NGHIÊN CỨU NHÂN GIỐNG  LAN HÀI CHÂN TÍM  (PAPHIOPEDILUM TRANLIENIANUM) BẰNG KỸ THUẬT IN VITRO

Nguyễn Thị Tình; Nguyễn Tiến Dũng; Bùi Tri Thức; Dương Thị Thu Hoài; Lưu Hồng Sơn; Lê Thanh Ninh; Trần Ngọc Hùng; Ngô Xuân Bình

doi:10.34238/tnu-jst.6367

NGHIÊN CỨU NHÂN GIỐNG LAN HÀI CHÂN TÍM (PAPHIOPEDILUM TRANLIENIANUM) BẰNG KỸ THUẬT IN VITRO

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 16/08/22 Ngày hoàn thiện: 15/09/22 Ngày đăng: 15/09/22

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Tình, Viện Khoa học Nông nghiệp Việt Nam; Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
2. Nguyễn Tiến Dũng, Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
3. Bùi Tri Thức, Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
4. Dương Thị Thu Hoài, Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
5. Lưu Hồng Sơn , Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
6. Lê Thanh Ninh, Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên
7. Trần Ngọc Hùng, Viện Nghiên cứu Rau Quả
8. Ngô Xuân Bình, Trường Đại học Nông lâm - ĐH Thái Nguyên

Tóm tắt

Lan hài rất dễ nhận biết sự khác biệt so với các loài lan khác do hình thái cấu trúc hoa rất đặc biệt. Hoa chỉ có một cánh hoa hình túi nhìn giống như chiếc hài, dựa vào hình thái đặc biệt giống chiếc hài nên loài lan này được đặt tên là lan hài. Lan hài Chân tím (Paphiopedilum tranlienianum) là một trong những loài lan đặc hữu của Việt Nam. Quả thụ phấn sau 9 tháng được lựa chọn để tiến hành thí nghiệm. Phôi hạt nuôi nảy mầm trên môi truờng MS bổ sung 30 g/l đường, 1 g/l than hoạt tính, 5,5 g/l agar, 150 ml/l nước dừa. Giai đoạn nhân nhanh bổ sung chất điều tiết sinh truởng: BAP 4 mg/l kết hợp kinetin 0,6 mg/l. Trong đó, yếu tố hoocmon có ảnh hưởng lớn đến khả năng tạo đa chồi, ở nồng độ Kinetine 0,6 mg/l cho hệ số nhân chồi là 79 chồi, chiều cao chồi 2,46 cm, chồi xanh mập. Rễ được cảm ứng tốt nhất trong điều kiện môi truờng: MS bổ sung đường 30 g/l; agar 5,5 g/l; nước dừa 150 ml/l và IAA hoặc NAA nồng độ 1 mg/l, có tác dụng tăng cường sự phát triển của rễ trong điều kiện in vitro.

Từ khóa

Hài Chân tím; In vitro; Tái sinh chồi; BAP; PLB

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] Averyanov, P. Cribb, L. K. Phan, and H. T.Nguyen, Purple Chan Lanhai. Ho Chi Minh City Transport Publishing House, 2008.

[2] G. T. Hoang, T. Q. Nguyen, T. H. Mach, and H. T. T. Do, “Research on in vitro propagation and culture of Paphiopedilum hangianum pernergurss (Hai Hang),” Journal of Science and Development, vol. 8, no. 2, pp. 194-201, 2010.

[3] T. H. Khuat et al., “Research on genetic diversity of Vietnamese native Paphiopedilum conchloro Pfizer,” Journal of Science and Technology, no. 3, pp. 70-77, 2007.

[4] C. Y. Ng and N. M. Saleh, “In vitro propagation of Paphiopedilum orchid through formation of protocorm-like bodies,” Plant Cell Tissue Organ Cult., vol. 105, pp. 193-202, 2011.

[5] Y. H. Lin, C. Chang, and W.C. Chang, “Plant regeneration from callus culture of a Paphiopedilum hybrid,” Plant Cell Tissue Organ Cult., vol. 62, pp. 21-25, 2000.

[6] T. Y. Chen, J. T. Chen, and W. C. Chang, “Plant regeneration through direct shoot bud formation from leaf cul tures of Pa phiopediulum orchids,” Plant Cell Tiss Organ Cult., vol. 76, pp. 11-15, 2004.

[7] L. C. Huang, C. J. Lin, C. I. Kuo, B. L. Huang, and T. Murashige, “Paphiopedilum cloning in vitro,” Sci. Hortic., vol. 91, pp. 111-121, 2001.

[8] D. T. Nhut, D. T. T. Thuy, N. T. Don, V. Q. Luan, N. T. Hai, and K. T. T. Van, “In vitro stem elongation of Paphiopedilum delenatii Guillaumin and shoot regeneration via stem node culture,” Propag. Ornam. Plants, vol. 7, pp. 29-36, 2007.

[9] B. Long, A. X. Niemiera, Z. Y. Cheng, and C. L. Long, “In vitro propagation of four threatened Paphiopedilum species (Orchidaceae),” Plant Cell Tissure Organ Cult., vol. 101, pp. 151-162, 2010.

[10] T. Q. Nguyen, H. T. Vu, N. T. H. Khuat, and T. T. Nguyen, “In vitro propagation of Phi Diep Tim orchid (Dendrobium anosmum),” Journal of Forestry Science and Technology, no. 3, pp. 16-21, 2013.

[11] C. T. Nguyen, K. V. Nguyen, T. N. Duong, and T. K. L. Nguyen, “Study on the effects of some organic substances on the growth and development of Hai Hong orchid (Paphiopedilum delenatii) in vitro,” Journal of Biology, vol. 36, no. 1, pp. 250-256, 2014.

[12] S. Zeng, J. Wang, K. Wu, A. Jaime, T. da Silva, J. Zhang, and J. Duan, In vitro propagation of Paphiopedilum hangianum Perner & Gruss,” Scientia Horticulturae, vol. 151, pp. 147-156, 2013.

[13] S. Kaur and K. K. Bhutani, “In vitrro propagation of Paphiopedilum spicerianum (Reichb. F.) Pfit,” Floriculture and Ornamental Biotechnology, vol. 7, no. 1, pp. 65-70, 2012.

[14] S. J. Zeng, Z. L. Chen, K. L. Wu, J. X. Zhang, C. K. Bai, J. A. Teixeira da Silva, and J. Duan, “Asymbiotic seed germination, induction of calli and protocorm-like bodies, and in vitro seedling development of the rare and endangered Nothodoritis zhejiangensis Chinese orchid,” HortScience, vol. 46, no. 3, pp. 460-465, 2011.

[15] S. J. Zeng, K. L. Wu, J. A. Teixeira da Silva, J. X. Zhang, Z. L. Chen, N. H. Xia, and J. Duan, “Asymbiotic seed germination, seedling development and reintroduction of Paphiopedilum wardii Sumerh., an endangered terrestrial orchid,” Scientia Horticulturae, vol. 138, pp. 198-209, 2012.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.6367

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ