ẢNH HƯỞNG CỦA POSTBIOTIC CÓ NGUỒN GỐC  TỪ Saccharomyces cerevisiae ĐẾN CHỈ SỐ TẾ BÀO MÁU VÀ  MỘT SỐ ENZYME MIỄN DỊCH CỦA TÔM THẺ CHÂN TRẮNG

Nguyễn Thị Biên Thùy; Trần Văn Tuấn; Lê Văn Khôi; Đặng Thị Lụa

doi:10.34238/tnu-jst.13561

ẢNH HƯỞNG CỦA POSTBIOTIC CÓ NGUỒN GỐC TỪ Saccharomyces cerevisiae ĐẾN CHỈ SỐ TẾ BÀO MÁU VÀ MỘT SỐ ENZYME MIỄN DỊCH CỦA TÔM THẺ CHÂN TRẮNG

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 07/09/25 Ngày hoàn thiện: 12/01/26 Ngày đăng: 13/01/26

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Biên Thùy , Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I; Trường Đại học Khoa học tự nhiên - ĐH Quốc gia Hà Nội
2. Trần Văn Tuấn, Trường Đại học Khoa học tự nhiên - ĐH Quốc gia Hà Nội
3. Lê Văn Khôi, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
4. Đặng Thị Lụa, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I

Tóm tắt

Nghiên cứu này đánh giá tác động của postbiotic từ quá trình lên men Saccharomyces cerevisiae (SCFP) đến các chỉ số huyết học và enzyme miễn dịch của tôm thẻ chân trắng (Litopenaeus vannamei). Tôm khỏe mạnh (1,69 ± 0,11 g) được nuôi trong 45 ngày với bốn khẩu phần postbioctic từ S. cerevisiae: đối chứng (S0), 0,25% (S1), 0,35% (S2) và 0,45% (S3). Kết quả cho thấy tổng số tế bào máu (THC), bạch cầu hạt (GC), tế bào không hạt (HC), cùng hoạt động của phenoloxidase (PO), respiratory burst (RES) và superoxide dismutase (SOD) tăng đáng kể ở các nhóm bổ sung SCFP so với đối chứng (P < 0,05). Nhóm S3 đạt giá trị cao nhất, tiếp theo là S2 và S1. Hoạt động RES và SOD ở S2 và S3 vượt trội so với S1, song không khác biệt đáng kể giữa S2 và S3. Về tăng trưởng, mặc dù tôm bổ sung SCFP có xu hướng tăng trọng, sự khác biệt không có ý nghĩa thống kê. Kết quả này cho thấy bổ sung SCFP ở mức 0,35–0,45% khẩu phần có thể tăng cường miễn dịch cho tôm thẻ chân trắng mà không ảnh hưởng bất lợi đến tăng trưởng.

Từ khóa

Đáp ứng miễn dịch; Enzyme miễn dịch; Saccharomyces cerevisiae; Tế bào máu; Tôm thẻ chân trắng

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] N. T. T. Le, C. W. Armstrong, E. H. Brækkan, and A. Eide, “Climatic events and disease occurrence in intensive Litopenaeus vannamei shrimp farming in the Mekong area of Vietnam,” Aquaculture, vol. 587, 2024, Art. no. 140876.

[2] V. Kumar, S. Roy, B. K. Behera, P. Bossier, and B. K. Das, “Acute Hepatopancreatic Necrosis Disease (AHPND): Virulence, Pathogenesis and Mitigation Strategies in Shrimp Aquaculture,” Toxins, vol. 13, no. 8, pp. 1-18, 2021.

[3] T. Jia, S. Liu, X. Yu, T. Xu, J. Xia, W. Zhao, W. Wang, J. Kong, and Q. Zhang, “Prevalence investigation of translucent post-larvae disease (TPD) in China,” Aquaculture, vol. 583, 2024, Art. no. 140583.

[4] D. Schar, E. Y. Klein, R. Laxminarayan, M. Gilbert, and T. P. Van Boecke, “Global trends in antimicrobial use in aquaculture,” Sci Rep, vol. 10, pp. 1-8, 2020.

[5] T. P. Van Boeckel, C. Brower, M. Gilbert, B. T. Grenfell, S. A. Levin, and T. P. Robinson, “Global trends in antimicrobial use in food animals,” Proc. Natl. Acad. Sci, vol. 112, pp. 1-15, 2015.

[6] D. McIntosh, M. Cunningham, B. Ji, F. A. Fekete, E. M. Parry, and S. E. Clark, “Transferable, multiple antibiotic and mercury resistance in Atlantic Canadian isolates of Aeromonas salmonicida sub sp. salmonicida is associated with carriage of an IncA/ C plasmid similar to the Salmonella enterica plasmid pSN254,” J. Antimicrob. Chemother, vol. 61, no. 6, pp. 1-11, 2008.

[7] R. A. Miller and H. Harbottle, “Antimicrobial drug resistance in fifish pathogens,” Microbiol Spectr, vol. 6, no. 1, 2018, Art. no. 101128.

[8] K. Thornber, D. Verner-Jeffreys, S. Hinchliffe, M. M. Rahman, D. Bass, and C. R. Tyler, “Evaluating antimicrobial resistance in the global shrimp industry,” Reviews in Aquaculture, vol. 1, no. 21, pp. 966-986, 2019.

[9] T. T. H. Tran, T. T. Chau, T. T. H. Tran, G. H. Truong, L. C. T. Tran, N. H. Tran, H. N. Dinh, S. H. Kim, J. W. Song, T. N. Hua, and M. D. Pham, “Effects of dietary supplementation with Pro-A on growth performance, feed utilization, immune responses, and intestinal microbiota of whiteleg shrimp (Litopenaeus vannamei),” Aquaculture Reports, vol. 24, pp. 101-125, 2022.

[10] J. Kesselring, C. Gruber, B. Standen, and S. Wein, “Effect of a phytogenic feed additive on the growth performance and immunity of Pacific white leg shrimp, Litopenaeus vannamei, fed a low fishmeal diet,” Journal of the world aquaculture society, vol. 52, no. 2, pp. 303-315, 2020.

[11] T. G. Huynh, K. H. Chiu, C. C. Chi, C. C. Cheng, and C. H. Liu, “A synbiotic improves the immunity of white shrimp, Litopenaeus vannamei: metabolomic analyses reveal compelling evidence,” Fish. Shellfish. Immunol, vol. 79, pp. 284-293, 2018a.

[12] T. G. Huynh, Y. L. Shiu, T. P. Nguyen, T. T. T. Hien, and C. H. Liu, “Effect of synbiotic containing Lactobacillus plantarum 7-40 and galactooligosaccharide on the growth performance of whiteleg shrimp, Litopenaeus vannamei,” Aquac. Res, vol. 49, pp. 416-428, 2018b.

[13] A. Newaj-Fyzul, A. H. Al-Harbi, and B. Austin, “Review: developments in the use of probiotics for disease control in aquaculture,” Aquaculture, vol. 431, pp. 1-11, 2014.

[14] A. Wang, C. Ran, Y. Wang, Z. Zhang, Q. Ding, Y. Yang, R. E. Olsen, E. Ringø, J. Bindelle, and Z. Zhou, “Use of probiotics in aquaculture of China-a review of the past decade,” Fish. Shellfish Immunol, vol. 86, pp. 734-755, 2019.

[15] L. Tao, H. Lu, J. Xiong, L. Zhang, W. Sun, and X. Shan, “The application and potential of postbiotics as sustainable feed additives in aquaculture,” Aquaculture, vol. 592, 2024, Art. no. 741237.

[16] J. O. Agboola, M. Øverland, A. Skrede, and J. Ø. Hansen, “Yeast as major protein-rich ingredient in aquafeeds: a review of the implications for aquaculture production,” Review in Aquaculture, vol. 13, no. 2, pp. 949-970, 2020.

[17] S. He, Z. Zhou, Y. Liu, P. Shi, B. Yao, E. Ring, and I. Yoon, “Effects of dietary Saccharomyces cerevisiae fermentation product (DVAQUA) on growth performance, intestinal autochthonous bacterial community and non-specific immunity of hybrid tilapia cultured in cages,” Aquaculture, vol. 294, no. 1-2, pp. 99-107, 2009.

[18] D. Abass, K. Obirikorang, B. Campion, R. Edziyie, and P. Skov, “Dietary supplementation of yeast (Saccharomyces cerevisiae) improves growth, stress tolerance, and disease resistance in juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus),” Journal of the European Aquaculture Society, vol. 26, pp. 843-855, 2018.

[19] H. H. Mohammed, T. L. Brown, B. H. Beck, M. Yildirim-Aksoy, R. M. Eljack, and E. Peatman, “The effects of dietary inclusion of a S.cerevisiae fermentation product in a commercial catfish ration on growth, immune readiness, and columnaris disease susceptibility,” Journal of Applied Aquaculture, vol. 31, no. 3, pp. 1-18, 2018.

[20] G. Le Moullac, M. Le Groumellec, D. Ansquer, S. Froissard, and P. L. Aquacop, “Haematological and phenoloxidase activity changes in the shrimp Penaeus stylirostris in relation with the moult cycle: protection against vibriosis,” Fish. Shellfish Immunol, vol. 7, pp. 227-234, 1997.

[21] W.Y. Hou and C. J. Chen, “The immunostimualatory e¦ect of hot- water extract of Glacilaria tenuitipitata on the white shrimp Litopenaeus vannnamei and its against Vibrio alginolyticus,” Fish. Shellfish Immunol, vol. 19, pp. 127-138, 2005.

[22] F. I. Wang and J. C. Chen, “Effect of salinity on the immune response of tiger shrimp Penaeus monodon and its susceptibility to Photobacterium damselae subsp. Damselae,” Fish. Shellfish Immunol, vol. 20, no. 5, pp. 71-81, 2006.

[23] T. Herández-Lospez, S. Gollas-Galván, and F. VargasAlbores, “Activation of the prophenoloxidase system of the brown shrimp (Paneaus californiesis Holmes),” Comparative Biochemistry and Physiology, vol. 113, no. 1, pp. 61-66, 1996.

[24] Y. L. Song and Y. T. Hsieh, “Immunostimulation of tiger shrimp (Penaeus monodon) hemocytes for generation of microbicidal substances: Analysis of reactive oxygen species,” Developmental and Comparative Immunology, vol. 18, pp. 201-209, 1994.

[25] C. Beauchamp and I. Fridovich, “Superoxide dismutase: improved assays and an assay applicable to acrylamide gels,” Analytical Biochemistry, vol. 44, pp. 276-286, 1971.

[26] C. B. Van de Braak, M. H. Botterblom, N. Taverne, W. B. Van Muiswinke, J. H. Rombout, and W. P Van Der Knaap, “The roles of haemocytes and the lymphoid organ in the clearance of injected: Vibrio bacteria in Penaeus monodon shrimp,” Fish & Shellsh Immunology, vol. 13, no. 4, pp. 293-309, 2002.

[27] P. Jiravanichpaisal, B. L. Lee, and K. Soderhall, “Ceel-mediated immunity in arthropods: Hematopoiesis, coagulation, melanization and opsonization,” Immunobiogy, vol. 211, no. 4, pp. 213-236, 2006.

[28] C. E. Ceseña, F. Vega-Villasante, G. Aguirre-Guzmán, A. Luna-González, and Á. Campa-Córdova, “Update on the use of yeast in shrimp aquaculture: A minireview,” International Aquatic research, vol. 13, no. 1, pp. 1-16, 2021.

[29] P. Sukonthamarn, P. Wongvises, N. Sangklai, P. Jaroenlak, and A. Tassanakajon, “Prophenoloxidase-activating system plays a crucial role in innate immune responses to Enterocytozoon hepatopenaei infection in shrimp Litopenaeus vannamei,” Fish & Shellfish Immunology, vol. 154, 2024, Art. no. 109952.

[30] A. R. W. Muharrama, W. Widanarni, A. Alimuddin, and M. Yuhana, “Gene expression and immune response of pacific white shrimp given Bacillus NP5 probiotic and honey prebiotic and Vibrio parahaemolyticus infection,” Journal of Applied Aquaculture, vol. 34, pp. 1-17, 2021.

[31] L. Rodriguez and G. Le Moullac, “State of the art immunological tools and health control of penaeid shrimp,” Aquaculture, vol. 191, no. 1-3, 2000, Art. no. 109119.

[32] L. U. Wang and J. C. Chen, “The immune response of white shrimp Litopenaeus vannamei and its susceptibility to Vibrio alginolyticus at different salinity levels,” Fish & Shellfish Immunology, vol. 18, no. 4, pp. 269-278, 2005.

[33] A. I. Campa-Córdova, N. Y. Hernández-Saavedra, and F. Ascencio, “Superoxide dismutase as modulator of immune function in American white shrimp (Litopenaeus vannamei),” Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol, vol. 133, pp. 557-565, 2002.

[34] C. Downs, J. E. Fauth, and C. M. Woodley, “Assessing the health of grass shrimp (Palaemonetes pugio) exposed to natural and anthropogenic stressors: a molecular biomarker system,” Mar. Biotechnol, vol. 3, pp. 380-397, 2001.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.13561

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ