NGHIÊN CỨU ĐIỀU KIỆN LÊN MEN CHỦNG VI KHUẨN ACINETOBACTER NOSOCOMIALIS CYS-V3 TẠO NANO BẠC SINH HỌC VÀ ĐÁNH GIÁ TIỀM NĂNG KHÁNG TUYẾN TRÙNG NỐT SƯNG TRÊN HỒ TIÊU

Đỗ Văn Chung; Phan Tứ Quý; Vũ Thị Thu Lê; Lục Quang Tấn; Nguyễn Văn Bốn

doi:10.34238/tnu-jst.12631

NGHIÊN CỨU ĐIỀU KIỆN LÊN MEN CHỦNG VI KHUẨN ACINETOBACTER NOSOCOMIALIS CYS-V3 TẠO NANO BẠC SINH HỌC VÀ ĐÁNH GIÁ TIỀM NĂNG KHÁNG TUYẾN TRÙNG NỐT SƯNG TRÊN HỒ TIÊU

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 20/04/25 Ngày hoàn thiện: 13/08/25 Ngày đăng: 13/08/25

Các tác giả

1. Đỗ Văn Chung, 1) Trường Đại học Tây Nguyên, 2) Viện Khoa học Kỹ thuật Nông Lâm nghiệp Tây Nguyên
2. Phan Tứ Quý, Trường Đại học Tây Nguyên
3. Vũ Thị Thu Lê, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
4. Lục Quang Tấn, Phân hiệu Đại học Thái Nguyên tại tỉnh Hà Giang
5. Nguyễn Văn Bốn , Trường Đại học Tây Nguyên

Tóm tắt

Hồ tiêu là cây trồng chủ lực, đem lại giá trị kinh tế cao tại Tây Nguyên. Tuy nhiên, tình hình dịch hại do nấm và tuyến trùng đang diễn ra phổ biến. Mục tiêu của nghiên cứu này là xác định điều kiện lên men chủng vi khuẩn A. nosocomialis CYS-V3 nhằm tạo nano bạc sinh học cho quản lý tuyến trùng nốt sưng hại hồ tiêu. Kết quả điều kiện lên men trong bình tam giác cho thấy chủng A. nosocomialis CYS-V3 sinh trưởng tốt ở 35^oC, pH = 6, 200 rpm, sau 48h đạt mật độ 0,77 × 10⁸CFU/ml. Nhằm tăng hiệu quả lên men và rút ngắn thời gian nuôi cấy, chủng A. nosocomialis CYS-V3 được lên men thử nghiệm trong hệ thống Bioreactor 14L. Kết quả thực nghiệm ghi nhận mật độ vi khuẩn đạt 4,64 × 10¹⁰ CFU/ml sau 10h lên men. Canh trường lên men của chủng A. nosocomialis CYS-V3 được sử dụng tổng hợp nano bạc sinh học. Kết quả xác định đặc tính hạt nano cho thấy nano AgNPs có dạng hình cầu, phổ hấp thụ trong khoảng 418 - 460 nm và đỉnh cực đại ở 446 nm, kích cỡ hạt nhỏ (89 nm) và có độ bền cao với thế Zeta -36,5 mV. Nano bạc sinh học tổng hợp trong nghiên cứu này có hiệu lực ức chế mạnh (100%) trứng tuyến trùng nở và tuyến trùng tuổi 2 ở nồng độ 1,25 ppm AgNPs sau 3 ngày ủ.

Từ khóa

Acinetobacter nosocomialis CYS-V3; Chư Yang Sin; Lên men; Vi khuẩn bản địa; Tổng hợp xanh; Hạt nano bạc

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] General Statistics Office, Statistical Yearbook of Vietnam 2023. Hanoi, Vietnam: Statistical Publishing House, New Science and Technology Printing JSC, 2023.

[2] T. M. Mai, H. Tran, H. H. Nguyen, and T. T. Nguyen, “Development of technical procedures for nursery and care of black pepper (Piper nigrum L.) plants in the post-in vitro stage,” Agricultural Science. Crop Production, vol. 64, no. 9, pp. 36–42, 2021.

[3] Vietnambiz, “Vietnam Pepper Market Report 2022,” 2023. [Online]. Available: https://mediacdn.vietnambiz.vn/.../bao-cao-thi-truong-ho-tieu-2022.pdf. [Accessed January 27, 2025].

[4] M. Youssef and W. El-Nagdi, “Controlling root-knot nematode, Meloidogyne incognita infecting field dry pea (Pisum sativum L.) by certain Moringa residues and extracts,” Egyptian Journal of Agronematology, vol. 20, no. 2, pp. 110–119, 2021.

[5] A. R. Burns, R. J. Baker, M. Kitner, and D. K. Lee, “Selective control of parasitic nematodes using bioactivated nematicides,” Nature, vol. 618, no. 7963, pp. 102–109, 2023.

[6] A. A. Bhat, A. Shakeel, S. Waqar, Z. A. Handoo, and A. A. Khan, “Microbes vs. nematodes: Insights into biocontrol through antagonistic organisms to control root-knot nematodes,” Plants, vol. 12, no. 3, pp. 451–472, 2023.

[7] I. Lawal, A. O. Adekunle, M. O. Oladipo, and S. A. Ogunyemi, “A review on nematophagus fungi: A potential nematicide for the biocontrol of nematodes,” Journal of Environmental Bioremediation & Toxicology, vol. 5, no. 1, pp. 26-31, 2022.

[8] Q. H. B. Thuy, N. T. A. Nguyet, and P. N. D. Hoang, “Evaluation of the parasitic potential of Metarhizium anisopliae strains against Meloidogyne spp. nematodes causing root galls in pepper,” Proceedings Document, 2019, Art. no. 42.

[9] A. M. Saad, B. K. Ali, C. H. Zhang, and D. R. Kumar, “Biological control: An effective approach against nematodes using black pepper plants (Piper nigrum L.),” Saudi Journal of Biological Sciences, vol. 29, pp. 2047–2055, 2022.

[10] H. Chhipa, “Nanofertilizers and nanopesticides for agriculture,” Environmental Chemistry Letters, vol. 15, pp. 15–22, 2017.

[11] I. O. Adisa, M. A. Bello, A. D. Olaleye, and S. O. Akinola, “Recent advances in nano-enabled fertilizers and pesticides: A critical review of mechanisms of action,” Environmental Science: Nano, vol. 6, pp. 2002–2030, 2019.

[12] X. He, H. Deng, and H. Hwang, “The current application of nanotechnology in food and agriculture,” Journal of Food and Drug Analysis, vol. 27, no. 1, pp. 1–21, 2019.

[13] E. Worrall, T. S. Ross, M. D. Worrall, and J. F. White, “Nanotechnology for plant disease management,” Agronomy, vol. 8, no. 12, pp. 1–24, 2018.

[14] R. Kalaivani, P. Venkateswarlu, N. S. Kumar, and K. Dhanasekaran, “Synthesis of chitosan mediated silver nanoparticles (Ag NPs) for potential antimicrobial applications,” Frontiers of Laboratory Medicine, vol. 2, no. 1, pp. 30–35, 2018.

[15] Y. Dong, H. Zhu, Y. Shen, W. Zhang, and L. Zhang, “Antibacterial activity of silver nanoparticles of different particle size against Vibrio natriegens,” PLOS ONE, vol. 14, no. 9, Sep. 2019, Art. no. e0222322.

[16] P. Solanki, A. Bhargava, and H. C. Chhipa, “Nanotechnology in agriculture: A review,” Journal of Pure and Applied Microbiology, vol. 9, no. 1, pp. 737–746, 2015.

[17] K. S. Siddiqi, A. Husen, and R. A. K. Rao, “A review on biosynthesis of silver nanoparticles and their biocidal properties,” Journal of Nanobiotechnology, vol. 16, pp 1–28, 2018.

[18] V. C. Do, T. Q. Phan, N. D. Ho, T. H. Nguyen, and V. B. Nguyen, “Synthesis of silver nanoparticles using fermentation technology from Acinetobacter nosocomialis CYS-V3 isolated at Chu Yang Sin National Park,” Microbiology, Food and Environmental Technology, National Scientific Conference on Biotechnology, 2024, pp. 652–658.

[19] Q. L. Le, T. H. Vo, N. Nagasawa, T. Kume, F. Yoshii, and T. M. Nakanishi, “Biological effect of irradiated chitosan on plant in vitro,” Biotechnology and Applied Biochemistry, vol. 41, pp. 49–57, 2005.

[20] V. B. Nguyen, T. H. Nguyen, M. T. Nguyen, T. H. Pham, H. Q. Le, A. D. Nguyen, and V. N. Nguyen, “Isolation and identification of antagonistic bacterial strains in the rhizosphere of black pepper against nematodes in Ea Kar – Đắk Lắk,” Journal of Science – Tay Nguyen University, no. 34, pp. 5–10, 2019.

[21] T. T. H. C. Tran, “Scientific research results and technological applications,” Journal of Industry and Trade, no. 21, pp. 45–52, Aug. 2020.

[22] Q. T. Dinh, T. Q. A. Trinh, and T. T. Nguyen, “Optimization of certain culture conditions for marine microorganism strain Acinetobacter sp. QN6 producing protease,” Journal of Biotechnology, no. 5, pp. 1987–1996, 2007.

[23] P. Ajith, A. S. Murali, H. Sreehari, B. S. Vinod, A. Anil, and S. S. Chandran, “Green synthesis of silver nanoparticles using Calotropis gigantea extract and its applications in antimicrobial and larvicidal activity,” Materials Today: Proceedings, vol. 18, pp. 4987–4991, 2019.

[24] K. Kalimuthu, R. S. Babu, D. Venkataraman, M. Bilal, and S. Gurunathan, “Biosynthesis of silver nanocrystals by Bacillus licheniformis,” Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, vol. 65, pp. 150–153, 2008.

[25] G. N. Rajivgandhi, N. S. Alharbi, G. M. Alharbi, M. A. Alharbi, and M. A. Alharbi, “Effect of Ti and Cu doping on the structural, optical, morphological and anti-bacterial properties of nickel ferrite nanoparticles,” Results in Physics, vol. 23, 2021, Art. no. 104065.

[26] Đ. Q. Hoang, N. T. H. Nguyen, and P. V. N. Pham, “Study on the synthesis of silver-chitosan nanoparticles by in-situ coating method oriented for plant disease control formulation,” Vinh University Journal of Science, vol. 49, no. 4A, pp. 51–59, 2020.

[27] R. Baronia, P. Kumar, S. P. Singh, and R. K. Walia, “Silver nanoparticles as a potential nematicide against Meloidogyne graminicola,” Journal of Nematology, vol. 52, 2020, Art. no. e2020-02.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.12631

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ