ĐÁNH GIÁ HOẠT TÍNH KHÁNG KHUẨN VÀ  GÂY ĐỘC CHỌN LỌC TẾ BÀO UNG THƯ CỦA VI NẤM PHÂN LẬP TỪ TRẦM TÍCH ĐẦM PHÁ TAM GIANG (HUẾ)

Nguyễn Thị Ngọc Anh; Trần Thị Hồng; Nguyễn Thị Phương Thảo; Nguyễn Thị Hương; Nguyễn Thành Chung; Đinh Thị Thu Lê

doi:10.34238/tnu-jst.14405

ĐÁNH GIÁ HOẠT TÍNH KHÁNG KHUẨN VÀ GÂY ĐỘC CHỌN LỌC TẾ BÀO UNG THƯ CỦA VI NẤM PHÂN LẬP TỪ TRẦM TÍCH ĐẦM PHÁ TAM GIANG (HUẾ)

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 30/12/25 Ngày hoàn thiện: 24/06/26 Ngày đăng: 25/06/26

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Ngọc Anh, Trường Đại học Mở Hà Nội
2. Trần Thị Hồng , Viện Nghiên cứu Khoa học Miền Trung - Bảo tàng Thiên nhiên Việt Nam (VAST)
3. Nguyễn Thị Phương Thảo, Trường Đại học Mở Hà Nội
4. Nguyễn Thị Hương, Trường Đại học Mở Hà Nội
5. Nguyễn Thành Chung, Trường Đại học Mở Hà Nội
6. Đinh Thị Thu Lê, Trường Đại học Mở Hà Nội

Tóm tắt

Nghiên cứu này đặt mục tiêu sàng lọc các chủng vi nấm phân lập từ trầm tích phá Tam Giang (thành phố Huế) nhằm đánh giá tiềm năng tạo chất có hoạt tính kháng khuẩn và gây độc tế bào ung thư. Mẫu trầm tích được thu thập, phân lập 74 chủng vi nấm và đánh giá khả năng kháng khuẩn bằng thử nghiệm đối kháng trên 6 chủng vi khuẩn gây bệnh kiểm định. Các chủng có triển vọng tiếp tục được đánh giá tác động lên tế bào ung thư gan HepG2, ung thư vú MCF-7 và tế bào thường HEK293T. Kết quả cho thấy 9/74 chủng có khả năng kháng 1–6 chủng vi khuẩn; trong đó 2 chủng đồng thời ức chế HepG2 và MCF-7 nhưng không ảnh hưởng HEK293T. Chủng TGCB Sa3 ức chế cả 6 chủng vi khuẩn với vòng kháng khuẩn 8,6–31,9 mm, gây độc 2 dòng tế bào ung thư khảo sát và không gây độc tế bào thường. Dựa trên đặc tính sinh học và giải trình tự vùng gen ITS, chủng được định danh là Aspergillus flavo furcatis TGCB Sa3. Kết quả mở ra hướng khai thác vi nấm từ hệ đầm phá như một nguồn tác nhân kháng khuẩn và chống ung thư tiềm năng.

Từ khóa

Phá Tam Giang; Vi nấm; Kháng khuẩn; Tế bào ung thư; Aspergillus

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] S. J. Giovannoni et al., “Genome streamlining in a cosmopolitan oceanic bacterium,” Science, vol. 309, pp. 1242-1245, 2005.

[2] K. S. Davies-Vollum, Z. Zhang, and A. Agyekumhene, “Impacts of lagoon opening and implications for coastal management: case study from Muni-Pomadze lagoon, Ghana,” Journal of Coastal Conservation, vol. 23, pp. 293-301, 2019.

[3] R. Ghai et al., “Metagenomes of Mediterranean Coastal Lagoons,” Scientific Reports, vol. 2, 2012, Art. no. 490.

[4] A. Y. Zamora-Quintero, M. Torres-Beltrán, D. G. Guillén Matus, I. Oroz-Parra, and N. Millán-Aguiñaga, "Rare actinobacteria isolated from the hypersaline Ojo de Liebre Lagoon as a source of novel bioactive compounds with biotechnological potential," Microbiology, vol. 168, no. 2, 2022, Art. no. 001144.

[5] S. Al-Amoudi, "Bioprospecting Sediments from Red Sea Coastal Lagoons for Microorganisms and Their Antimicrobial Potential," In Partial Fulfillment of the Requirements for the Degree of Doctor of Philosophy in Science, King Abdullah University of Science and Technology Thuwal, Kingdom of Saudi Arabia, 2016.

[6] S. Al-Amoudi et al., "Bioprospecting Red Sea Coastal Ecosystems for Culturable Microorganisms and Their Antimicrobial Potential," Mar. Drugs, vol. 14, 2016, Art. no. 165.

[7] L. M. Homero et al., “Bioprospecting of fungi with antiproliferative activity from the mangrove sediment of the Tampamachoco coastal lagoon, Veracruz, Mexico,” Sci. fungorum, vol. 48, pp. 53-60, 2018.

[8] O. F. Davies-Bolorunduro, I. A. Adeleye, M. O. Akinleye, and P. G. Wang, "Anticancer potential of metabolic compounds from marine actinomycetes isolated from Lagos Lagoon sediment," Journal of Pharmaceutical Analysis, vol. 9, 2019, Art. no. 201e208.

[9] C. R. Flores et al., "Evaluation of antimicrobial and antiproliferative activities of Actinobacteria isolated from the saline lagoons of northwestern Peru," PLoS ONE, vol. 16, no. 9, 2021, Art. no. e0240946.

[10] W. H. Gerwick and A. M. Fenner, “Drug discovery from marine microbes,” Microbl. Ecol., vol. 65, pp. 800-806, 2013.

[11] F. Ameen, S. AlNadhari, and A. A. Al-Homaidan, “Marine microorganisms as an untapped source of bioactive compounds,” Saudi J. Biol. Sci., vol. 28, no. 1, pp. 224-231, 2021.

[12] L. Jin, C. Quan, X. Hou, and S. Fal, “Potential Pharmacological Resources: Natural Bioactive Compounds from Marine-Derived Fungi,” Mar. Drugs, vol. 14, no. 4, 2016, Art. no. 76.

[13] J. M. T. Hamilton-Miller, “Development of the semi-synthetic penicillins and cephalosporins,” International Journal of Antimicrobial Agents, vol. 31, pp. 189-192, 2008.

[14] E. N. Bubnova, M. L. Georgieva, and O. A. Grum-Grzhimailo, “Method for isolation and enumeration of fungi developing in marine sediments,” Microbiology, vol. 87, no. 6, pp. 777-782, 2018.

[15] F. Hadacek and H. Greger, “Test of antifungal natural products methodolagies, comparability of result and assay choise,” Phytochem. Anal., vol. 11, no. 3, pp. 137-147, 2000.

[16] A. Monks, D. Scudiero, P. Skehan et al., “Feasibility of a high-flux anticancer drug screen using a diverse panel of cultured human tumor cell lines,” J. Natl. Cancer Inst., vol. 83, no. 11, pp. 757-766, 1991.

[17] P. Skehan et al., "New colorimetric cytotoxicity assay for anticancer-drug screening,'' J. Natl. Cancer Inst., vol. 82, no. 13, pp. 1107-1112, 1990.

[18] T. J. White, T. Bruns, S. Lee, and J. W. Taylor, “Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics,” in PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J. Sninsky, and T. J. White, Eds. San Diego, CA, USA: Academic Press, 1990, pp. 315-322.

[19] O. Nduka, Modern Industrial Microbiology and Biotechnology, Science Enfield, USA, 2007, pp. 429-453.

[20] Q. U. Nguyen, P. C. Le, T. H. Dinh, amd H. M. Q. Nguyen, “Screening of anticancer compounds from actinomycetes isolated from Cat Ba National Park,” VNU Journal of Science: Natural Sciences and Technology, vol. 27, pp. 271-278, 2011.

[21] Q. Li et al., “Peniciphenalenins A- F from the culture of a marine-associated fungus Penicillium sp. ZZ901,” Phytochemistry, vol. 152, pp. 53-60, 2018.

[22] W. Wang et al., “Chlorinated azaphilone pigments with antimicrobial and cytotoxic activities isolated from the deep sea derived fungus Chaetomium sp. NA-S01-R1,” Mar. Drugs, vol. 16, 2018, Art. no. 61.

[23] H. M. T. Le et al., “Chemical Composition and Biological Activities of Metabolites from the Marine Fungi Penicillium sp. Isolated from Sediments of Co To Island Vietnam,” Molecules, vol. 24, 2019, Art. no. 3830.

[24] S. Y. Bae et al., “Antitumor Activity of Asperphenin A, a Lipopeptidyl Benzophenone from Marine-Derived Aspergillus sp. Fungus, by Inhibiting Tubulin Polymerization in Colon Cancer Cells,” Mar. Drugs, vol. 18, 2020, Art. no. 110.

[25] P. Xu et al., “A new aquatic pathogen inhibitor produced by the marine fungus Aspergillus sp. LS116,” Aquaculture, vol. 520, 2020, Art. no. 734670.

[26] A. C. Batista and H. da S. Maia, “Alguns Aspergillales de contaminação,” Anais da Sociedade de Biologia de Pernambuco, vol. 13, no. 1, pp. 91-100, 1955.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.14405

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ