Chia sẻ bài báo qua Email NGHIÊN CỨU TỐI ƯU HÓA ĐIỀU KIỆN CHIẾT XUẤT SIÊU ÂM HỢP CHẤT POLYPHENOL TỪ LÁ SIM (RHODOMYRTUS TOMENTOSA (AITON) HASSK.) SỬ DỤNG PHƯƠNG PHÁP BỀ MẶT ĐÁP ỨNG
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 30/03/26 Ngày hoàn thiện: 29/06/26 Ngày đăng: 30/06/26Các tác giả
1. Vũ Thị Thu Lê
, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên2. Nguyễn Thị Lan, Công ty Cổ phần Thực phẩm Sữa TH
3. Lương Hùng Tiến, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
4. Trần Thị Thùy Dương, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
5. Nguyễn Thị Thủy, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
6. Lành Thị Ngọc, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
7. Nguyễn Thị Mai, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
8. Nguyễn Thúy Quỳnh, Đại học Thái Nguyên
9. Lê Xuân Duy, Viện Dược liệu - Bộ Y tế
Tóm tắt
Nghiên cứu này nhằm mục đích tối ưu hóa điều kiện chiết xuất polyphenol tổng từ lá cây Sim (Rhodomyrtus tomentosa (Ait.) Hassk.) sử dụng phương pháp chiết siêu âm. Kết hợp mô hình thí nghiệm của Box – Benhken và phương pháp đáp ứng bề mặt (RSM) đã xây dựng được mô hình tối ưu quy trình chiết xuất lá Sim. Hai hàm mục tiêu của mô hình là hiệu suất chiết (Y1) và hàm lượng polyphenol tổng (Y2). Các yếu tố công nghệ được nghiên cứu là nồng độ ethanol, công suất siêu âm, thời gian chiết và tỷ lệ chiết. Kết quả nghiên cứu cho thấy sự tương hợp dữ liệu thực nghiệm với mô hình đa thức bậc hai thông qua việc phân tích tương quan của mô hình hồi quy toán học. Theo mô hình xây dựng được, các điều kiện tối ưu đã được xác định là: nồng độ ethanol 65% (v/v), công suất siêu âm 183 (W), thời gian chiết 40 (phút) và tỷ lệ chiết là 20/1 (mL/g). Tại điều kiện này, hiệu suất chiết và hàm lượng polyphenol tổng đạt giá trị lần lượt là 9,28 ± 0,15% và 181,72 ± 1,91 (mg GAE/g chất khô).
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] J. Saising, A. Hiranrat, W. Mahabusarakam, M. Ongsakul, and S. P. Voravuthikunchai, “Rhodomyrtone from Rhodomyrtus tomentosa (Aiton) Hassk. as a natural antibiotic for staphylococcal cutaneous infections,” Journal of Health Science, vol. 54, no. 5, pp. 589-595, 2008.
[2] A. Hiranrat and W. Mahabusarakam, “New acylphloroglucinols from the leaves of Rhodomyrtus tomentosa,” Tetrahedron, vol. 64, no. 49, pp. 11193-11197, 2008.
[3] H. C. Ong and M. Nordiana, “Malay ethno-medico botany in Machang, Kelantan, Malaysia,” Fitoterapia, vol. 70, no. 5, pp. 502-513, 1999.
[4] D. Jeong, W. S. Yang, Y. Yang, G. Nam, J. H. Kim, D. H. Yoon, and J. Y. Cho, “In vitro and in vivo anti-inflammatory effect of Rhodomyrtus tomentosa methanol extract,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 146, no. 1, pp. 205-213, 2013.
[5] D. Salni, M. V. Sargent, B. W. Skelton, I. Soediro, M. Sutisna, A. H. White, and E. Yulinah, “Rhodomyrtone, an antibotic from Rhodomyrtus tomentosa,” Australian Journal of Chemistry, vol. 55, no. 3, pp. 229-232, 2002.
[6] S. Limsuwana and S. P. Voravuthikunchai, “Boesenbergia pandurata (Roxb.) Schltr., Eleutherine americana Merr. and Rhodomyrtus tomentosa (Aiton) Hassk. as antibiofilm producing and antiquorum sensing in Streptococcus pyogenes,” FEMS Immunology & Medical Microbiology, vol. 53, no. 3, pp. 429-436, 2008.
[7] C. Wen, J. Zhang, H. Zhang, C. S. Dzah, M. Zandile, Y. Duan, and X. Luo, “Advances in ultrasound assisted extraction of bioactive compounds from cash crops–A review,” Ultrasonics sonochemistry, vol. 48, pp. 538-549, 2018.
[8] Y. A. Bhadange, J. Carpenter, and V. K. Saharan, “A comprehensive review on advanced extraction techniques for retrieving bioactive components from natural sources,” ACS omega, vol. 9, no. 29, pp. 31274-31297, 2024.
[9] M. A. Bezerra, R. E. Santelli, E. P. Oliveira, and L. A. Escaleira, “Response surface methodology (RSM) as a tool for optimization in analytical chemistry,” Talanta, vol. 76, no. 5, pp. 965-977, 2008.
[10] V. L. Singleton, R. Orthofer, and R. M. Lamuela-Raventós, “Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of folinciocalteu reagent,” Methods in enzymology, vol. 299, pp. 152-178, 1999.
[11] N. Szpisják-Gulyás, A. N. Al -Tayawi, Z. H. Horváth, Z. László, S. Kertész, and C. J. A. A. Hodúr, “Methods for experimental design, central composite design and the Box–Behnken design, to optimise operational parameters: A review,” Acta Alimentaria, vol. 52, no. 4, pp. 521-537, 2023.
[12] M. Dent, V. Dragović-Uzelac, M. Penić, and B. Levaj, “The effect of extraction solvents, temperature and time on the composition and mass fraction of polyphenols in Dalmatian wild sage (Salvia officinalis L.) extracts,” Food technology and biotechnology, vol. 51, no. 1, pp. 84-91, 2013.
[13] L. Yang, Y. L. Cao, J. G. Jiang, Q. S. Lin, and L. Zhu, “Response surface optimization of ultrasound‐assisted flavonoids extraction from the flower of Citrus aurantium L. var. amara Engl,” Journal of separation science, vol. 33, no. 9, pp. 1349-1355, 2010.
[14] U. Muhammad, X. Zhu, Z. Lu, J. Han, J. Sun, and J. Saqib, “Effects of extraction variables on pharmacological activities of vine tea extract (Ampelopsis grossedentata),” International Journal of Pharmacology, vol. 14, no. 4, pp. 495-505, 2018.
[15] M. D. Catarino, A. M. Silva, N. Mateus, and S. M. Cardoso, “Optimization of phlorotannins extraction from Fucus vesiculosus and evaluation of their potential to prevent metabolic disorders,” Marine Drugs, vol. 17, no. 3, 2019, Art. no. 162.
[16] X. Guan and H. Yao, “Optimization of Viscozyme L-assisted extraction of oat bran protein using response surface methodology,” Food chemistry, vol. 106, no. 1, pp. 345-351, 2008.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.15249
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu