HOẠT TÍNH KHÁNG VIÊM VÀ CHỐNG OXY HÓA IN VITRO  CỦA CAO CHIẾT CÂY ĐẠI HOÀNG RHEUM OFFICINALE

Phạm Thu Hà; Ngũ Trường Nhân

doi:10.34238/tnu-jst.15090

HOẠT TÍNH KHÁNG VIÊM VÀ CHỐNG OXY HÓA IN VITRO CỦA CAO CHIẾT CÂY ĐẠI HOÀNG RHEUM OFFICINALE

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 16/03/26 Ngày hoàn thiện: 21/05/26 Ngày đăng: 22/05/26

Các tác giả

1. Phạm Thu Hà, Viện Lâm nghiệp và Phát triển bền vững - Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
2. Ngũ Trường Nhân , Trường Đại học Tây Nguyên

Tóm tắt

Bài báo đánh giá tác dụng kháng viêm thông qua khả năng ức chế sản sinh NO trên đại thực bào RAW264.7 và chống oxy hóa theo phương pháp bắt gốc tự do DPPH của cao chiết tổng (ĐH); các cao chiết phân đoạn: n-hexane (ĐHH), ethyl acetate (ĐHE) và methanol (ĐHM) từ thân rễ loài Rheum officinale đã được đánh giá theo phương pháp ức chế gốc tự do DPPH. Kết quả đánh giá hoạt tính kháng viêm và chống oxy hóa của các cao chiết thu nhận được từ thân rễ cây Đại hoàng Rheum officinale cho thấy cao chiết tổng (ĐH) có khả năng ức chế sản sinh NO mạnh và không gây độc cho cho tế bào với IC₅₀là 18,1 µg/mL. Đối với cao phân đoạn thì phân đoạn (ĐHH) và (ĐHE) biểu hiện hoạt tính kháng viêm tốt với giá trị IC₅₀ lần lượt là 53,7 µg/mL và 16,5 µg/mL. Trong các cao chiết phân đoạn, cao ethyl acetate (ĐHE) thể hiện hoạt tính chống oxy hóa tốt nhất với khả năng trung hòa gốc tự do SC là 79,17 ± 0,6%, tương ứng với giá trị SC₅₀ là 17,60 µg/mL. Các kết quả trên định hướng cho nghiên cứu sâu hơn về thành phần hóa học và hoạt tính kháng viêm, chống oxy hóa trong tương lai của loài Rheum officinale.

Từ khóa

Chi Rheum; Rheum officinale; In vitro; Kháng viêm; Kháng oxy hoá

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] D. Laveti, M. Kumar, R. Hemalatha, R. Sistla, V. G. M. Naidu, V. Talla, V. Verma, N. Kaur, and R. Nagpal, “Anti-inflammatory Treatments for Chronic Diseases: A Review,” Inflamm Allergy Drug Targets, vol. 12, no. 5, pp. 349-361, 2013.

[2] M. Y. Wang and C. Su, “Cancer preventive effect of Morinda citrifolia (Noni),” Ann N Y Acad Sci, vol. 952, no. 1, pp. 161-168, 2001.

[3] T. N. Chang, S. D. Jeng, C. C. Yi, C. Y. Lee, J. C. Liao, and M. M. Lee, “Ameliorative Effects of Scopoletin from Crossostephium chinensis against Inflammation Pain and Its Mechanisms in Mice,” Evidence Based Complementary and Alternative Medicine, vol. 2012, pp. 1-10, 2012.

[4] S. Sang, H. Kan, L. N. Guangming, W. Mingfu, and J. W. Jhoo, “Citrifolinin A, a new unusual iridoid with inhibition of activator protein-1 (AP-1) from the leaves of noni (Morinda citrifolia L.),” Science Direct, vol. 42, no. 10, pp. 1823-1825, 2001.

[5] E. T. B. Mohr and M. V. P. d. S. Nascimento, “Evidence That the Anti-Inflammatory Effect of Rubiadin-1-methyl Ether Has an Immunomodulatory Context,” Mediators Inflamm, 2020, Art. no. 6474168.

[6] Y. Dong, L. Zhang, Y. Jiang, J. Dai, L. Tang, and G Liu, “Emodin reactivated autophagy and alleviated inflammatory lung injury in mice with lethal endotoxemia,” Exp. Anim, vol. 68, no. 4, pp. 559-568, 2020.

[7] Z. Qing-xia, W. Hai-feng, G. Jian, N. Hai-jiang, C. Shi-lin, Y. Jun-shan, and X. Xu-dong, “Review of Rhubarbs: Chemistry and Pharmacology,” Chinese Herbal Medicines, vol. 5, no. 1, pp. 9-32, 2013.

[8] Agarwal, S. K. Singh, S. S. Lakshmi, V. Verma, S. Kumar, and Sushil, “Chemistry and Pharmacology of Rhubarb (Rheum species),” Journal of Scientific & Industrial Research, vol. 60, no. 1, pp. 1-9, 2001.

[9] E. M. Malik and C. E. Muller, “Anthraquinones as Pharmacological Tools and Drugs,” Medicinal Research Reviews, vol. 36, no. 4, pp. 705-748, 2016.

[10] Prateeksha, M. A. Yusuf, B. N. Singh, S. Sudheer, R. N. Kharwar, S. Siddiqui, A. M. Abdel-Azeem, L. F. Fraceto, K. Dashora, and V. K. Gupta, “Chrysophanol: A Natural Anthraquinone with Multifaceted Biotherapeutic Potential,” Biomolecules, vol. 9, 2019, Art. no. 68.

[11] H. Jeonga, H. Kim, and H. M. Kim, “Molecular mechanisms of anti-inflammatory effect of chrysophanol, an active component of AST2017-01 on atopic dermatitis in vitro models,” International Immunopharmacology, vol. 54, pp. 238-244, 2018.

[12] H. Su¨leyman, L. O. Demirezer, A. Kuruu¨zu¨m, Z. N. Banog˘lu, F. Go¨c¸er, and G. O8zbakir, “A. Gepdiremen, Antiinflammatory effect of the aqueous extract from Rumex patientia L. roots,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 65, pp. 141-148, 1999.

[13] S. J. Kim, M. C. Kim, B. J. Lee, D. H. Park, S. H. Hong, and J. Y. Um, “Anti-Inflammatory Activity of Chrysophanol through the Suppression of NF-κB/Caspase-1 Activation in Vitro and in Vivo,” Molecules, vol. 15, pp. 6436-6451, 2010.

[14] F. Li, S. C. Wang, X. Wang, Q. Y. Ren, W. Wang, G. W. Shang, L. Zhang, and S. H. Zhang, “Novel exploration of cathartic pharmacology induced by rhubarb,” China J Chin Mater Med, vol. 33, no. 4, pp. 481-484, 2008.

[15] Q. Huang, G. Lu, H. M. Shen, M. C. Chung, and C. N. Ong, “Anti- cancer properties of anthraquinones from rhubarb,” Med Res Review, vol. 27, no. 5, pp. 609-630, 2007.

[16] S. Malik, N. Sharma, U. K. Sharma, N. P. Singh, S. Bhushan, and M. Sharma, “Qualitative and quantitative analysis of anthraquinone derivatives in rhizomes of tissue culture-raised Rheum emodi Wall.,” Plants Journal of Plant Physiology, vol. 167, no. 9, pp. 749-756, 2010.

[17] M. S. Akhtar, M. Amin, M. Ahmad, and Alamgeer, “Hepatoprotective Effect of Rheum emodi Roots (Revandchini) và Akseer-e-Jigar Against Par acetamol-induced Hepatotoxicity in Rats,” Ethnobotanical Leaflets, vol. 13, pp. 310-315, 2009.

[18] X. Y. Xing, Y. L. Zhao, W. J. Kong, J. B. Wang, L. Jia, P. Zhang, D. Yan, Y. W. Zhong, R. S. Li, and X. H. Xiao, “Investigation of the “dose-time- response” relationships of rhubarb on carbon tetrachloride-induced liver injury in rats,” J Ethnopharmacol, vol. 135, no. 2, pp. 575-581, 2011.

[19] J. Han, D. Shim, W. Shin, K. Heo, S. Kwak, E. Sim, J. Jeong, T. Kang, and K. Lee, “Anti-Inflammatory Effect of Emodin via Attenuation of NLRP3 Inflammasome Activation,” Int. J. Mol. Sci., vol. 16, pp. 8102-8109, 2015.

[20] H. Xiong, J. Luo, W. Hou, H. Xiao, and Z. Yang, “The effect of emodin, an anthraquinone derivative extracted from the roots of Rheum tanguticum, against herpes simplex virus in vitro and in vivo,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 133, pp. 718-723, 2011.

[21] A. Fumio, “Inhibitory effects of hydrolyzable tannis from melastoma dodecandrum Lour on nitric oxide production by a murine macrophage-like cell line, RAW264.7, Activated with lipopolysaccharide and interferon-γ,” Biological and Pharmaceutical Bulletin, vol. 2, no. 6, pp.
647-653, 1999.

[22] M. D. Verena et al., “The Griess Assay: Suitable for a Bio-guided Fractionation of Anti-Inflammatory Plan Extracts,” Plant Med, vol. 64, no. 5, pp. 423-426, 1998.

[23] W. W. Brand, "Use of a Free Radical Method to Evaluate Antioxidant Activity,” Lebenm Wissu Technol, vol. 2, no. 1, pp. 25-30, 1995.

[24] S. Gorinstein, "Comparison of the contents of the main biochemical compounds and antioxidant activity of some Spanish olive oils as determined by four different radical scavenging tests,” Journal of Nutritional Biochemistry, vol. 14, pp. 154-159, 2003.

[25] A. Kumar, "Antioxidant Activity and Pharmacological Screening of Tinospora Cordifolia (Thunb.)," The Bioscan, vol. 8, no. 2, pp. 689-693, 2013.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.15090

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ