NÂNG CAO HIỆU QUẢ ẤP TRỨNG CÁ CHÉP (CYPRINUS CARPIO) THÔNG QUA ỨNG DỤNG OZON NANOBUBBLES VÀ OXY NANOBUBBLES Ở QUY MÔ SẢN XUẤT | Trang | TNU Journal of Science and Technology

NÂNG CAO HIỆU QUẢ ẤP TRỨNG CÁ CHÉP (CYPRINUS CARPIO) THÔNG QUA ỨNG DỤNG OZON NANOBUBBLES VÀ OXY NANOBUBBLES Ở QUY MÔ SẢN XUẤT

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 18/12/25                Ngày hoàn thiện: 13/04/26                Ngày đăng: 14/04/26

Các tác giả

1. Vũ Thị Trang Email to author, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
2. Đặng Thị Lụa, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
3. Trần Anh Tuấn, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
4. Nguyễn Văn Khiêm, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
5. Phan Trọng Bình, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
6. Phạm Thái Giang, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1

Tóm tắt


Các nghiên cứu trước đây cho thấy ozon nanobubble và oxy nanobubble có khả năng nâng cao hiệu quả ấp trứng cá chép (Cyprinus carpio) trong điều kiện phòng thí nghiệm, đồng thời mở ra tiềm năng ứng dụng ở quy mô sản xuất. Trong nghiên cứu này, trứng cá chép được ấp với mật độ 40.000 trứng/L trong bể 100 lít. Hai nghiệm thức được thực hiện. Ở nghiệm thức nanobubble, trứng cá 24 giờ sau thụ tinh được tiếp xúc với nước chứa ozon nanobubble nồng độ 0,51 ± 0,03 mg/L trong 2 giờ, sau đó bổ sung oxy nanobubble để duy trì hàm lượng oxy hòa tan từ 9–10 mg/L. Nhóm đối chứng không được xử lý bằng ozon nanobubble hoặc oxy nanobubble. Chất lượng nước và tỷ lệ nhiễm nấm trên trứng được theo dõi đến 72 giờ sau thụ tinh. Kết quả cho thấy ở nghiệm thức nanobubble, chất lượng nước được cải thiện (COD, NO₂⁻ thấp hơn) và giảm tỷ lệ trứng bị nhiễm nấm. Tỷ lệ nở ở nhóm xử lý nanobubble đạt 91,41 ± 0,62%, cao hơn đáng kể so với 76,47 ± 1,46% ở nhóm đối chứng. Kết quả nghiên cứu cho thấy công nghệ ozon nanobubble và oxy nanobubble có tiềm năng ứng dụng rộng rãi trong ương ấp trứng của các loài cá khác.

Từ khóa


Xử lý bằng nanobubble; Chất lượng nước; Cá chép; Mầm bệnh; Tỉ lệ sống

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo


[1] Z. Jeney and Z. Z. Jian, “Use and exchange of aquatic resources relevant for food and aquaculture: Common carp (Cyprinus carpio L.),” Reviews in Aquaculture, vol. 1, no. 3–4, pp. 163–173, 2009.

[2] J. Kloskowski, “Differential effects of age-structured common carp (Cyprinus carpio) stocks on pond invertebrate communities: Implications for recreational and wildlife use of farm ponds,” Aquaculture International, vol. 19, no. 6, pp. 1151–1164, 2011.

[3] M. J. Weber and M. L. Brown, “Relationships among invasive common carp, native fishes and physicochemical characteristics in upper Midwest (USA) lakes,” Ecology of Freshwater Fish, vol. 20, no. 2, pp. 270–278, 2011.

[4] K. Manjappa, P. Keshavanath, and B. Gangadhara, “Influence of Sardine Oil Supplemented Fish Meal Free Diets on Common Carp (Cyprinus carpio) Growth, Carcass Composition and Digestive Enzyme Activity,” Journal of Fisheries and Aquatic Science, vol. 6, no. 6, pp. 604–613, 2011.

[5] M. Rahman, “Effects of co-cultured common carp on nutrients and food web dynamics in rohu aquaculture ponds,” Aquaculture Environment Interactions, vol. 6, no. 3, pp. 223–232, 2015.

[6] M. Soltani, N. Sheikhzade, H. Ebrahimzad, and A. Zargar, “Effects of Zataria multiflora Essential Oil on Innate Immune Responses of Common Carp (Cyprinus carpio),” Journal of Fisheries and Aquatic Science, vol. 5, pp. 191–199, 2010.

[7] FAO, The State of World Fisheries and Aquaculture 2022, Towards Blue Transformation, Rome, FAO, 2022.

[8] M. Anton-Pardo, D. Hlaváč, J. Másílko, P. Hartman, and Z. Adámek, “Natural diet of mirror and scaly carp (Cyprinus carpio) phenotypes in earth ponds,” Folia Zoologica, vol. 63, no. 4, pp. 229–237, 2014.

[9] A. Woynarovich, T. Moth-Poulsen, and A. Péteri, Carp polyculture in Central and Eastern Europe, the Caucasus and Central Asia: A manual, FAO, 2010.

[10] E. Bangyeekhun, S. M. Quiniou, J. E. Bly, and L. Cerenius, “Characterisation of Saprolegnia sp. Isolates from channel catfish,” Diseases of aquatic organisms, vol. 45, pp. 53-59, 2001.

[11] M. E. Barnes, W. A. Sayler, and R. J. Cordes, “Use of Formalin Treatments During Incubation of Eyed Eggs of Brown Trout,” North American Journal of Aquaculture, vol. 63, no. 4, pp. 333–337, 2001.

[12] G. Forneris, S. Bellardi, G. B. Palmegiano, M. Saroglia, B. Sicuro, L. Gasco, and I. Zoccarato, “The use of ozone in trout hatchery to reduce saprolegniasis incidence,” Aquaculture, vol. 221, no. 1, pp. 157–166, 2003.

[13] C. M. Gieseker, S. G. Serfling, and R. Reimschuessel, “Formalin treatment to reduce mortality associated with Saprolegnia parasitica in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss,” Aquaculture, vol. 253, no. 1, pp. 120–129, 2006.

[14] M. J. Lategan, F. R. Torpy, and L. F. Gibson, “Control of saprolegniosis in the eel Anguilla australis Richardson, by Aeromonas media strain A199,” Aquaculture, vol. 240, no. 1, pp. 19–27, 2004.

[15] K. G. Padmakumar, V. Jayaprakas, A. V. Mathew, and U. M. Kunju, “Incidence of fungal infection on the developing eggs of Cyprinus carpio var communis and use of polythene shreds as egg attachment device,” Current Science, vol. 54, pp. 195-196, 1985.

[16] N. Kitancharoen, A. Ono, A. Yamamoto, and K. Hatai, “The Fungistatic Effect of NaCl on Rainbow trout Egg Saprolegniasis,” Fish Pathology, vol. 32, no. 3, pp. 159–162, 1997.

[17] R. D. Khulbe, “An ecological study on watermolds of some rivers of Kumaun Himalaya,” J Ind Bot Soc, vol. 74, pp. 61–64, 1995.

[18] K. Chukanhom and K. Hatai, “Freshwater fungi isolated from eggs of the common carp (Cyprinus carpio) in Thailand,” Mycoscience, vol. 45, no. 1, pp. 42–48, 2004.

[19] Q. Bergh, G. H. Hansen, and A. Jelmert, Bacterial diseases of eggs and yolk sac larvae of halibut (Hippoglossus hippoglossus L.): Characterization and experimental infection, International Council for the Exploration of the Sea, 1990.

[20] G. H. Hansen and J. A. Olafsen, “Bacterial Colonization of Cod (Gadus morhua L.) and Halibut (Hippoglossus hippoglossus) Eggs in Marine Aquaculture,” Applied and Environmental Microbiology, vol. 55, no. 6, pp. 1435–1446, 1989.

[21] L. Madsen, J. D. Møller, and I. Dalsgaard, “Flavobacterium psychrophilum in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), hatcheries: Studies on broodstock, eggs, fry and environment,” Journal of Fish Diseases, vol. 28, no. 1, pp. 39–47, 2005.

[22] J. Heikkinen, M. Tiirola, S. M. Mustonen, P. Eskelinen, D. Navia-Paldanius, and A. von Wright, “Suppression of aprolegnia infections in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs using protective bacteria and ultraviolet irradiation of the hatchery water,” Aquaculture Research, vol. 47, no. 3, pp. 925–939, 2016.

[23] T. M. Schreier, J. J. Rach, and G. E. Howe, “Efficacy of formalin, hydrogen peroxide, and sodium chloride on fungal-infected rainbow trout eggs,” Aquaculture, vol. 140, no. 4, pp. 323–331, 1996.

[24] E. J. Wagner, R. E. Arndt, E. J. Billman, A. Forest, and W. Cavender, “Comparison of the Efficacy of Iodine, Formalin, Salt, and Hydrogen Peroxide for Control of External Bacteria on Rainbow Trout Eggs,” North American Journal of Aquaculture, vol. 70, no. 2, pp. 118–127, 2008.

[25] T. Lieke, T. Meinelt, S. H. Hoseinifar, B. Pan, D. L. Straus, and C. E. W. Steinberg, “Sustainable aquaculture requires environmental-friendly treatment strategies for fish diseases,” Reviews in Aquaculture, vol. 12, no. 2, pp. 943–965, 2020.

[26] M. Chiasson, M. Kirk, and D. Huyben, “Microbial control during the incubation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs exposed to humic acid,” Frontiers in Aquaculture, vol. 2, 2023, Art. no. 1088072.

[27] C. Jhunkeaw, N. Khongcharoen, N. Rungrueng, P. Sangpo, W. Panphut, A. Thapinta, S. Senapin, S. St-Hilaire, and H. T. Dong, “Ozone nanobubble treatment in freshwater effectively reduced pathogenic fish bacteria and is safe for Nile tilapia (Oreochromis niloticus),” Aquaculture, vol. 534, 2021, Art. no. 736286.

[28] S. M. H. Al-Shammari, S. A. Mustafa, and A. M. Kane, “Evaluation the Ozone Treatment to Control the Infection of Saprolegniasis in Cyprinus carpio L,” Journal of Physics: Conference Series, vol. 1294, no. 6, 2019, Art. no. 062049.

[29] P. Pal and A. Kioka, “Micro and nanobubbles enhanced ozonation technology: A synergistic approach for pesticides removal,” Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, vol. 24, no. 2, 2025, Art. no. e70133.

[30] P. Pal, A. Joshi, and H. Anantharaman, “Nanobubble ozonation for waterbody rejuvenation at different locations in India: A holistic and sustainable approach,” Results in Engineering, vol. 16, 2022, Art. no. 100725.

[31] V. T. Trang, P. T. Giang, V. Stejskal, E. Sivaramasamy, P. T. Thanh, N. T. Nguyen, P. T. Binh, and D. T. Lua, “Nanobubbles of oxygen and ozone are effective tools for pathogen treatment and for improving the survival rates of common carp larvae (Cyprinus carpio) – A case study,” Aquaculture, vol. 601, 2025, Art. no. 742292.

[32] R. B. Baird, Standard methods for the examination of water and wastewater, 23rd ed, Washington (DC): American Public Health Association, 2017.

[33] B. Q. Te, Aquatic animal pathology, Research Institute for Aquaculture No.1. (In Vietnamese), 2006.

[34] D. T. Hoa, B. Q. Te, N. H. Dung, and N. T. Muoi, Aquatic animal pathology, Agriculture Publishing House, (In Vietnamese), 2004.

[35] N. H. Nghia, N. T. Nguyen, P. T. Binh, L. T. May, T. T. Huy, P. T. Giang, S. St-Hilaire, and P. T. Van, “Effect of nanobubbles (oxygen, ozone) on the Pacific white shrimp (Penaeus vannamei), Vibrio parahaemolyticus and water quality under lab conditions,” Fisheries and Aquatic Sciences, vol. 25, no. 8, pp. 429–440, 2022.

[36] B. L. Brazil, S. Summerfelt, and G. S. Libey, “Application of ozone to recirculating aquaculture systems,” In Successes and Failures in Commercial Recirculating Aquaculture, Conference Proceedings, Northeast Regional Agricultural Engineering Service, Ithaca, NY, 1996, pp. 373–389.

[37] A. Spiliotopoulou, P. Rojas-Tirado, R. K. Chhetri, K. M. S. Kaarsholm, R. Martin, P. B. Pedersen, L. F. Pedersen, and H. R. Andersen, “Ozonation control and effects of ozone on water quality in recirculating aquaculture systems,” Water Research, vol. 133, pp. 289–298, 2018.

[38] K. Imaizumi, S. Tinwongger, H. Kondo, and I. Hirono, “Disinfection of an EMS/AHPND strain of Vibrio parahaemolyticus using ozone nanobubbles,” Journal of Fish Diseases, vol. 41, no. 4, pp. 725–727, 2018.

[39] S. O. Fernandes, S. S. Kulkarni, R. R. Shirodkar, S. V. Karekar, R. P. Kumar, R. A. Sreepada, C. Vogelsang, and P. A. Loka Bharathi, “Water quality and bacteriology in an aquaculture facility equipped with a new aeration system,” Environmental Monitoring and Assessment, vol. 164, no. 1, pp. 81–92, 2010.

[40] W. P. Maia, M. S. Owatari, N. I. Fernandes, L. O. M. Del Guerra, T. Soligo, J. L. P. Mouriño, and M. L. Martins, “Effects of a commercial multi-strain bioremediator on the growth and microbial community of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) under biofloc conditions: A field study,” Aquaculture Science and Management, vol. 2, no. 1, 2025, Art. no. 3.

[41] S. M. Hamad and A. M. Sana'a, “Effect of ozonated water treatment on clinical signs, survival rate and histopathological alterations in common carp, Cyprinus carpio L. infected with Saprolegnia spp,” Pakistan Journal of Biotechnology, vol. 15, no. 2, pp. 273-281, 2018.

[42] H. H. Mahboub, “Mycological and histopathological identification of potential fish pathogens in Nile tilapia,” Aquaculture, vol. 530, 2021, Art. no. 735849.

[43] E. Thoen, Ø. Evensen, and I. Skaar, “Pathogenicity of Saprolegnia spp. to Atlantic salmon, Salmo salar L., eggs,” Journal of Fish Diseases, vol. 34, no. 8, pp. 601–608, 2011.




DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.14248

Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved