KHẢO SÁT TÁC DỤNG HIỆP ĐỒNG CỦA THỰC KHUẨN THỂ HQ02  KẾT HỢP VỚI KHÁNG SINH NHÓM AMINOGLYCOSIDE  ỨC CHẾ VI KHUẨN Escherichia coli O10:K5:H4

Phạm Khánh Nguyên Huân; Nguyễn Huỳnh Hương Giang; Hà Thị Kim Quy

doi:10.34238/tnu-jst.14686

KHẢO SÁT TÁC DỤNG HIỆP ĐỒNG CỦA THỰC KHUẨN THỂ HQ02 KẾT HỢP VỚI KHÁNG SINH NHÓM AMINOGLYCOSIDE ỨC CHẾ VI KHUẨN Escherichia coli O10:K5:H4

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 29/01/26 Ngày hoàn thiện: 03/06/26 Ngày đăng: 05/06/26

Các tác giả

1. Phạm Khánh Nguyên Huân , Đại học Cần Thơ
2. Nguyễn Huỳnh Hương Giang, Đại học Cần Thơ
3. Hà Thị Kim Quy, Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Kháng kháng sinh hiện nay là một trong những thách thức lớn đối với sức khỏe toàn cầu, đặc biệt với các vi khuẩn Gram âm như Escherichia coli − nhóm vi khuẩn có nhiều cơ chế kháng thuốc phức tạp. Nghiên cứu này tập trung phân lập thực khuẩn thể đặc hiệu với E. coli O10:K5:H4 và đánh giá tác dụng hiệp đồng khi kết hợp với kháng sinh nhóm aminoglycoside nhằm tăng cường hiệu quả ức chế vi khuẩn. Thực khuẩn thể HQ02 được phân lập thành công từ mẫu phân gà, có mật số đạt 1,3×10¹⁰ PFU/mL và tính đặc hiệu cao với E. coli O10:K5:H4. Phân tích genome cho thấy HQ02 có kích thước 38.875 bp, có hàm lượng GC 49,9%, thuộc Chi Kayfunavirus và là thực khuẩn thể độc với hoạt tính sinh tan. Kết quả khảo sát tác dụng hiệp đồng chỉ ra rằng sự kết hợp giữa thực khuẩn thể HQ02 với gentamicin nồng độ 1,0 µg/mL tạo hiệu quả ức chế vi khuẩn vượt trội so với sử dụng đơn lẻ, trong khi amikacin không thể hiện tác dụng hiệp đồng rõ rệt. Đặc biệt, hiệu quả không phụ thuộc vào MOI trong khoảng 1-10, cho phép giảm liều lượng thực khuẩn thể mà vẫn duy trì hiệu quả điều trị. Nghiên cứu này mở ra hướng tiếp cận mới trong điều trị nhiễm khuẩn kháng thuốc.

Từ khóa

Thực khuẩn thể; Escherichia coli O10:K5:H4; Tác dụng hiệp đồng; Aminoglycoside; Gentamicin

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] C. J. L. Murray, K. S. Ikuta, F. Sharara, L. Swetschinski, G. R. Aguilar, A. Gray, and N. Tasak, “Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis,” Lancet, vol. 399, no. 10325, pp. 629-655, 2022.

[2] E. Tacconelli, E. Carrara, A. Savoldi, S. Harbarth, M. Mendelson, D. L. Monnet, and A. Zorzet, “Discovery, research, and development of new antibiotics: the WHO priority list of antibiotic-resistant bacteria and tuberculosis,” Lancet Infect. Dis., vol. 18, no. 3, pp. 318-327, 2018.

[3] J. T. Poolman and M. Wacker, “Extraintestinal pathogenic Escherichia coli, a common human pathogen: challenges for vaccine development and progress in the field,” J. Infect. Dis., vol. 213, no. 1, pp. 6-13, 2016.

[4] M. Soundararajan, R. von Bünau, and T. A. Oelschlaeger, “K5 capsule and lipopolysaccharide are important in resistance to T4 phage attack in probiotic E. coli strain Nissle 1917,” Front. Microbiol., vol. 10, 2019, Art. no. 2783.

[5] N. Allocati, M. Masulli, M. F. Alexeyev, and C. Di Ilio, “Escherichia coli in Europe: an overview,” Int. J. Environ. Res. Public Health, vol. 10, no. 12, pp. 6235-6254, 2013.

[6] C. A. Suttle, “Marine viruses—major players in the global ecosystem,” Nat. Rev. Microbiol., vol. 5, no. 10, pp. 801-812, 2007.

[7] S. A. Strathdee, G. F. Hatfull, V. K. Mutalik, and R. T. Schooley, “Phage therapy: From biological mechanisms to future directions,” Cell, vol. 186, no. 1, pp. 17-31, 2023.

[8] S. J. Labrie, J. E. Samson, and S. Moineau, “Bacteriophage resistance mechanisms,” Nat. Rev. Microbiol., vol. 8, no. 5, pp. 317-327, 2010.

[9] C. Torres-Barceló and M. E. Hochberg, “Evolutionary rationale for phages as complements of antibiotics,” Trends Microbiol., vol. 24, no. 4, pp. 249-256, 2016.

[10] K. M. Krause, A. W. Serio, T. R. Kane, and L. E. Connolly, “Aminoglycosides: an overview,” Cold Spring Harb. Perspect. Med., vol. 6, no. 6, 2016, Art. no. a027029.

[11] M. S. Ramirez and M. E. Tolmasky, “Aminoglycoside modifying enzymes,” Drug Resist. Updat., vol. 13, no. 6, pp. 151-171, 2010.

[12] T. Morrisette, R. Kebriaei, K. L. Lev, S. Morales, and M. J. Rybak, “Bacteriophage therapeutics: a primer for clinicians on phage‐antibiotic combinations,” Pharmacother. J. Hum. Pharmacol. Drug Ther., vol. 40, no. 2, pp. 153-168, 2020.

[13] M. S. Alharbi, S. A. Moursi, A. Alshammari, R. Aboras, E. Rakha, A. Hossain,... and M. Saleem, “Multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa: Pathogenesis, resistance mechanisms, and novel therapeutic strategies,” Virulence, vol. 16, no. 1, 2025, Art. no. 2580160.

[14] T. A. N. Tong, C. T. Nguyen, C. H. Nguyen, and T. T. N. Nguyen, “Studying antimicrobial activity of bacteriophages onmulti-antibiotic resistant Escherichia coli isolated from tra fish (Pangasius hypophthalmus),” TNU J. Sci. Technol., vol. 226, no. 05, pp. 147-155, 2021.

[15] T. T. Nguyen, D. A. Vu, and T. H. Pham, “Isolation of Escherichia coli bacteriophage from water environment by lysis method,” Journal of Medical Research, vol. 149, no. 1, pp. 10-17, 2022.

[16] N. H. Pham-Khanh, H. Sunahara, H. Yamadeya, M. Sakai, T. Nakayama, H. Yamamoto, and K. Kamei, “Isolation, characterisation and complete genome sequence of a Tequatrovirus phage, Escherichia phage KIT03, which simultaneously infects Escherichia coli O157: H7 and Salmonella enterica,” Curr. Microbiol., vol. 76, pp. 1130-1137, 2019.

[17] M. S. Ramirez and M. E. Tolmasky, “Amikacin: uses, resistance, and prospects for inhibition,” Molecules, vol. 22, no. 12, 2017, Art. no. 2267.

[18] Z. P. Bulman, R. Cirz, D. Hildebrandt, T. Kane, Z. Rosario, K. Wlasichuk, and L. D. Andrews, “Unraveling the gentamicin drug product complexity reveals variation in microbiological activities and nephrotoxicity,” Antimicrob. Agents Chemother., vol. 64, no. 9, 2020, Art. no. e00533-20.

[19] Á. Kerek, I. Román, Á. Szabó, D. Kovács, G. Kardos, L. Kovács, and Á. Jerzsele, “Antibiotic resistance genes in Escherichia coli–literature review,” Crit. Rev. Microbiol., vol. 52, pp. 1-35, 2025.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.14686

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ