CHIẾT XUẤT VÀ KHẢO SÁT THÀNH PHẦN HÓA HỌC, HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA CÁC CAO CHIẾT TỪ QUẢ MÀNG TANG [LITSEA CUBEBA (LOUR.) PERS] | Hoàng | TNU Journal of Science and Technology

CHIẾT XUẤT VÀ KHẢO SÁT THÀNH PHẦN HÓA HỌC, HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA CÁC CAO CHIẾT TỪ QUẢ MÀNG TANG [LITSEA CUBEBA (LOUR.) PERS]

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 05/07/23                Ngày hoàn thiện: 15/08/23                Ngày đăng: 18/08/23

Các tác giả

1. Lê Huy Hoàng Email to author, Viện Công nghệ mới - Viện Khoa học và Công nghệ Quân sự
2. Lê Thúy Anh, Trường Đại học Khoa học Tự nhiên - ĐH Quốc gia Hà Nội
3. Nghiêm Ngọc Hoa, Viện Công nghệ mới - Viện Khoa học và Công nghệ Quân sự
4. Phạm Kiên Cường, Viện Công nghệ mới - Viện Khoa học và Công nghệ Quân sự

Tóm tắt


Quả màng tang Litsea cubeba (Lour.) Pers được sử dụng trong y học dân gian và có nhiều hoạt tính sinh học. Tuy nhiên, hiện nay ở Việt Nam, đa phần khai thác quả màng tang để lấy tinh dầu mà chưa có nhiều nghiên cứu thu nhận dịch chiết toàn phần. Vì vậy, nghiên cứu này thử nghiệm điều kiện chiết xuất trên cơ sở 3 phương pháp (phương pháp ngâm, phương pháp đun hồi lưu, phương pháp chiết xuất hỗ trợ siêu âm) để thu nhận các dịch chiết toàn phần của quả màng tang khô và khảo sát hoạt tính kháng khuẩn, chống oxi hóa in vitro và khả năng hạn chế sự hỏng thịt tươi. Kết quả nghiên cứu cho thấy, các cao chiết quả màng tang có hoạt tính chống oxi hóa và có khả năng kháng các vi khuẩn Bacillus subtilis, Bacillus cereus và Salmonella typhi. Trong đó, cao chiết toàn phần bằng phương pháp chiết xuất hỗ trợ siêu âm có hàm lượng polyphenol và flavonoid tổng số là cao nhất (hàm lượng TPC là 276,38±11,88mg GAE/g, hàm lượng TFC là 72,53 ±6,43mg QE/g) với hoạt tính chống oxi hóa là cao nhất (giá trị IC50 là 114,46 µg/ml) và hoạt tính kháng khuẩn (đường kính vòng kháng khuẩn ở các vi khuẩn B. subtilis, B. cereus, S. typhi lần lượt là 16,8 ± 0,5 mm; 13,5 ± 0,4 mm; 13,3 ± 0,4 mm) là mạnh nhất. Ngoài ra, cao chiết quả màng tang bằng phương pháp chiết xuất hỗ trợ siêu âm ở nồng độ 0,5% có khả năng hạn chế sự hỏng thịt tươi trong thời gian dự trữ lạnh 7 ngày. Kết quả thu được góp phần bổ sung dữ liệu nghiên cứu về loại quả này tại Việt Nam.

Từ khóa


Quả màng tang; Chiết xuất; Hoạt tính sinh học; Thành phần hóa học; Thịt tươi

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo


[1] Y. Wang, Z.-T. Jiang, and R. Li, "Antioxidant Activity, Free Radical Scavenging Potential and Chemical Composition of Litsea cubeba Essential Oil," Journal of Essential Oil Bearing Plants, vol. 15, no. 1, pp. 134-143, 2012.

[2] X. Wang, M. Gao, L. Wu, Y. Zhao, Y. Wang, and Y. Chen, "Antimicrobial activity of essential oils extracted from Litsea cubeba," Forestry Research, vol. 2, no. 1, pp. 1-9, 2022.

[3] A. Dalimunthe, D. Pertiwi, M. Muhammad, and D. Satria, "Analysis of antioxidant activity, total phenolic and flavonoid contents of ethanol extract of Litsea cubeba Lour. Bark,” E3S Web of Conferences, vol. 332, p. 08005, 2021.

[4] Z. R. Liu, Y. F. Zhang, Y. G. Bi, and H. L. Li, "Study on Extraction Process of Technics of Litsea Cubeba Oil,” Applied Mechanics and Materials, vol. 602-605, pp. 81-85, 2014.

[5] V. D. Doan et al., "Biosynthesis of Gold Nanoparticles Using Litsea cubeba Fruit Extract for Catalytic Reduction of 4-Nitrophenol,” Journal of Nanomaterials, vol. 2020, pp. 1-10, 2020.

[6] Y. Li, X. Zhuang, X. Wu, C. Qiu, and Y. Wang, "Sustainable Valorization of Litsea cubeba (Lour.) Pers. Residue as the New Lauric Oil Source Using Alternative Green Extraction and Refining Methods,” Foods, vol. 11, no. 14, p. 2047, 2022.

[7] C. Sun, J. Li, D. Wang, J. Yu, X. Wang, and L. Huang, "Preparative separation of alkaloids from Litsea cubeba using combined applications of pH-zone-refining and high-speed counter-current chromatography,” RSC Advances, vol. 5, no. 92, pp. 75831-75837, 2015.

[8] A. Dalimunthe, P. A. Z. Hasibuan, M. Fujiko, Masfria, and D. Satria, "Phytochemicals Analysis And Cell Cycle Arrest Activity of Ethanol Extract of Litsea cubeba Lour. Fruits Towards MCF-7/HER-2 Cell Line,” Rasayan Journal of Chemistry, vol. 14, no. 1, pp. 16-18, 2021.

[9] T. T. Jamir, P. L. Konyak, and A. Kichu, "A preliminary phytochemical analysis of a medicinal plant Litsea cubeba found in Kohima district, Nagaland India,” Journal of Medicinal Plants Studies, vol. 9, no. 1, pp. 21-24, 2021.

[10] H. Manurung, R. A. Nugroho, and E. Marina, "Phytochemical screening and antibacterial activity of leaves extract Balangla (Litsea cubeba (Lour) Pers.) from Malinau, East Borneo,” Proceedings of the 5th International Seminar on New Paradigm and Innovation on Natural Sciences and Its Application, 2015, p. 7.

[11] L. Othman, A. Sleiman, and R. M. Abdel-Massih, "Antimicrobial Activity of Polyphenols and Alkaloids in Middle Eastern Plants,” Front Microbiol, vol. 10, p. 911, 2019.

[12] G. C. Bag, P. G. Devi, and T. Bhaigyabati, "Assessment of Total Flavonoid Content and Antioxidant Activity of Methanolic Rhizome Extract of Three Hedychium Species of Manipur Valley," International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research, vol. 30, no. 1, pp. 154-159, 2015.

[13] K. Hara, T. Someya, K. Sano, Y. Sagane, T. Watanabe, and R. G. S. Wijesekara, "Antioxidant activities of traditional plants in Sri Lanka by DPPH free radical-scavenging assay,” Data Brief, vol. 17, pp. 870-875, Apr. 2018.

[14] A. W. Bauer, W. M. Kirby, J. C. Sherris, and M. Turck, "Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method,” Tech Bull Regist Med Technol, vol. 36, no. 3, pp. 49-52, March 1966.

[15] Technical Standard 4835:2002, "Meat and meat products - Measurement of pH - Reference method,” 2002.

[16] Technical Standard 3699:1990, "Aquatic products - Qualitative test for hydrogen sulfide and amononia,” 1990.

[17] Technical Standard 4833-1:2013, "Microbiology of the food chain - Horizontal method for the enumeration of microorganisms - Part 1: Colony count at 30 degrees C by the pour plate technique,” 2013.

[18] V. C Witte, G. F. Krause, and M. E. Bailey, “A new extraction method for determining 2- thiobarbituric acid values of pork and beef during storage,” Journal of Food Science, vol. 35, pp. 582-585, 1970.

[19] T. S Awad, H. A. Moharram et al., "Applications of ultrasound in analysis, processing and quality control of food: A review," Food Research International, vol. 48, no. 2, pp. 410-427, 2012.

[20] R. Y. Gan, X. R. Xu, F. L. Song, L. Kuang, and H. B. Li, "Antioxidant activity and total phenolic content of medicinal plants associated with prevention and treatment of cardiovascular and cerebrovascular diseases," Journal of Medicinal Plants Research, vol. 4, no. 22, pp. 2438-2444, 2010.

[21] A. A. Jovanović et al., "Optimization of the extraction process of polyphenols from Thymus serpyllum L. herb using maceration, heat- and ultrasound-assisted techniques,” Separation and Purification Technology, vol. 179, pp. 369-380, 2017.

[22] G. Pan, G. Yu, C. Zhu, and J. Qiao, "Optimization of ultrasound-assisted extraction (UAE) of flavonoids compounds (FC) from hawthorn seed (HS),” Ultrason Sonochem, vol. 19, no. 3, pp. 486-90, May 2012.

[23] D. P Mohapatra, V. Thakur, and S. K. Brar, "Antibacterial efficacy of raw and processed honey," Biotechnol Res Int, vol. 2011, 2011, Art. no. 917505.

[24] Technical Standard 7046:2019, Fresh meat, 2019.

"Times New Roman",serif;mso-fareast-font-family:Calibri;color:black;letter-spacing:

-.2pt;mso-ansi-language:PT-BR;mso-fareast-language:EN-US;mso-bidi-language:

AR-SA'>




DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.8283

Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved