. 44, Art. no. 44, 2013.

[6] M.-L. Nguyen et al., “Marine Floral Biodiversity, Threats, and Conservation in Vietnam: An Updated Review,” Plants, vol. 12, no. 9, Apr. 2023, doi: 10.3390/plants12091862.

[7] V. T. Nguyen, N. H. Le, S.-M. Lin, S. Frederique, and O. D. Clerck, “Checklist of the marine macroalgae of Vietnam,” Bot. Mar., vol. 56, no. 3, pp. 207–227, 2013.

[8] T. Thanh, V. Tran, Y. Yuguchi, L. Bui, and T. Nguyen, “Structure of Fucoidan from Brown Seaweed Turbinaria ornata as Studied by Electrospray Ionization Mass Spectrometry (ESIMS) and Small Angle X-ray Scattering (SAXS) Techniques,” Mar. Drugs, vol. 11, no. 7, pp. 2431–2443, Jul. 2013, doi: 10.3390/md11072431.

[9] D. M. Sari, E. Anwar, Nurjanah, and A. E. Arifianti, “Antioxidant and tyrosinase inhibitor activities of ethanol extracts of brown seaweed (Turbinaria conoides) as lightening ingredient,” Pharmacogn. J., vol. 11, no. 2, pp. 379–382, 2019, doi: 10.5530/pj.2019.11.58.

[10] G. C. Bag, P. Grihanjali Devi, and T. Bhaigyaba, “Assessment of total flavonoid content and antioxidant activity of methanolic rhizome extract of three Hedychium species of Manipur valley,” Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res., vol. 30, no. 1, pp. 154–159, 2015.

[11] S. Palanisamy, M. Vinosha, T. Marudhupandi, P. Rajasekar, and N. M. Prabhu, “Isolation of fucoidan from Sargassum polycystum brown algae: Structural characterization, in vitro antioxidant and anticancer activity,” Int. J. Biol. Macromol., vol. 102, pp. 405–412, 2017, doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.03.182.

[12] R. D. Villanueva, A. M. M. Sousa, M. P. Gonçalves, M. Nilsson, and L. Hilliou, “Production and properties of agar from the invasive marine alga, Gracilaria vermiculophylla (Gracilariales, Rhodophyta),” J. Appl. Phycol., vol. 22, no. 2, pp. 211–220, 2010, doi: 10.1007/s10811-009-9444-7.

[13] R. Khamlue, A. Ounaroon, and N. Saelim, “Purification and Characterization of polysaccharides extracted from Tremella fuciformis and Auricularia auricula,” Mfuic2012.Mfu.Ac.Th, pp. 1–9, 2012.

[14] O. P. Sharma and T. K. Bhat, “DPPH antioxidant assay revisited,” Food Chem., vol. 113, no. 4, pp. 1202–1205, Apr. 2009, doi: 10.1016/j.foodchem.2008.08.008.

[15] M. N. Alam, N. J. Bristi, and M. Rafiquzzaman, “Review on in vivo and in vitro methods evaluation of antioxidant activity,” Saudi Pharm. J., vol. 21, no. 2, pp. 143–152, 2013, doi: 10.1016/j.jsps.2012.05.002.

[16] O. Chiboub et al., “In vitro amoebicidal and antioxidant activities of some Tunisian seaweeds,” Exp. Parasitol., vol. 183, pp. 76–80, 2017, doi: 10.1016/j.exppara.2017.10.012.

[17] D. Prakash, M. C. Bindal, S. K. Gupta, A. K. Gupta, and U. Pradesh, “Antiarthritic activity of milk extract of Semecarpus anacardium nut,” Int. Res. J. Pharm., vol. 4, no. 8, pp. 158–160, 2013, doi: 10.7897/2230-8407.04830.

[18] P. Vijayabaskar and V. Shiyamala, “Antioxidant properties of seaweed polyphenol from Turbinaria ornata ( Turner ) J . Agardh , 1848,” Asian Pac. J. Trop. Biomed., vol. 2, no. 1, pp. 90–98, 2012, doi: 10.1016/S2221-1691(12)60136-1.

[19] I. Rasheed, A. Rahman, and A. Tabassum, “Antioxidative potential of seaweeds from karachi coast,” Int. J. Biol. Res., vol. 6, no. 1, pp. 9–13, 2018.

[20] N. Akremi, D. Cappoen, R. Anthonissen, L. Verschaeve, and A. Bouraoui, “Phytochemical and in vitro antimicrobial and genotoxic activity in the brown algae Dictyopteris membranacea,” South African J. Bot., vol. 108, pp. 308–314, 2017, doi: 10.1016/j.sajb.2016.08.009.

[21] G. A. Ismail, “Biochemical composition of some Egyptian seaweeds with potent nutritive and antioxidant properties,” Food Sci. Technol., vol. 37, no. 2, pp. 294–302, 2017, doi: 10.1590/1678-457X.20316.

[22] A. Husni, N. Izmi, F. Z. Ayunani, A. Kartini, N. Husnayain, and A. Isnansetyo, “Characteristics and Antioxidant Activity of Fucoidan from Sargassum hystrix : Effect of Extraction Method,” Int. J. Food Sci. , 2022, doi:10.1155/2022/3689724

[23] A. Fauzi, S. Lamma, and M. Ruslin, “Total Tannin Levels Analysis of Brown Algae ( Sargassum sp and Padina sp ) to Prevent Blood Loss in a Surgery Total tannin levels analysis of brown algae ( sargassum sp . and padina sp .) to prevent blood loss in surgery,” J. Dentomaxillofac Sci, vol. 3, no. 1, pp. 37–40, 2018, doi: 10.15562/jdmfs.v3i1.621.

[24] H. J. Boo et al., “Fucoidan from Undaria pinnati fi da Induces Apoptosis in A549 Human Lung Carcinoma Cells,” Phytother. Res., vol. 1086, pp. 1082–1086, 2011.

[25] T. G. Huynh, T. H. O. Duong, N. U. Vu, and Q. P. Truong, “Chemical composition, antioxidant activities of polysacharide extracts from brown seaweed Sargassum microcystum,” Can Tho Univ. J. Sci., vol. 25, pp. 183–191, 2013.

[26] M. Martínez-Sanz, L. G. Gómez-Mascaraque, A. R. Ballester, A. Martínez-Abad, A. Brodkorb, and A. López-Rubio, “Production of unpurified agar-based extracts from red seaweed Gelidium sesquipedale by means of simplified extraction protocols,” Algal Res., vol. 38, Mar. 2019, Art. no. 101420, doi: 10.1016/j.algal.2019.101420.

[27] H. V. Nguyen, T. N. A. Nguyen, and T. M. T. Le, “Investigating agar yields and gel properties of red seaweed (Gracilaria tenuistipitata) collected from the improved extensive shrimp farms in Bac Lieu and Ca Mau provinces,” Can Tho Univ. J. Sci., vol. 55, no. 1, 2019, doi: 10.22144/ctu.jvn.2019.022.

[28] B. S. Reshma, T. Aavula, V. Narasimman, S. Ramachandran, M. M. Essa, and M. W. Qoronfleh, “Antioxidant and Antiaging Properties of Agar Obtained from Brown Seaweed Laminaria digitata (Hudson) in D-Galactose-Induced Swiss Albino Mice,” Evidence-based Complement. Altern. Med., vol. 2022, 2022, doi: 10.1155/2022/7736378.

[29] S. Lim et al., “Evaluation of antioxidant activities of various solvent extract from Sargassum serratifolium and its major antioxidant components.,” Food Chem., vol. 278, pp. 178–184, 2019, doi: 10.1016/j.foodchem.2018.11.058.

[30] T. G. Huynh, T. H. O. Duong, N. U. Vu, and Q. P. Truong, “Chemical composition, antioxidant activities of polysacharide extracts from brown seaweed Sargassum microcystum,” Can Tho Univ. J. Sci., vol. 25, pp. 183–191, 2013.

[31] K. Chakraborty, N. K. Praveen, K. K. Vijayan, and G. S. Rao, “Evaluation of phenolic contents and antioxidant activities of brown seaweeds belonging to Turbinaria spp. (Phaeophyta, Sargassaceae) collected from Gulf of Mannar,” Asian Pac. J. Trop. Biomed., vol. 3, no. 1, pp. 8–16, Jan. 2013, doi: 10.1016/S2221-1691(13)60016-7.

[32] N. Nenadis, L.-F. Wang, M. Tsimidou, and H.-Y. Zhang, “Estimation of Scavenging Activity of Phenolic Compounds Using the ABTS•+ Assay,” J. Agric. Food Chem., vol. 52, no. 15, pp. 4669−4674, 2004, doi: 10.1021/jf0400056.

[33] Y. R. Hung, Y. Chang, H. Lin, L. Chiang, and H. V. Lin, “Enhanced antioxidant activity of brown seaweed Laminaria japonica by fermentation using isolated Bacillus subtilis,” Bioresour. Bioprocess., vol. 12, 2025, doi: 10.1186/s40643-025-00912-6.

[34] K. Thiyagarasaiyar, B. Goh, and Y. Jeon, “Algae Metabolites in Cosmeceutical : An Overview of Current Applications and Challenges,” Mar Drugs, vol. 18, no. 6, 2020, doi: 10.3390/md18060323.

[35] M. J. Pérez, E. Falqué, and H. Domínguez, “Antimicrobial Action of Compounds from Marine Seaweed,” Mar Drugs, vol. 14, no. 3, 2016, doi: 10.3390/md14030052.

[36] R. Alghazeer, F. Whida, E. Abduelrhman, F. Gammoudi, and S. Azwai, “Screening of antibacterial activity in marine green, red and brown macroalgae from the western coast of Libya,” Nat. Sci., vol. 5, no. 1, pp. 7–14, 2013, doi: 10.4236/ns.2013.51002.

[37] V. H. N. Tran et al., “Structural Characterization and Cytotoxic Activity Evaluation of Ulvan Polysaccharides Extracted from the Green Algae Ulva papenfussii,” Mar. Drugs, vol. 21, no. 11, Oct. 2023, doi: 10.3390/md21110556.

[38] K. C. Hoang et al., “Screening of algae collected from Nha Trang bay, Vietnam, for potential cosmeceutical bioproducts,” Vietnam J. Mar. Sci. Technol., vol. 22, no. 4, pp. 415–422, 2022, doi: 10.15625/1859-3097/18020.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.13506

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ