Chia sẻ bài báo qua Email DIỆP HẠ CHÂU CẢI THIỆN BỆNH SỎI THẬN DO CALCIUM OXALATE GÂY RA THÔNG QUA KHÁNG OXY HÓA VÀ KHÁNG VIÊM
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 28/01/23 Ngày hoàn thiện: 14/04/23 Ngày đăng: 19/04/23Các tác giả
1. Huỳnh Hồng Phiến, Trường Đại học Cần Thơ2. Trần Thanh Mến
, Trường Đại học Cần Thơ
Tóm tắt
Tác dụng của các hợp chất có hoạt tính sinh học trong thực vật được thể hiện dựa trên khả năng chống oxy hóa, giúp giảm thiểu tác hại gây ra bởi các gốc tự do sinh ra từ quá trình hình thành và phát triển sỏi niệu. Chiết xuất diệp hạ châu chứa một lượng lớn chất chống oxy hóa có thể đóng vai trò quan trọng trong việc hấp phụ và trung hòa các gốc tự do. Hoạt tính chống oxy hóa này phần lớn có thể là do thành phần phenolic và flavonoid có chứa trong thực vật với hàm lượng lần lượt là 438,13±16,37 (mg GAE/g cao chiết) và 157,10±1,31 (mg QE/g cao chiết). Khả năng kháng oxy hóa được đánh giá qua 4 phương pháp DPPH, ABTS, RP, TAC với giá trị EC50 lần lượt là 129,74±3,05; 82,35±1,25; 196,03±6,66 và 40,32±2,78 µg/mL. Cao chiết diệp hạ châu giúp giảm biến tính protein albumin huyết thanh bò với IC50 là 1,52±0,28 mg/mL, thấp hơn 7,24 lần so với chất chuẩn diclofenac (0,21± 0,08 mg/mL). Sự tạo mầm của tinh thể calcium oxalate bị ức chế bởi chiết xuất từ diêp hạ châu với IC50 là 4,74±0,31 mg/mL. Những kết quả này cho thấy diệp hạ châu có thể xem là một dược liệu tiềm năng để điều trị sỏi tiết niệu.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] A. E. Azab, A. A Adwas, A. S. I. Elsayed, A. A Adwas, A. S. I. Elsayed, and F. A. Quwaydir, “Oxidative stress and antioxidant mechanisms in human body,” Journal of Applied Biotechnology & Bioengineering, vol. 6, no. 1, 2019, doi: 10.15406/jabb.2019.06.00173.
[2] A. Charlton, J. Garzarella, K. A. M. Jandeleit-Dahm, and J. C. Jha, “Oxidative stress and inflammation in renal and cardiovascular complications of diabetes,” Biology, vol. 10, no. 1. 2021, doi: 10.3390/biology10010018.
[3] P. Wigner, R. Grębowski, M. Bijak, J. Saluk-Bijak, and J. Szemraj, “The interplay between oxidative stress, inflammation and angiogenesis in bladder cancer development,” International Journal of Molecular Sciences, vol. 22, no. 9, 2021, doi: 10.3390/ijms22094483.
[4] C. Boonla, “Oxidative Stress in Urolithiasis,” in Reactive Oxygen Species (ROS) in Living Cells, 2018, doi: 10.5772/intechopen.75366.
[5] B. V. S. R. Radha, “HERBAL PLANTS USED IN THE TREATMENT OF UROLITHIASIS : A REVIEW,” International Journal of Pharmaceutical Research and Development (IJPRD), vol. 5, 2013, Art. no. 0974.
[6] D. Sansores-España et al., “Plants Used in Mexican Traditional Medicine for the Management of Urolithiasis: A Review of Preclinical Evidence, Bioactive Compounds, and Molecular Mechanisms,” Molecules, vol. 27, no. 6, 2022, doi: 10.3390/molecules27062008.
[7] A. Makasana, V. Ranpariya, D. Desai, J. Mendpara, and V. Parekh, “Evaluation for the anti-urolithiatic activity of Launaea procumbens against ethylene glycol-induced renal calculi in rats,” Toxicol Rep, vol. 1, 2014, doi: 10.1016/j.toxrep.2014.03.006.
[8] P. K. Patel, M. A. Patel, M. G. Saralai, and T. R. Gandhi, “Antiurolithiatic effects of Solanum xanthocarpum fruit extract on ethylene-glycol-induced nephrolithiasis in rats,” Journal of Young Pharmacists, vol. 4, no. 3, 2012, doi: 10.4103/0975-1483.100022.
[9] E. Amengual-Cladera et al., “Phytotherapy in a rat model of hyperoxaluria: The antioxidant effects of quercetin involve serum paraoxonase 1 activation,” Exp Biol Med, vol. 236, no. 10, 2011, doi: 10.1258/ebm.2011.011090.
[10] K. Agarwal and R. Varma, “Ethnobotanical study of antilithic plants of Bhopal district,” J Ethnopharmacol, vol. 174, 2015, doi: 10.1016/j.jep.2015.08.003.
[11] L. Y. Foo, “Amarulone, a Novel Cyclic Hydrolysable Tannin from Phyllanthus Amarus,” Nat Prod Lett, vol. 3, no. 1, 1993, doi: 10.1080/10575639308043836.
[12] J. R. Patel, P. Tripathi, V. Sharma, N. S. Chauhan, and V. K. Dixit, “Phyllanthus amarus: Ethnomedicinal uses, phytochemistry and pharmacology: A review,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 138, no. 2, 2011, doi: 10.1016/j.jep.2011.09.040.
[13] R. Krithika et al., “Isolation, characterization and antioxidative effect of phyllanthin against CCl4-induced toxicity in HepG2 cell line,” Chem Biol Interact, vol. 181, no. 3, 2009, doi: 10.1016/j.cbi.2009.06.014.
[14] C. A. L. Kassuya, D. F. P. Leite, L. V. de Melo, V. L. C. Rehder, and J. B. Calixto, “Anti-inflammatory properties of extracts, fractions and lignans isolated from Phyllanthus amarus,” Planta Med, vol. 71, no. 8, 2005, doi: 10.1055/s-2005-871258.
[15] V. L. Singleton and J A Jr. Rossi, “Colorimetry of Total Phenolics with Phosphomolybdic-Phosphotungstic Acid Reagents,” Am J Enol Vitic, vol. 16, no. 3, pp. 144-158, 1965.
[16] J. Zhishen, T. Mengcheng, and W. Jianming, “The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals,” Food Chem, vol. 64, no. 4, 1999, doi: 10.1016/S0308-8146(98)00102-2.
[17] N. Jadid, D. Hidayati, S. R. Hartanti, B. A. Arraniry, R. Y. Rachman, and W. Wikanta, “Antioxidant activities of different solvent extracts of Piper retrofractum Vahl. using DPPH assay,” in AIP Conference Proceedings, 2017, vol. 1854, doi: 10.1063/1.4985410.
[18] I. Fidrianny, A. Rizkiya, and K. Ruslan, “Antioxidant activities of various fruit extracts from three solanum sp. using DPPH and ABTS method and correlation with phenolic, flavonoid and carotenoid content,” J Chem Pharm Res, vol. 7, no. 5, pp. 666-672, 2015.
[19] N. Chaves, A. Santiago, and J. C. Alías, “Quantification of the antioxidant activity of plant extracts: Analysis of sensitivity and hierarchization based on the method used,” Antioxidants, vol. 9, no. 1, 2020, doi: 10.3390/antiox9010076.
[20] S. Nazir et al., “Callus culture of Thai basil is an effective biological system for the production of antioxidants,” Molecules, vol. 25, no. 20, 2020, doi: 10.3390/molecules25204859.
[21] M. Shah, Z. Parveen, and M. R. Khan, “Evaluation of antioxidant, anti-inflammatory, analgesic and antipyretic activities of the stem bark of Sapindus mukorossi,” BMC Complement Altern Med, vol. 17, no. 1, 2017, doi: 10.1186/s12906-017-2042-3.
[22] S. Bawari, A. N. Sah, and D. Tewari, “Antiurolithiatic activity of daucus carota: An in vitro study,” Pharmacognosy Journal, vol. 10, no. 5, 2018, doi: 10.5530/pj.2018.5.148.
[23] M. E. Crespo, J. Gálvez, T. Cruz, M. A. Ocete, and A. Zarzuelo, “Anti-inflammatory activity of diosmin and hesperidin in rat colitis induced by TNBS,” Planta Med, vol. 65, no. 7, 1999, doi: 10.1055/s-2006-960838.
[24] M. M. Abdel-Daim, H. A. Khalifa, A. I. Abushouk, M. A. Dkhil, and S. A. Al-Quraishy, “Diosmin Attenuates Methotrexate-Induced Hepatic, Renal, and Cardiac Injury: A Biochemical and Histopathological Study in Mice,” Oxid Med Cell Longev, vol. 2017, 2017, doi: 10.1155/2017/3281670.
[25] K. Poompachee and N. Chudapongse, “Comparison of the antioxidant and cytotoxic activities of phyllanthus virgatus and phyllanthus amarus extracts,” Medical Principles and Practice, vol. 21, no. 1, 2011, doi: 10.1159/000331596.
[26] N. J. Miller, C. Rice-Evans, M. J. Davies, V. Gopinathan, and A. Milner, “A novel method for measuring antioxidant capacity and its application to monitoring the antioxidant status in premature neonates,” Clin Sci, vol. 84, no. 4, 1993, doi: 10.1042/cs0840407.
[27] M. C. Nirumand et al., “Dietary plants for the prevention and management of kidney stones: Preclinical and clinical evidence and molecular mechanisms,” International Journal of Molecular Sciences, vol. 19, no. 3, 2018, doi: 10.3390/ijms19030765.
[28] L. Zhu, J. Chen, J. Tan, X. Liu, and B. Wang, “Flavonoids from Agrimonia pilosa Ledeb: Free radical scavenging and DNA oxidative damage protection activities and analysis of bioactivity-structure relationship based on molecular and electronic structures,” Molecules, vol. 22, no. 3, 2017, doi: 10.3390/molecules22030195.
[29] H. K. Park et al., “Reduction of Oxidative Stress in Cultured Renal Tubular Cells and Preventive Effects on Renal Stone Formation by the Bioflavonoid Quercetin,” Journal of Urology, vol. 179, no. 4, 2008, doi: 10.1016/j.juro.2007.11.039.
[30] S. R. Khan, B. K. Canales, and P. R. Dominguez-Gutierrez, “Randall’s plaque and calcium oxalate stone formation: role for immunity and inflammation,” Nature Reviews Nephrology, vol. 17, no. 6, 2021, doi: 10.1038/s41581-020-00392-1.
[31] S. R. Khan, “Reactive oxygen species, inflammation and calcium oxalate nephrolithiasis,” Translational Andrology and Urology, vol. 3, no. 3, 2014, doi: 10.3978/j.issn.2223-4683.2014.06.04.
[32] P. Khare, V. K. Mishra, K. Arun, N. Bais, and R. Singh, “Study on in vitro anti-lithiatic activity of Phyllanthus niruri linn. leaves by homogenous precipitation and turbiditory method,” Int J Pharm Pharm Sci, vol. 6, no. 4, pp. 124-127, 2014.
[33] M. T. Gul et al., “Evaluation of phyllanthus niruri L. From Malaysia for in-vitro anti-urolithiatic properties by different Solvent extraction,” Pakistan Journal of Scientific and Industrial Research Series B: Biological Sciences, vol. 64, no. 1, 2021, doi: 10.52763/pjsir.biol.sci.64.1.2021.81.86.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.7240
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu