TUYỂN CHỌN VI KHUẨN HÒA TAN LÂN VÔ CƠ CÓ KHẢ NĂNG CHỊU MẶN VÀ CHỊU ACID TỪ ĐẤT VÙNG RỄ LÚA HOANG TẠI THÀNH PHỐ CẦN THƠ

Nguyễn Thị Hồng Xuyên; Đỗ Tấn Khang; Trần Thị Giang

doi:10.34238/tnu-jst.14951

TUYỂN CHỌN VI KHUẨN HÒA TAN LÂN VÔ CƠ CÓ KHẢ NĂNG CHỊU MẶN VÀ CHỊU ACID TỪ ĐẤT VÙNG RỄ LÚA HOANG TẠI THÀNH PHỐ CẦN THƠ

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 04/03/26 Ngày hoàn thiện: 07/07/26 Ngày đăng: 08/07/26

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Hồng Xuyên, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ; Trường Đại học Kỹ thuật - Công nghệ Cần Thơ
2. Đỗ Tấn Khang, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
3. Trần Thị Giang , Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Từ 25 mẫu đất vùng rễ lúa hoang tại năm quận, huyện thuộc thành phố Cần Thơ (gồm Thới Lai, Ô Môn, Thốt Nốt, Phong Điền và Cờ Đỏ), 86 chủng vi khuẩn hòa tan phosphate (PSB) đã được phân lập trên môi trường NBRIP bổ sung Ca₃(PO₄)₂, thể hiện hình thái khuẩn lạc đa dạng. Khả năng hòa tan phosphate được đánh giá thông qua chỉ số hòa tan phosphate (PSI) vào các ngày 5; 10 và 15. Ở ngày 10, giá trị PSI dao động từ 1,04 đến 5,73; trong đó 20 chủng có PSI ≥ 2,0 được chọn để thực hiện các thí nghiệm tiếp theo. Kết quả định lượng cho thấy 5 chủng (CD4.2, OM8.2, OM12.6, TN18.2 và TN18.3) thể hiện hàm lượng lân hòa tan cao nhất, dao động từ 289,78 đến 1.213,5 mg L^-1, và được lựa chọn để đánh giá khả năng chịu mặn, cũng như chịu pH thấp. Tất cả các chủng tuyển chọn đều có khả năng sinh trưởng ở nồng độ 1,0% NaCl. Ở mức NaCl 0,7%, các chủng này vẫn duy trì lượng lân hòa tan đạt 150-300 mg L^-1. Ngoài ra, các chủng vi khuẩn thể hiện khả năng hòa tan lân tối ưu ở khoảng pH trung tính đến acid nhẹ (5,0-7,0) và vẫn duy trì hoạt tính trung bình (100-200 mg L^-1) trong điều kiện acid mạnh (pH 3,0-4,0). Dựa trên phân tích trình tự gene 16S rRNA, các chủng CD4.2, OM8.2 và TN18.3 được định danh là Klebsiella aerogenes; chủng OM12.6 là Bacillus cereus; và chủng TN18.2 là Enterobacter ludwigii.

Từ khóa

Chỉ số hòa tan lân; Vi khuẩn hòa tan lân; Đất vùng rễ; Chịu mặn và chịu acid; Lúa hoang

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] E. T. Alori, B. R. Glick, and O. O. Babalola, “Microbial phosphorus solubilization and its potential for use in sustainable agriculture,” Frontiers in Microbiology, vol. 8, 2017, Art. no. 971, doi: 10.3389/fmicb.2017.00971.

[2] S. Mehnaz, T. Kowalik, B. Reynolds, and G. Lazarovits, “Growth promoting effects of corn (Zea mays) bacterial isolates under greenhouse and field conditions,” Soil Biology and Biochemistry, vol. 42, no. 10, pp. 1848-1856, 2010, doi: 10.1016/j.soilbio.2010.07.003.

[3] E. T. Alori, O. O. Babalola, and C. Prigent-Combaret, “Impacts of microbial inoculants on the growth and yield of maize plant,” The Open Agriculture Journal, vol. 13, pp. 1-8, 2019, doi: 10.2174/1874331501913010001.

[4] J. Dhillon, G. Torres, E. Driver, B. Figueiredo, and W. R. Raun, “World phosphorus use efficiency in cereal crops,” Agronomy Journal, vol. 109, no. 4, pp. 1670-1677, 2017, doi: 10.2134/agronj2016.08.0483.

[5] A. Kumar, S. Singh, A. K. Gaurav, S. Srivastava, and J. P. Verma, “Harnessing phosphate-solubilizing microorganisms for mitigation of nutritional and environmental stresses, and sustainable crop production,” Planta, vol. 61, no. 5, 2025, doi: 10.1007/s00425-025-04669-2.

[6] D. Torres-Cuesta, D. Mora-Motta, J. P. Chavarro-Bermeo, A. Olaya-Montes, C. Vargas-Garcia, R. Bonilla, and G. Estrada-Bonilla, “Phosphate-solubilizing bacteria with low-solubility fertilizer improve soil P availability and yield of Kikuyu grass,” Microorganisms, vol. 11, 2023, Art. no. 1748, doi: 10.3390/microorganisms11071748.

[7] Y. Lei, Y. Kuai, M. Guo, H. Zhang, Y. Yuan, and H. Hong, “Phosphate-solubilizing microorganisms for soil health and ecosystem sustainability: a forty-year scientometric analysis (1984–2024),” Frontiers in Microbiology, vol. 16, 2025, Art. no. 1546854, doi: 10.3389/fmicb.2025.1546852.

[8] D. T. Lam, B. C. Buu, N. T. Lang, K. Toriyama, I. Nakamura, and R. Ishikawa, “Genetic diversity among perennial wild rice Oryza rufipogon Griff., in the Mekong Delta,” Ecology and Evolution, vol. 9, pp. 2964-2977, 2019, doi: 10.1002/ece3.4978.

[9] C. D. C. Barillot, C. O. Sarde, V. Bert, E. Tarnaud, and N. Cochet, “A standardized method for the sampling of rhizosphere and rhizoplan soil bacteria associated to a herbaceous root system,” Annals of Microbiology, vol. 63, pp. 471-476, 2013, doi: 10.1007/s13213-012-0491-y.

[10] C. S. Nautiyal, “An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms,” FEMS microbiology letters, vol. 170, pp. 265-270, 1999, doi: 10.1111/j.1574-6968.1999.tb13383.x.

[11] S. P. Lapage, J. E. Shelton, T. G. Mitchell, and A. R. Mackenzie, “Culture collections and the preservation of bacteria,” Methods in Microbiology, pp. 135-228, 1970, doi: 10.1016/S0580-9517(08)70540-3.

[12] J. G. Cappuccino and C. Welsh, Instructor’s Guide for Microbiology: A Laboratory Manual, Pearson, 2020, pp. 19-21.

[13] E. A. P. Teles, J. F. Xavier, F. S. Arcênio, R. L. Amaya, J. V. S. Goncalves, L. F. M. Rouws, E. Zonta, and I. S. Coelho, “Characterization and evaluation of potential halotolerant phosphate solubilizing bacteria from Salicornia fruticosa rhizosphere,” Frontiers in Plant Science, vol. 14, pp. 1-11, 2024, doi: 10.3389/fpls.2023.1324056.

[14] I. Mahdi, N. Fahsi, M. Hafidi, A. Allaoui, and L. Biskri, “Plant growth enhancement using rhizospheric halotolerant phosphate solubilizing bacterium Bacillus licheniformis QA1 and Enterobacter asburiae QF11 isolated from Chenopodium quinoa willd,” Microorganisms, vol. 8, no. 6, 2020, Art. no. 948, doi: 10.3390/microorganisms8060948.

[15] Y. P. Chen, P. D. Rekha, A. B. Arun, F. T. Shen, W. A. Lai, and C. C. Young, “Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities,” Applied Soil Ecology, vol. 34, pp. 33-41, 2006, doi: 10.1016/j.apsoil.2005.12.002.

[16] J. Murphy and J. P. Riley, “A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters,” Analytica Chimica Acta, vol. 27, pp. 31-36, 1962, doi: 10.1016/S0003-2670(00)88444-5.

[17] A. Suleimanova, D. Bulmakova, L. Sokolnikova, E. Egorova, D. Itkina, O. Kuzminova, A. Gizatullina, and M. Sharipova, “Phosphate solubilization and plant growth promotion by Pantoea brenneri soil isolates,” Microorganisms, vol. 11, 2023, Art. no. 1136, doi: 10.3390/microorganisms11051136.

[18] B. G. Stanton and A. S. Robbert, Plant molecular biology manual, Springer, p. 180, 2000, doi: 10.1007/978-94-011-4217-5.

[19] W. Zenelt, A. Pruciak-Nowak, and K. Krawczyk, “Plant growth promotion of crops using the phosphate solubilizing bacterial strains derived from insects,” Journal of Plant Protection Research, vol. 64, no. 3, pp. 321-335, 2024, doi: 10.24425/jppr.2024.151259.

[20] L. Fenta and F. Assefa, “Isolation and characterization of phosphate solubilizing bacteria from tomato (Solanum L.) rhizosphere and their effect on growth and phosphorus uptake of the host plant under green house experiment,” International Journal of Advanced Research, vol. 5, no. 01, pp. 2320-5407, 2017.

[21] C. Zhang, H. Chen, Y. Dai, Y. Chen, Y. Tian, and Z. Huo, “Isolation and screening of phosphorus solubilizing bacteria from saline alkali soil and their potential for Pb pollution remediation,” Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, vol. 11, 2023, Art. no. 1134310, doi: 10.3389/fbioe.2023.1134310.

[22] L. Pan and B. Cai, “Phosphate-solubilizing bacteria: Advances in their physiology, molecular mechanisms, and microbial community effects,” Microorganisms, vol. 11, 2023, Art. no. 2904, doi: 10.3390/microorganisms11122904.

[23] N. Oteino, R. D. Lally, S. Kiwanuka, A. Lloyd, D. Ryan, K. J. Germaine, and D. N. Dowling, “Plant growth promotion induced by phosphate solubilizing endophytic Pseudomonas isolates,” Frontiers in Microbiology, vol. 6, 2015, Art. no. 745, doi: 10.3389/fmicb.2015.00745.

[24] C. Zhang, H. Chen, Y. Dai, Y. Chen, Y. Tian, and Z. Huo, “Isolation and screening of phosphorus solubilizing bacteria from saline alkali soil and their potential for Pb pollution remediation,” Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, vol. 11, 2023, Art. no. 1134310, doi: 10.3389/fbioe.2023.1134310.

[25] H. Etesami and G. A. Beattie, “Mining halophytes for plant growth-promoting halotolerant bacteria to enhance the salinity tolerance of non-halophytic crops,” Frontiers in Microbiology, vol. 9, 2018, Art. no. 148, doi: 10.3389/fmicb.2018.00148.

[26] Z. Yang, Z. Liu, F. Zhao, L. Yu, W. Yang, M. Si, and Q. Liao, “Organic acid, phosphate, sulfate and ammonium co-metabolism releasing insoluble phosphate by Klebsiella aerogenes to simultaneously stabilize lead and cadmium,” Journal of Hazardous Materials, vol. 443, 2022, Art. no. 130378, doi: 10.1016/j.jhazmat.2022.130378.

[27] B. N. Fitriatin, D. A. Fauziah, R. Hindersah, and T. Simarmata, “The influence of different acidic conditions on the plant growth-promoting rhizobacteria activity of phosphate solubilizing bacteria,” KnE Life Sciences, pp. 72-78, 2022, doi: 10.18502/kls.v7i3.11108.

[28] S. Kouas, S. Djedidi, I. B. S. Debez, I. Sbissi, N. M. Alyami, and A. M. Hirsch, “Heliyon Halotolerant phosphate solubilizing bacteria isolated from arid area in Tunisia improve P status and photosynthetic activity of cultivated barley under P shortage,” Heliyon, vol. 10, 2024, Art. no. e38653, doi: 10.1016/j.heliyon.2024.e38653.

[29] S. M. Kang, M. A. Khan, M. Hamayun, L. R. Kim, E. H. Kwon, Y. S. Kang, K. Y. Kim, J. J. Park, and I. J. Lee, “Phosphate-solubilizing Enterobacter ludwigii AFFR02 and Bacillus megaterium MJ1212 rescues alfalfa’s growth under post-drought stress,” Agriculture, vol. 11, 2021, Art. no. 485, doi: 10.3390/agriculture11060485.

[30] A. Adhikari, K. E. Lee, M. A. Khan, S. M. Kang, B. Adhikari, M. Imran, R. Jan, K. M. Kim, and I. J. Lee, “Effect of silicate and phosphate solubilizing rhizobacterium Enterobacter ludwigii GAK2 on Oryza sativa L. under cadmium stress,” Journal of Microbiology and Biotechnology, vol. 30, no. 1, pp. 118-126, 2020, doi: 10.4014/jmb.1906.06010.

[31] Q. Li, Q. Zhang, S. Liao, D. Xing, Y. Xiao, D. Zhou, and Q. Yang, “Mechanism of lead adsorption by a Bacillus cereus strain with indole-3-acetic acid secretion and inorganic phosphorus dissolution functions,” BMC microbiology, vol. 23, 2023, doi: 10.1186/s12866-023-02795-z.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.14951

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ