ẢNH HƯỞNG CỦA NƯỚC DỪA, AGAR VÀ SUCROSE ĐẾN THUỶ TINH HOÁ, SỰ TÁI SINH VÀ SỰ ỔN ĐỊNH DI TRUYỀN CỦA CÂY CẨM CHƯỚNG IN VITRO

La Việt Hồng; Nguyễn Văn Đính

doi:10.34238/tnu-jst.5448

ẢNH HƯỞNG CỦA NƯỚC DỪA, AGAR VÀ SUCROSE ĐẾN THUỶ TINH HOÁ, SỰ TÁI SINH VÀ SỰ ỔN ĐỊNH DI TRUYỀN CỦA CÂY CẨM CHƯỚNG IN VITRO

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 10/01/22 Ngày hoàn thiện: 09/03/22 Ngày đăng: 04/04/22

Các tác giả

1. La Việt Hồng , Trường Đại học Sư phạm Hà Nội 2
2. Nguyễn Văn Đính, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội 2

Tóm tắt

Thuỷ tinh hoá là một vấn đề thường xảy ra, làm giảm chất lượng cây cẩm chướng (Dianthus caryophyllus L.) in vitro, dẫn tới giảm hiệu quả quy trình sản xuất. Trong nghiên cứu này, nước dừa, sucrose và agar được thăm dò hàm lượng bổ sung vào môi trường nhằm tái sinh chồi in vitro và làm giảm tỷ lệ thuỷ tinh hoá. Việc đánh giá sự ổn định di truyền của cây tái sinh cũng được thực hiện. Kết quả cho thấy, môi trường MS, agar 7 g.L^-1, sucrose 30 g.L^-1 bổ sung nước dừa 5% (v/v) là thích hợp để tái sinh các giống trắng viền đỏ, hồng cánh sen, đỏ nhung và đỏ chùm, số chồi/mẫu lần lượt là 5,75; 6,00; 4,25 và 5,00. Chiều cao chồi lần lượt là 6,25; 6,38; 8,00; 8,50 (cm); Số lá/chồi tương ứng là 11,75; 12,50; 12,00; 11,75. Trong khi môi trường tương tự nhưng bổ sung nước dừa 10% (v/v) là phù hợp cho giống vàng chanh. Số chồi/mẫu, chiều cao chồi và số lá/chồi lần lượt là 5,75;8,50; 11,25. Môi trường MS, agar 7 g.L^-1 bổ sung sucrose 35g hoặc MS, sucrose 30 g.L^-1 bổ sung agar 8 g.L^-1 thích hợp để giảm tỷ lệ thuỷ tinh hoá ở năm giống cẩm chướng; trong khi đó, agar 7 g.L^-1 hoặc sucrose 30 g.L^-1 là phù hợp để tái sinh chồi in vitro. Bằng chỉ thị UBC 808, 5’-G-(AG)₇-C-3’, chứng minh cây tái sinh ổn định di truyền như cây mẹ.

Từ khóa

Agar; Cẩm chướng; Nước dừa; Ổn định di truyền; Sucrose; Thuỷ tinh hoá

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] M. Arif, A. Rauf, A. D. Khan, M. Rauf, and H. Afrasiab, "High frequency plant regeneration from leaf derived callus of Dianthus caryophyllus L.," American Journal of Plant Sciences, vol. 5, pp. 2454-2463, 2014.

[2] H. H. Le, T. K. L. Nguyen, D. T. Le, N. K. Dadlani, X. L. Nguyen, and T. L. T. Pham, Techniques for the production of some types of flowers. Vietnam Agricultural Publishing House, 2012.

[3] M. M. Khatun, M. M. Rahman, and P. K. Roy, "In vitro regeneraton and field evaluation of carnation (Dianthus caryophyllus L.) through shoot tip and node culture," Journal of applied Science and Technology, vol. 9, pp. 93-99, 2013.

[4] L. Martinez, R. Visser, and G. -J. De Klerk, "The hyperhydricity syndrome: Waterlogging of plant tissues as a major cause," Propagation of Ornamental Plants, vol. 10, pp. 169-175, 2010.

[5] K. Shetty, O. F. Curtis, R. E. Levin, R. Witkowsky, and W. Ang, "Prevention of vitrification associated with in vitro shoot culture of Oregano. (Origanum vulgare) by Pseudomonas spp," Journal of Plant Physiology, vol. 147, pp. 447-451, 1995.

[6] B. N. Hazarika and A. Bora, "Hyperhydricity - a bottleneck to micropropagation of plants," Acta Hort, vol. 865, pp. 95-102, 2010.

[7] S. W. Park, J. H. Jeon, H. S. Kim, Y. M. Park, C. Aswath, and H. Joung, "Effect of sealed and vented gaseous microenvironments on the hyperhydricity of potato shoots in vitro," Scientia Horticulturae, vol. 99, pp. 199-205, 2004.

[8] M. Kharrazi, H. Nemati, A. Tehranifar, A. Bagheri, and A. R. Sharifi, "In vitro culture of carnation (Dianthus caryophyllus L.) focusing on the problem of vitrification," Journal of Biological and Environmental Sciences, vol. 5, pp.1-6, 2011.

[9] R. Chandrika, M. N. Shivakameshwari, and K. J. T. Saraswathi, "Reduction of vitrification in in vitro shoot cultures of Eryngium Foetidum L. - A potential aromatic and medicinal," Indian Journal of Plant Sciences, vol. 4, pp. 52-58, 2015.

[10] T. Murashige and F. Skoog, "A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures," Physiologia Plantarum, vol. 15, pp. 473-497, 2006.

[11] A. Healey, A. Furtado, T. Cooper, and R. Henry, "Protocol: A simple method for extracting next-generation sequencing quality genomic DNA from recalcitrant plant species," Plant methods, vol. 10, pp. 21, 2014.

[12] V. M. Nguyen, V. H. La, and X. P. Ong, Methods in plant physiology. Hanoi: Hanoi National University Publishing House, 2013.

[13] B. Winartoa, M. A. Azizb, A. A. Rashidb, and R. M. Ismail, "Effect of permeable vessel closure and gelling agent on reduction of hyperhydricity in in vitro culture of carnation," Indonesian Journal of Agricultural Science, vol. 5, pp. 11-19, 2004.

[14] M. Ziv, "Vitrification: morphological and physiological disorders of in vitro plants," in Micropropagation: Technology and Application, P. C. Debergh and R. H. Zimmerman, Eds., ed Dordrecht: Springer Netherlands, 1991, pp. 45-69.

[15] A. Eckstein, P. Zięba, and H. Gabryś, "Sugar and light effects on the condition of the photosynthetic apparatus of Arabidopsis thaliana cultured in vitro," Journal of Plant Growth Regulation, vol. 31, pp. 90-101, 2012.

[16] S. Adhikari, T. Bandyopadhyay, and P. Ghosh, "Assessment of genetic stability of Cucumis sativus L. regenerated from encapsulated shoot tips," Scientia Horticulturae, vol. 170, pp. 115-122, 2014.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.5448

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ