ẢNH HƯỞNG CỦA TINH BỘT SẮN DÂY ĐẾN SINH TRƯỞNG, DIỆP LỤC, HÌNH THÁI LÁ VÀ NHÂN GIỐNG IN VITRO CỦA CÂY HOA CÚC

La Việt Hồng; Cao Phi Bằng; Ong Xuân Phong; Ngô Thị Thương; Nguyễn Thị Lệ Thuỳ; Dương Thị Thanh Thảo

doi:10.34238/tnu-jst.5600

ẢNH HƯỞNG CỦA TINH BỘT SẮN DÂY ĐẾN SINH TRƯỞNG, DIỆP LỤC, HÌNH THÁI LÁ VÀ NHÂN GIỐNG IN VITRO CỦA CÂY HOA CÚC

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 28/02/22 Ngày hoàn thiện: 18/04/22 Ngày đăng: 18/04/22

Các tác giả

1. La Việt Hồng , Trường Đại học Sư phạm Hà Nội 2
2. Cao Phi Bằng, Trường Đại học Hùng Vương
3. Ong Xuân Phong, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội 2
4. Ngô Thị Thương, Trường Đại học Sư phạm Hà Nội 2
5. Nguyễn Thị Lệ Thuỳ, Trường Cao đẳng Công thương Việt Nam
6. Dương Thị Thanh Thảo, Trường Đại học Thủ đô Hà Nội

Tóm tắt

Trong nghiên cứu này, khả năng gây đông môi trường nuôi cấy mô của tinh bột sắn dây đã được khảo sát. Kết quả cho thấy giá trị pH của môi trường MS sau khi khử trùng không có sự khác biệt giữa tinh bộ sắn dây và agar (đối chứng). Môi trường nuôi cấy chứa tinh bột sắn dây có ảnh hưởng tích cực đến các chỉ tiêu sinh trưởng, sinh lý, nhưng không ảnh hưởng đến hình thái lá và diện tích lá tổng số. Tinh bột sắn dây được bổ sung vào môi trường nhân giống in vitro cây hoa cúc cho kết quả tích cực, thích hợp với giai đoạn tái sinh và nhân nhanh chồi in vitro và giai đoạn ra rễ in vitro. Cây cúc cấy mô có nguồn gốc từ môi trường sử dụng tinh bột sắn dây thể hiện tỷ lệ sống sót bằng với cây tái sinh có nguồn gốc từ môi trường sử dụng agar. Tinh bột sắn dây có tiềm năng ứng dụng như chất gây đông môi trường để nuôi cấy mô.

Từ khóa

Cây hoa cúc; Diệp lục; Hình thái; Sinh trưởng; Tinh bột sắn dây; Nhân giống

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] S. Purohit, J. Teixeira da Silva, and N. Habibi, "Current approaches for cheaper and better micropropagation technologies," International Journal of Plant Developmental Biology, vol. 5, pp. 1-36, 2011.

[2] S. Prakash, M. I. Hoque, and T. Brinks, Culture media and containers, International Atomic Energy Agency (IAEA) 1011-428992-0-115903-X, 2004.

[3] J. McLachlan, "Macroalgae (seaweeds): Industrial resources and their utilization," Plant and Soil, vol. 89, pp. 137-157, 1985.

[4] N. Daud, R. Taha, N. Noor, and H. Alimon, "Potential of alternative gelling agents in media for the in vitro micro-propagation of Celosia sp," International Journal of Botany, vol. 7, pp. 183-188, 2011.

[5] M. S. Saraswathi, S. Uma, G. Kannan, M. Selvasumathi, M. M. Mustaffa, and S. Backiyarani, "Cost-effective tissue culture media for large-scale propagation of three commercial banana (Musa spp.) varieties," The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, vol. 91, pp. 23-29, 2016.

[6] A. Ssamula and S. B. Mukasa, "Use of cassava starch as gelling agent during in vitro micropropagation of banana," Journal of Experimental Biology and Agricultural Sciences, vol. 3, pp. 575-581, 2015.

[7] J. Teixeira da Silva, "Novel factors affecting shoot culture of chrysanthemum (Dendranthema × Grandiflora)," Botanica Lithuanica, vol. 20, no. 1, pp. 27-40, 2014.

[8] T. Murashige and F. Skoog, "A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures," Physiologia Plantarum, vol. 15, pp. 473-497, 2006.

[9] V. M. Nguyen, V. H. La, and X. P. Ong, Methods in plant physiology. Hanoi: Hanoi National University Publishing House, 2013.

[10] H. R. Owen, D. Wengerd, and A. R. Miller, "Culture medium pH is influenced by basal medium, carbohydrate source, gelling agent, activated charcoal, and medium storage method," Plant Cell Rep, vol. 10, pp. 583-586, 1991.

[11] N. Schenk, K. C. Hsiao, and C. H. Bornman, "Avoidance of precipitation and carbohydrate breakdown in autoclaved plant tissue culture media," Plant Cell Rep, vol. 10, pp. 115-119, 1991.

[12] A. Suzuki, S. Hizukuri, and Y. Takeda, "Physicochemical studies of kuzu starch," Cereal Chemistry, vol. 58, pp. 286-290, 1981.

[13] N. R. Baker, "Chlorophyll fluorescence: a probe of photosynthesis in vivo," Annu Rev Plant Biol, vol. 59, pp. 89-113, 2008.

[14] P. Modi, A. Sinha, and S. L. Kothari, "Reduction of hyperhydricity in micropropagated French Marigold (Tagetes patula L.) plants by modified medium parameters," Floriculture and Ornamental Biotechnology, vol. 3, no. 1, pp. 40-45, 2009.

[15] M. T. McClelland, M. A. L. Smith, and Z. B. Carothers, "The effects of in vitro and ex vitro root initiation on subsequent microcutting root quality in three woody plants," Plant Cell, Tissue and Organ Culture, vol. 23, pp. 115-123, 1990.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.5600

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ