NGHIÊN CỨU ĐỘC LỰC CỦA VI KHUẨN Streptococcus agalactiae 015-RIA1 TRÊN CÁ RÔ PHI VẰN CHỌN GIỐNG SINH TRƯỞNG NHANH THẾ HỆ G2

Phạm Hồng Nhật; Vũ Thị Huyền; Trương Thị Mỹ Hạnh; Nguyễn Thị Hạnh; Ngô Phú Thỏa; Phạm Anh Tuấn; Phan Thị Vân

doi:10.34238/tnu-jst.8299

NGHIÊN CỨU ĐỘC LỰC CỦA VI KHUẨN Streptococcus agalactiae 015-RIA1 TRÊN CÁ RÔ PHI VẰN CHỌN GIỐNG SINH TRƯỞNG NHANH THẾ HỆ G2

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 10/07/23 Ngày hoàn thiện: 30/08/23 Ngày đăng: 13/09/23

Các tác giả

1. Phạm Hồng Nhật , Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
2. Vũ Thị Huyền, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
3. Trương Thị Mỹ Hạnh, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
4. Nguyễn Thị Hạnh, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
5. Ngô Phú Thỏa, Học viện Nông nghiệp Việt Nam
6. Phạm Anh Tuấn, Hội Nghề cá Việt Nam
7. Phan Thị Vân, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I

Tóm tắt

Nghiên cứu được thực hiện nhằm xác định độc lực của vi khuẩn S. agalactiae 015-RIA1 trên cá rô phi vằn (Oreochromis niloticus) chọn giống sinh trưởng nhanh thế hệ thứ 2. Độc lực của vi khuẩn được đánh giá thông qua kiểu huyết thanh, gen độc lực và giá trị LD₅₀. Kết quả cho thấy, chủng 015-RIA1 đặc trưng bởi kiểu huyết thanh Ia, mang 12 gen độc lực khác nhau thuộc nhóm gen liên quan đến quá trình bám dính, xâm nhập và xâm nhiễm hệ miễn dịch. Điều này chứng tỏ 015-RIA1 là chủng mang độc lực. Giá trị LD₅₀ của chủng 015-RIA1 là 2,2 x 10⁶ cfu/ml sau 21 ngày cảm nhiễm. Sau 18h cảm nhiễm, cá thí nghiệm bắt đầu chết và xuất hiện dấu hiệu bệnh lý như bơi không định hướng, xuất huyết trên da và gốc vây, mắt bị lồi hoặc mờ đục. Phân lập lại vi khuẩn từ các mẫu cá nhiễm bệnh sau cảm nhiễm đều do vi khuẩn S. agalactiae. Tỷ lệ chết tích lũy cao nhất là 71,67% sau 8 ngày cảm nhiễm. Trong khi đó, ở các bể đối chứng, cá không xuất hiện dấu hiệu bệnh lý, không bị chết và không phân lập được vi khuẩn S. agalactiae. Kết quả này sẽ được ứng dụng để phát triển chỉ thị phân tử liên quan đến khả năng kháng bệnh trên cá rô phi vằn chọn giống sinh trưởng nhanh.

Từ khóa

Cá rô phi; Gen độc lực; Kiểu huyết thanh; Liều gây chết 50%; Streptococcus agalactiae

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] FAO, FAO Yearbook. Fishery and Aquaculture Statistics 2019/FAO annuaire/Rome, 2021.

[2] W. Miao and W. Wang, “Trends of aquaculture production and trade: Carp, tilapia, and shrimp,” Asian Fisheries Science, vol. 33, pp. 1-10, 2020, doi: 10.33997/j.afs.2020.33.S1.001.

[3] M. Amal and M. N. A. Zamri-Saad, “Streptococcosis in Tilapia (Oreochromis niloticus): A Review,” Pertanika J. Trop. Agric. Sci., vol. 34, no. 2, pp. 195-206, 2011.

[4] X. Ye, J. Li, M. Lu, G. Deng, X. Jiang, Y. Tian, Y. Quan, and Q. Jian, “Identification and molecular typing of Streptococcus agalactiae isolated from pond-cultured tilapia in China,” Fisheries Science, vol. 77, pp. 623-632, 2011, doi: 10.1007/s12562-011-0365-4.

[5] H. T. Dong, K. V. Nguyen, and H. T. Nguyen, “Some characteristics of Streptococcus agalactiae, causative agent of Streptococcosis disease of tilapia in Northern Vietnam,” National Aquculture Conference for Student and Young Scientists, Nha Trang University, 2011, pp. 348-356.

[6] R. Imperi, M. Pataracchia, M. Alfarone, G. Baldassarri, L. Orefici, and G. Creti, “A multiplex PCR assays for the direct identification of the capsular type (Ia to IX) of Streptococcus agalactiae,” Journal of Microbiological Methods, vol. 80, pp. 212-214, 2010.

[7] I. H. K. Kannika, D. Pisuttharachai, P. Srisapoome, J. Wongtavatchai, H. Kondo, and N. Areechon, “Molecular serotyping, virulence gene profiling and pathogenicity of S. agalactiae isolated from tilapia farms in Thailand by multiplex PCR,” Journal of Applied Microbiology, vol. 122, pp. 1497-1507, 2017.

[8] F. S. Legario, C. H. Choresca, J. F. Turnbull, and M. Crumlish, “Isolation and molecular characterization of streptococcal species recovered from clinical infections in farmed Nile tilapia in the Philippines,” Journal of Fish Diseases, vol. 43, pp. 1431-1442, 2020, doi: 10.1111/jfd.13247.

[9] G. C. Chattopadhyay, D. Carey, A. J. Caliot, E. Webbd, R. I. Laytone, J. R. Wang, Y. Bohnsack, J. F. Adderson, and E. E. Ulett, “Phylogenetic Lineage and Pilus Protein Spb1/SAN1518 Affect Opsonin-Independent Phagocytosis and Intracellular Survival of Group B Streptococcus,” Microbes Infect, vol. 13, no. 4, pp. 369-382, 2011, doi: 10.1016/j.micinf.2010.12.009.

[10] F. P. Y. Lin, R. Lan, V. Sintchenko, G. L. Gilbert, F. Kong, and E. Coiera, “Computational bacterial genome-wide analysis of phylogenetic profiles reveals potential virulence genes of Streptococcus agalactiae,” PLoS ONE, vol. 6, 2011, doi: 10.1371/journal.pone.0017964.

[11] X. Zhang, D. Li, A. Guo, Y. Zhang, Q. Chen, and X. Gong, “Molecular characterization of Streptococcus agalactiae in diseased farmed tilapia in China,” Aquaculture, vol. 412-413, pp. 64-69, 2013.

[12] S. C. Sudpraseart, C. Wang, and P. C. Chen, “Phenotype, genotype and pathogenicity of Streptococcus agalactiae isolated from cultured tilapia (Oreochromis spp.) in Taiwan,” Journal of Fish Diseases, pp. 1-10, 2020, doi: 10.1111/jfd.13296.

[13] M. N. A. Syuhada, R. Zamri-Saad, M. Ina-Salwany, M. Y. Mustafa, M. Nasruddin, N. N. Desa, M. N. M. Nordin, S. A. Barkham, and T. Amal, “Molecular characterization and pathogenicity of Streptococcus agalactiae serotypes Ia ST7 and III ST283 isolated from cultured red hybrid tilapia in Malaysia,” Aquaculture, vol. 515, 2020, Art. no. 734543.

[14] A. Chideroli, M. Dangwetngam, A. Issaro, W. Phromkunthong, and N. Suanyuk, “Pathological manifestations and immune responses of serotypes Ia and III Streptococcus agalactiae infections in Nile tilapia (Oreochromis niloticus),” Songklanakarin J. Sci. Technol., vol. 36, no. 5, pp. 499-506, 2014.

[15] B. R. Berridge, H. Bercovier, and P. F. Frelier, “Streptococcus agalactiae and S. difficile 16S-23S intergenic rDNA: genetic homogeneity and species-specific PCR,” Vet Microbiol, vol. 78, no. 2, pp. 165-173, 2001.

[16] M. Imperi, M. Pataracchia, G. Alfarone, L. Baldassarri, G. Orefici, and R. Creti, “A multiplex PCR assay for the direct identification of the capsular type (Ia to IX) of Streptococcus agalactiae,” Journal of Microbiological Methods, vol. 80, pp. 212-214, 2010, doi: 10.1016/j.mimet.2009.11.010.

[17] N. H. Pham, H. T. Vu, T. T. Vu, T. N. Phu, U. T. Pham, N. T. Nguyen, T. A. Pham, and V. T. Phan, “Application of Multiplex-PCR to determine serotype and virulence genes of Streptococcus agalactiae causing disease in Nile tilapia,” TNU Journal of Science and Technology, vol. 227, no. 10, pp. 259-267, 2022.

[18] L. J. Reed and H. Muench, “A simple method of estimating fifty per cent endpoints,” American Journal of Epidemiology, vol. 27, no. 3, pp. 493-497, 1938.

[19] G. Liu, W. Zhang, and C. Lu, “Comparative genomics analysis of Streptococcus agalactiae reveals that isolates from cultured tilapia in China are closely related to the human strain A909,” BMC genomics, vol. 14, no. 1, pp. 1-10, 2013.

[20] M. Buscetta, S. Papasergi, A. Firon, G. Pietrocola, C. Biondo, G. Mancuso, A. Midiri, and L. Romeo, “FbsC, a novel fibrinogen-binding protein, promotes Streptococcus agalactiae-host cell interactions,” J Biol Chem, vol. 289, pp. 21003-21015, 2014, doi: 10.1074/jbc.M114.553073.

[21] S. L. Kenzel and P. Henneke, “Interaction of Streptococcus agalactiae and cellular innate immunity in
colonization and disease,” Front Immunol, vol. 519, 2014, doi: 10.3389/fimmu.2014.00519.

[22] T. O. Harris, D. W. Shelver, J. F. Bohnsack, and C. E. Rubens, “A novel Streptococcal surface protease promotes virulence, resistance to opsonophagocytosis, and cleavage of human fibrinogen,” J Clin Invest, vol. 111, pp. 61-70, 2003.

[23] J. D. Bryan and D. W. Shelver, “Streptococcus agalactiae CspA is a serine protease that inactivates chemokines,” J Bacteriol, vol. 191, pp. 1847-1854, 2009.

[24] H. Anshary, R. A. Kurniawan, S. Sriwulan, R. Ramli, and D. V. Baxa, “Isolation and molecular identification of the etiological agents of streptococcosis in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in net cages in Lake Sentani, Papua, Indonesia,” Springerplus, vol. 3, no. 627, pp. 1-11, 2014.

[25] Amrullah, I. Baga, A. A. Jaya, and Wahidah, “Streptococcus agalactiae whole cell bacteria toxin protein in Nile tilapia Oreochromis niloticus,” AACL Bioflux, vol. 11, no. 2, pp. 460-468, 2018.

[26] M. Alsaid, F. A. Ali, Hassan, H. D. Noordin, K. B. Siti, M. A. Yasser, and A. H. Ruhil, “Heamatological, biochemical and clinical signs changes following experimental infection of S. agalactiae in red hybrid tilapia,” Basic Research Journal of Agricultural Science and Review, vol. 4, no. 9, pp. 289-295, 2015.

[27] C. A. Iregui, J. Comas, G. M. Vásquez, and N. Verjan, “Experimental early pathogenesis of Streptococcus agalactiae infection in red tilapia Oreochromis spp,” Journal of Fish Disease, vol. 39, no. 2, pp. 205-215, 2015.

[28] Y. He, J. L. Huang, K. I. Wang, D. F. Chen, Y. Geng, X. L. Huang, P. O. Yang, Y. Zhou, J. Wang, J. Min, and W. M. Lai, "Pathogenicity of Streptococcus agalactiae in Oreochromis niloticus," Oncotarget 5, vol. 9, no. 1, pp. 401-413, 2018.

[29] W. Agnew and A. C. Barnes, “Streptococcus iniae: An aquatic pathogen of global veterinary significance and a challenging candidate for reliable vaccination,” Veterinary Microbiology, vol. 122, pp. 1-15, 2007.

[30] A. H. Harbi, “Susceptibilyty of five species of tilapia to Streptococcus sp,” Asian Fisheries Science, vol. 9, pp. 177-181, 1996.

[31] N. N. Mansor, M. F. Nawi, S. Yusoff, S. Abdullah, and M. Zamri-Saad, “Determination of LD50 for Streptococcus agalactiae and Staphylococcus aureus infections in tilapia,” J. Vet. Malaysia, vol. 23, no. 2, pp. 22-27, 2011.

[32] A. Jiménez, V. Tibatá, H. Junca, N. Fernando, and C. Egui, “Evaluating a nested-PCR assay for detecting Streptococcus agalactiae in red tilapia (Oreochromis sp.) tissue,” Aquaculture, vol. 321, pp. 203-206, 2011.

[33] Y. Shen, K. Ma, F. Liu, and G. H. Yue, “Characterization of two novel gadd45a genes in hybrid tilapia and their responses to the infection of Streptococcus agalactiae,” Fish & Shellfish Immunology, vol. 54, pp. 276-281, 2016.

[34] W. Suebsong, S. Poompuang, P. Srisapoome, S. Koonawootrittriron, A. Luengnaruamitchai, H. Johansen, and M. Rye, “Selection response for Streptococcus agalactiae resistance in Nile tilapia Oreochromis niloticus,” Journal of Fish Diseases, vol. 01, pp. 1-10, 2019.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.8299

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ