Chia sẻ bài báo qua Email ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG ĐỐI KHÁNG Proteus mirabilis GÂY THỐI NHŨN HÀNH LÁ (Allium fistulosum) CỦA Bacillus spp.
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 01/10/24 Ngày hoàn thiện: 17/12/24 Ngày đăng: 18/12/24Các tác giả
1. Nguyễn Thị Liên
, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ2. Phan Ngọc Như Ngọc, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ
3. Ngô Thị Huỳnh My, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ
4. Lê Tuấn Tường, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ
5. Nguyễn Thanh Thảo, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ
6. Nguyễn Tăng Phú, Viện Công nghệ sinh học và Thực phẩm – ĐH Cần Thơ
Tóm tắt
Thối nhũn do vi khuẩn là một bệnh gây thiệt hại nghiêm trọng ở nhiều loại cây trồng khác nhau. Bacillus spp. được báo cáo là tác nhân kiểm soát sinh học hiệu quả trong kiểm soát nhiều mầm bệnh gây hại cây trồng. Nghiên cứu này được thực hiện với mục tiêu phân lập và tuyển chọn được các chủng vi khuẩn Bacillus spp. từ đất vùng rễ hành lá (Allium fistulosum) với hoạt tính đối kháng Proteus mirabilis SSR (chủng SSR) gây bệnh thối nhũn. Tổng số 25/45 chủng Bacillus phân lập cho thấy hoạt tính đối kháng chủng SSR trong thử nghiệm đồng nuôi cấy trong môi trường lỏng. Hầu hết các chủng vi khuẩn thể hiện khả năng đối kháng đều có khả năng sinh ra siderophore. Đối với khả năng sản sinh enzyme ly giải, số chủng vi khuẩn thử nghiệm có khả năng sinh protease và esterase lần lượt là 15 và 7. Chủng vi khuẩn DT2 được xác định là Bacillus thuringiensis thông qua kết quả giải trình tự vùng gen 16S rRNA và các đặc điểm sinh hoá. Kết quả nghiên cứu cho thấy tiềm năng của Bacillus spp. trong phòng trừ vi khuẩn P. mirabilis gây thối nhũn hành lá.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] M. C. Hoang and T. H. Ngo, “Selection and development of Korean welsh onion varieties in Northern Vietnam,” Journal of Vietnam Agricutural Science and Technology, vol. 12, no. 85, pp. 22-26, 2017.
[2] F. A. Mansour, M. E. Abdallah, S. A. Haroun, A. A. Gomaa, and H. H. Badr., “Occurrence and prevalence of the bacterial onion bulb rot pathogens in Egyp,” Journal of Plant Protection and Pathology, Mansoura University, vol. 2, no. 2, pp. 239-247, 2011.
[3] M. H. Abd-Alla, S. R. Bashandy, S. Ratering, and S. Schnell, “First report of soft rot of onion bulbs in storage caused by Pseudomonas aeruginosa in Egypt,” Journal of Plant Interactions, vol. 6, no. 4, pp. 229-238, 2011.
[4] M. Ashrafi, M. A. Mirhabibi, N. F. Charkhabi, A. Ravanlou, T. Allahverdipour, and S. N. Zarhgani, “Proteus mirabilis and Klebsiella variicola associated with onion bacterial streak and bulb rot,” Canadian Journal of Plant Pathology, pp. 1-11, 2024, doi: 10.1080/07060661.2024.2366937.
[5] S. A. Miller, J. P. Ferreira, and J. T. LeJeune, “Antimicrobial Use and Resistance in Plant Agriculture: A One Health Perspective,” Agriculture, vol. 12, no. 2, p. 289, 2022, doi: 10.3390/agriculture12020289.
[6] A. BiBi, S. Bibi, M. A. Al-Ghouti, and M. H. Abu-Dieyeh, “Isolation and evaluation of Qatari soil rhizobacteria for antagonistic potential against phytopathogens and growth promotion in tomato plants,” Scientific reports, vol. 13, no. 1, p. 22050, 2023, doi: 10.1038/s41598-023-49304-w.
[7] H. Abriouel, C. M. Franz, N. B. Omar, and A. Gálvez, “Diversity and applications of Bacillus bacteriocins,” FEMS microbiology reviews, vol. 35, no. 1, pp. 201-232, 2011, doi: 10.1111/j.1574-6976.2010.00244.x.
[8] W. Cui, J. Zhang, W. Wang, X. Wu, X. Luo, Y. Zou, K. Chen, and P. He, “Screening native Bacillus strains as potential biological control agents against ginger bacterial wilt and for promoting plant growth,” Biological Control, vol. 192, p. 105510, 2024, doi: 10.1016/j.biocontrol.2024.105510.
[9] H. Mácha, H. Marešová, T. Juříková, M. Švecová, O. Benada, A. Škríba, M. Baránek, Č. Novotný, and A. Palyzová, “Killing Effect of Bacillus velezensis FZB42 on a Xanthomonas campestris pv. campestris (Xcc) Strain Newly Isolated from Cabbage Brassica oleracea Convar. Capitata (L.): A Metabolomic Study,” Microorganisms, vol. 9, no. 7, p. 1410, 2021, doi: 10.3390/microorganisms9071410.
[10] C. E. H. Maung, V. Choub, J. Y. Cho, and K. Y. Kim, “Control of the bacterial soft rot pathogen, Pectobacterium carotovorum by Bacillus velezensis CE 100 in cucumber,” Microbial pathogenesis, vol. 173(Pt A), 2022, Art. no. 105807, doi: 10.1016/j.micpath.2022.105807.
[11] D. Margosch, M. G. Gänzle, M. A. Ehrmann, and R. F. Vogel, “Pressure inactivation of Bacillus endospores,” Applied and environmental microbiology, vol. 70, no. 12, pp. 7321-7328, 2004, doi: 10.1128/AEM.70.12.7321-7328.2004.
[12] J. G. Holt, Bergey’s manual of determinative bacteriology 9th Edition, Lippincott Williams and Wilkins, 1994.
[13] H. Naghili, H. Tajik, K. Mardani, S. M. R. Rouhani, A. Ehsani, and P. Zare, “Validation of drop plate technique for bacterial enumeration by parametric and nonparametric tests,” Veterinary research forum: An international quarterly journal, vol. 4, no. 3, pp. 179-183, 2013.
[14] M. A. Elazhary, S. A. Saheb, R. S. Roy, and A. Lagacé, “A simple procedure for the preliminary identification of aerobic gram negative intestinal bacteria with special reference to the Enterobacteriaceae,” Canadian journal of comparative medicine: Revue canadienne de medecine comparee, vol. 37, no. 1, pp. 43-46, 1973.
[15] L. P. Geok, C. N. A. Razak, R. N. Z. A. Rahman, M. Basri, and A. B. Salleh, “Isolation and screening of an extracellular organic solvent-tolerant protease producer,” Biochemical Engineering Journal, vol. 13, no. 1, pp. 73-77, 2003.
[16] P. Saroj, P. Manasa, and K. Narasimhulu, “Characterization of thermophilic fungi producing extracellular lignocellulolytic enzymes for lignocellulosic hydrolysis under solid-state fermentation,” Bioresources and Bioprocessing, vol. 5, p. 31, 2018.
[17] L. Ramnath, B. Sithole, and R. Govinden, “Identification of lipolytic enzymes isolated from bacteria indigenous to Eucalyptus wood species for application in the pulping industry,” Biotechnology reports (Amsterdam, Netherlands), vol. 15, pp. 114-124, 2017.
[18] B. Schwyn and J. B. Neilands, “Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores,” Analytical biochemistry, vol. 160, no. 1, pp. 47-56, 1987.
[19] W. P. Chen and T. T. Kuo, “A simple and rapid method for the preparation of Gram-negative bacterial genomic DNA,” Nucleic acids research, vol. 21, no. 9, p. 2260, 1993.
[20] D. J. Lane, “16S/23S rRNA sequencing,” in Nucleic acid techniques in bacterial systematics, E. Stackebrandt and M. Goodfellow, Eds. New York: Wiley, 1991, pp. 115-175.
[21] D. Ammons, J. Rampersad, and A. Khan, “Usefulness of staining parasporal bodies when screening for Bacillus thuringiensis,” Journal of invertebrate pathology, vol. 79, no. 3, pp. 203-204, 2002, doi: 10.1016/s0022-2011(02)00018-6.
[22] R. Rosariastuti, S. Sumani, and S. Hartati, “Analysis of bacterial community from the rhizosphere of shallots (Allium ascalonicum L.) in Brebes, Central Java, using Next Generation Sequencing (NGS) approach,” 9th International Conference on Sustainable Agriculture and Environment, 2022, doi: 10.1088/1755-1315/1114/1/012065.
[23] S. Marković, T. P. Milovanović, A. Jelušić, R. Iličić, O. Medić, T. Berić, and S. Stanković, “Biological control of major pathogenic bacteria of potato by Bacillus amyloliquefaciens strains SS-12.6 and SS-38.4,” Biological control, vol. 182, 2023, Art. no. 105238, doi: 10.1016/j.biocontrol.2023.105238.
[24] H. Tarek, S. S. Cho, K. B. Nam, J. M. Lee, S. H. Lee, and J. C. Yoo, “Mode of Action of Antimicrobial Potential Protease SH21 Derived from Bacillus siamensis,” International Journal of Molecular Sciences, vol. 25, no. 13, 2024, Art. no. 7046, doi: 10.3390/ijms25137046.
[25] V. Prabhawathi, T. Boobalan, P. M. Sivakumar, and M. Doble, “Antibiofilm properties of interfacially active lipase immobilized porous polycaprolactam prepared by LB technique,” PloS one, vol. 9, no. 5, 2014, Art. no. e96152, doi: 10.1371/journal.pone.0096152.
[26] Z. Shao, S. Gu, X. Zhang, J. Xue, T. Yan, S. Guo, T. Pommier, A. Jousset, T. Yang, Y. Xu, Q. Shen, and Z. Wei, “Siderophore interactions drive the ability of Pseudomonas spp. consortia to protect tomato against Ralstonia solanacearum,” Horticulture Research, vol. 11, no. 9, 2024, Art. no. uhae186, doi: 10.1093/hr/uhae186.
[27] O. S. Olanrewaju, B. R. Glick, and O. O. Babalola, “Mechanisms of action of plant growth promoting bacteria,” World Journal of Microbiology & Biotechnology, vol. 33, no. 11, p. 197, 2017, doi: 10.1007/s11274-017-2364-9.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.11214
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu