KHẢO SÁT KHẢ NĂNG KHÁNG OXY HÓA VÀ KHÁNG KHUẨN CỦA CÂY MUỒNG TRÂU VÀ MAI DƯƠNG TẠI KIÊN GIANG | Yến | TNU Journal of Science and Technology

KHẢO SÁT KHẢ NĂNG KHÁNG OXY HÓA VÀ KHÁNG KHUẨN CỦA CÂY MUỒNG TRÂU VÀ MAI DƯƠNG TẠI KIÊN GIANG

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 27/02/21                Ngày hoàn thiện: 11/05/21                Ngày đăng: 25/05/21

Các tác giả

1. Huỳnh Kim Yến Email to author, Trường Đại học Kiên Giang
2. Trần Thanh Mến, Trường Đại học Cần Thơ
3. Nguyễn Trọng Tuân, Trường Đại học Cần Thơ
4. Nguyễn Thành Tâm, Trường Đại học Kiên Giang
5. Huỳnh Thị Cẩm Lan, Trường Đại học Cần Thơ
6. Phạm Thị Khánh Linh, Trường Đại học Cần Thơ
7. Trương Thị Tú Trân, Trường Đại học Kiên Giang

Tóm tắt


Nghiên cứu được thực hiện nhằm đánh giá hoạt tính kháng oxy hóa và kháng khuẩn gây bệnh trên thủy sản của hai loài thực vật thu tại tỉnh Kiên Giang, Việt Nam. Khả năng kháng oxy hóa được xác định bằng phương pháp DPPH, ABTS+, RP và TAA in vitro. Kết quả cho thấy, cao chiết ethanol từ lá của cây Mai dương thể hiện hoạt tính kháng oxy hóa với giá trị IC50 lần lượt là 67,12 µg/mL; 39,22µg/mL; 32,16 µg/mL và 71,86 µg/mL. Tương tự, cao chiết Muồng trâu có giá trị IC50 tương ứng 357,19 µg/mL; 40,39 µg/mL; 331,03 µg/mL và 119,59 µg/mL. Hàm lượng polyphenol tổng và flavonoid của cao chiết cây Muồng trâu được xác định lần lượt là 203,57 mg GAE/g; 46,31 mg QE/g. Tương tự, cao chiết Mai dương có hàm lượng tương ứng là 306,08 mg GAE/g; 38,71 mg QE/g. Hoạt tính kháng khuẩn được khảo sát bằng phương pháp khuyếch tán trên đĩa thạch với 4 dòng vi khuẩn gây bệnh trên thủy sản. Kết quả cho thấy cao chiết Mai dương thể hiện hoạt tính kháng khuẩn tốt đối với 4 chủng vi khuẩnAeromonas dhakensis, Aeromonas hydrophila Edwardsiella ictaluri,  Streptococcus agalactiae. Từ kết quả nghiên cứu cho thấy, Mai dương là một dược liệu tiềm năng chứa nhiều các hợp chất kháng oxy hóa và kháng khuẩn.

Từ khóa


ABTS; DPPH; Kháng oxy hóa; Mai dương; Muồng trâu

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo


[1] S. Karbach, P. Wenzel, A. Waisman, T. Munzel, and A. Daiber, “eNOS uncoupling in cardiovascular diseases-the role of oxidative stress and inflammation,” Curr. Pharm. Des, vol. 20, pp. 3579-3594, 2014.

[2] Y. Y.Wu, W. Li, Y. Xu, E. H. Jin, and Y. Y. Tu, “Evaluation of the antioxidant effects of four main theaflavin derivatives through chemiluminescence and DNA damage analyses,” Journal of Zhejiang University Science B.,vol. 12, no. 9, pp. 744-751, 2011.

[3] K. Pholdaeng and S. Pongsamart, “Studies on the immunomodulatory effect of polysaccharide gel extracted from Durio zibethinus in Penaeus monodon shrimp against Vibrio harveyi and WSSV,” Fish Shellfish Immunol, vol. 28, pp. 555-561, 2010.

[4] V. H. Ngo, “The use of medicinal plants as immunostimulants in aquaculture,” Aquaculture, vol. 446, pp. 88-96, 2015.

[5] O. S. Oladeji, F. E. Adelowo, A. P. Oluyori, and D. T. Bankole, “Ethnobotanical Description and Biological Activities of Senna alata,” Evid Based Complement Alternat Med., vol. 2020, 2020, Art. no. 2580259, doi:10.1155/2020/2580259.

[6] J. Anbu, M. Anita, and R. Sathiya, “In Vitro Anthelmintic activity of leaf ethanolic extract of Cassia alata and Typha angustifolia,” MSRUAS-SASTech Journal, vol. 14, no. 2, pp. 41-44, 2013.

[7] W. M. Chen, E. K. James, J. H. Chou, S. Y. Sheu, S. Z. Yang, and J. I. Sprent, “β‐Rhizobia from Mimosa pigra, a newly discovered invasive plant in Taiwan,” New phytologist, vol. 168, no. 3, pp. 661-675, 2005.

[8] G. Rakotomalala et al. "Extract from Mimosa pigra attenuates chronic experimental pulmonary hypertension," Journal of Ethnopharmacology, vol. 148, no.1, pp. 106-116, 2013.

[9] A. Syahidah, C. R. Saad, H. M. Daud, and Y. M. Abdelhadi, “Status and potential of herbal applications in aquaculture,” Iranian Journal of Fisheries Sciences, vol. 14, no. 1, pp. 27-44, 2015.

[10] T. Citarasu, “Herbal biomedicines: a new opportunity for aquaculture industry,” Aquaculture International,vol. 18, no. 3, pp. 403-414, 2010.

[11] R. N. S. Yadav and M. Agarwala, “Phytochemical analysis of some medicinal plants,” J. Phytol., vol. 3, no. 12, pp. 10-14, 2011.

[12] V. L. Singleton, R. Orthofer, and R. M. Lamuela-Raventos, “Analysis of total phenol and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent,” Methods in Enzymology,vol. 299C, no. 1, pp. 152-178, 1999.

[13] G. C. Bag, P. G. Devi, and T. Bhaigyabati, “Assessment of total flavonoid content and antioxidant activity of methanolic rhizome extract of three Hedychium species of Manipur valley,” International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, vol. 30, no. 1, pp. 154-159, 2015.

[14] O. P. Sharma and T. K. Bhat, “DPPH antioxidant assay revisited,” Food chemistry, vol. 113, no. 4, pp. 1202-1205, 2009.

[15] N. Nikolaos, L. F. Wang, M. Tsimidou, and H. Y. Zhang, “Estimation of scavenging sctivity of phenolic compounds using the ABTS•+ assay,” Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 52, no. 15, pp. 4669-4674, 2004.

[16] R. Padma, N. G. Parvathy, V. Renjith, and P. R. Kalpana, “Quantitative estimation of tannins, phenols and antioxidant activity of methanolic extract of Imperata cylindrical,” International Journal of Research in Pharmaceutical Sciences, vol. 4, no. 1, pp. 73-77, 2013.

[17] P. Prieto, M. Pineda, and M. Aguilar, “Spcctrophotometric quantification of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: Specific application to the determination of vitamin E,” Anal Biochem, vol. 269, pp. 337-341, 1999.

[18] H. C. Chang, G. J. Huang, D. C. Agrawal, C. L. Kuo, C. R. Wu, and H. S. Tsay, “Antioxidant activities and polyphenol contents of six folk medicinal ferns used as “Gusuibu,” Botanical Studies,vol. 48, pp. 397-406, 2007.

[19] N. A. Nordin, N. B. M. Zin, N. F. Fazilah, H. Wasoh, A. B. Ariff, and M. Halim., “Phytochemicals, antioxidant and antimicrobial properties of Senna alata and Senna tora leaf extracts against bacterial strains causing skin infections,”Scicell, vol. 2, no. 1, pp. 19-25, 2019.

[20] G. Rakotomalala, C. Agard, P. Tonnerre, A. Tesse, S. Derbré, S. Michalet, and P. Pacaud, “Extract from Mimosa pigra attenuates chronic experimental pulmonary hypertension,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 148, no. 1, pp. 106-116, 2013.

[21] Jothi, R. Shunmuga, V. Bharathy, and F. Uthayakumari, "Antioxidant potential of aerial part of Senna italica Sub Species micrantha Mill," Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, vol. 7, no. 9,2015, Art. no. 621.




DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.4054

Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved