PHÂN LẬP VÀ KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG CỦA CÁC CHỦNG  VI KHUẨN NỘI SINH TRONG CÂY BỌ MẮM (Pouzolzia zeylanica L.)  CHỐNG LẠI MỘT SỐ VI KHUẨN GÂY BỆNH

Phạm Khánh Nguyên Huân; Trần Chí Linh; Võ Hoàng Long; Đái Thị Xuân Trang

doi:10.34238/tnu-jst.6421

PHÂN LẬP VÀ KHẢO SÁT KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG CỦA CÁC CHỦNG VI KHUẨN NỘI SINH TRONG CÂY BỌ MẮM (Pouzolzia zeylanica L.) CHỐNG LẠI MỘT SỐ VI KHUẨN GÂY BỆNH

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 05/09/22 Ngày hoàn thiện: 19/10/22 Ngày đăng: 21/10/22

Các tác giả

1. Phạm Khánh Nguyên Huân , Trường Đại học Cần Thơ
2. Trần Chí Linh, Trường Đại học Cần Thơ
3. Võ Hoàng Long, Trường Đại học Cần Thơ
4. Đái Thị Xuân Trang, Trường Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Trong những năm gần đây, nhiều nghiên cứu cho thấy vi khuẩn nội sinh trong thực vật có vai trò quan trọng trong nông nghiệp, dược liệu, và có tiềm năng ứng dụng rất lớn. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm đánh giá khả năng mang các vi khuẩn nội sinh trong cây bọ mắm (Pouzolzia zeylanica L.). Các thí nghiệm đã được bố trí để phân lập, nuôi cấy in vitro các vi khuẩn nội sinh từ các mẫu rễ, thân và lá của cây thu thập ở một địa phương tại thành phố Cần Thơ. Kết quả phân lập được 26 chủng vi khuẩn nội sinh có thể nuôi cấy in vitro. Các vi khuẩn này được tăng sinh và thu dịch nội bào, dịch ngoại bào, dịch hỗn hợp để thử hoạt tính đối kháng chống lại khuẩn gây hại. Kết quả cho thấy có 17 chủng vi khuẩn nội sinh có khả năng kháng các vi khuẩn như Pseudomonas aeruginosa, Listeria innocua, Vibrio parahaemolyticus và Staphylococcus aureus. Nghiên cứu cho thấy cây bọ mắm có chứa các vi khuẩn nội sinh có thể phân lập khỏi cây chủ và nuôi cấy trong điều kiện phòng thí nghiệm. Các vi khuẩn đã phân lập thể hiện khả năng kháng khuẩn tốt đối với một số vi khuẩn gây hại và có tiềm năng tiếp tục nghiên cứu phát triển như là một tác nhân kháng khuẩn tự nhiên.

Từ khóa

Pouzolzia zeylanica L.; Vi khuẩn nội sinh; Kháng khuẩn; Pseudomonas aeruginosa; Vibrio parahaemolyticus

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] H. Liu et al., “Inner plant values: Diversity, colonization and benefits from endophytic bacteria,” Frontiers in Microbiology, vol. 8, p. 2552, 2017, doi: 10.3389/fmicb.2017.02552.

[2] I. Miliute, O. Buzaite, D. Baniulis, and V. Stanys, “Bacterial endophytes in agricultural crops and their role in stress tolerance: a review,” Zemdirbyste-Agriculture, vol. 102, no. 4, pp. 465-478, 2015, doi: 10.13080/z-a.2015.102.060.

[3] T. R. Turner, E. K. James, and P. S. Poole, “The plant microbiome,” Genome Biology, vol. 14, no. 6, pp. 1-10, Jun. 25, 2013, doi: 10.1186/gb-2013-14-6-209.

[4] W. Huang, C. Long, and E. Lam, “Roles of plant-associated microbiota in traditional herbal medicine,” Trends in Plant Science, vol. 23, no. 7, pp. 559-562, 2018, doi: 10.1016/j.tplants.2018.05.003.

[5] G. Strobel and B. Daisy, “Bioprospecting for Microbial Endophytes and Their Natural Products,” Microbiol. Mol. Biol. Rev., vol. 67, no. 4, pp. 491-502, 2003, doi: 10.1128/MMBR.67.4.491-502.2003.

[6] R. M. P. Gutierrez, A. M. N. Gonzalez, and A. M. Ramirez, “Compounds derived from endophytes: A review of phytochemistry and pharmacology,” Curr. Med. Chem., vol. 19, no. 18, pp. 2992-3030, 2012, doi: 10.2174/092986712800672111.

[7] G. A. Strobel, “Endophytes as sources of bioactive products,” Microbes and Infection, vol. 5, no. 6, pp. 535-544, 2003, doi: 10.1016/S1286-4579(03)00073-X.

[8] S. Gouda, G. Das, S. K. Sen, H. S. Shin, and J. K. Patra, “Endophytes: A treasure house of bioactive compounds of medicinal importance,” Frontiers in Microbiology, vol. 7, p. 1538, 2016, doi: 10.3389/fmicb.2016.01538.

[9] O. A. A. Mohamad et al., “Evaluation of the antimicrobial activity of endophytic bacterial populations from Chinese traditional medicinal plant licorice and characterization of the bioactive secondary metabolites produced by Bacillus atrophaeus against Verticillium dahliae,” Front. Microbiol., vol. 9, 2018, doi: 10.3389/fmicb.2018.00924.

[10] I. Afzal, Z. K. Shinwari, S. Sikandar, and S. Shahzad, “Plant beneficial endophytic bacteria: Mechanisms, diversity, host range and genetic determinants,” Microbiological Research, Urban & Fischer, vol. 221, pp. 36-49, 2019, doi: 10.1016/j.micres.2019.02.001.

[11] D. Egamberdieva, S. Wirth, U. Behrendt, P. Ahmad, and G. Berg, “Antimicrobial activity of medicinal plants correlates with the proportion of antagonistic endophytes,” Front. Microbiol., vol. 8, p. 199, 2017, doi: 10.3389/fmicb.2017.00199.

[12] G. Brader, S. Compant, B. Mitter, F. Trognitz, and A. Sessitsch, “Metabolic potential of endophytic bacteria,” Current Opinion in Biotechnology, vol. 27, no. 100, pp. 30-37, 2014, doi: 10.1016/j.copbio.2013.09.012.

[13] T. T. A. Vo, C. L. Tran, T. T. T. Tran, and P. Q. Do, “Evaluating anti-bacterial and antioxidant activities of extracts from Pouzolzia zeylanica L. leaves and stems” (in Vietnamese), Can Tho Univ. J. Sci., vol. 52, no. 52, p. 29, 2017, doi: 10.22144/ctu.jvn.2017.107.

[14] Z. H. Chen, H. Zhang, S. H. Tao, Z. Luo, C. Q. Zhong, and L. B. Guo, “Norlignans from Pouzolzia zeylanica var. microphylla and their nitric oxide inhibitory activity,” J. Asian Nat. Prod. Res., vol. 17, no. 10, pp. 959-966, Jun. 2015, doi: 10.1080/10286020.2015.1048685.

[15] M. S. Hossain et al., “Ethnopharmacological investigations of methanolic extract of Pouzolzia zeylanica (L.) Benn,” Clin. Phytoscience, vol. 2, no. 1, 2017, doi: 10.1186/s40816-016-0022-7.

[16] P. Li et al., “Free radical-scavenging capacity, antioxidant activity and phenolic content of Pouzolzia zeylanica,” J. Serbian Chem. Soc., vol. 76, no. 5, pp. 709-717, 2011, doi: 10.2298/JSC100818063L.

[17] U.S. Food and Drug Administration, “BAM Media M127: Potato Dextrose Agar | FDA,” 1998. [Online]. Available: https://www.fda.gov/food/laboratory-methods-food/bam-media-m127-potato-dextrose-agar. [Accessed Sep. 26, 2022].

[18] B. El-Deeb, K. Fayez, and Y. Gherbawy, “Isolation and characterization of endophytic bacteria from Plectranthus tenuiflorus medicinal plant in Saudi Arabia desert and their antimicrobial activities,” J. Plant Interact., vol. 8, no. 1, pp. 56-64, 2012, doi: 10.1080/17429145.2012.680077.

[19] A. W. Bauer, W. M. Kirby, J. C. Sherris, and M. Turck, “Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method,” Am. J. Clin. Pathol., vol. 45, no. 4, pp. 493-496, 1966, doi: 10.1093/ajcp/45.4_ts.493.

[20] A. B. Galindo, Lactobacillus plantarum 44A as a live feed supplement for freshwater fish, Wageningen Universiteit, 2004.

[21] T. T. D. Nguyen, H. H. Nguyen, T. T. H. Dinh, and T. N. Do, “Isolation and selection of antibacterial endophytic bacteria from Physalis angulata L. in Can Tho City,” (in Vietnamese), Can Tho Univ. J. Sci., vol. 55, no. 4, p. 10, 2019, doi: 10.22144/ctu.jvn.2019.103.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.6421

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ