Chia sẻ bài báo qua Email NGHIÊN CỨU TÁC DỤNG LÀM SÁNG DA VÀ CHỐNG OXY HÓA CỦA CAO CHIẾT TỪ VỎ QUẢ DẺ TRÙNG KHÁNH (CASTANEA MOLLISSIMA) Ở VIỆT NAM
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 15/09/25 Ngày hoàn thiện: 24/10/25 Ngày đăng: 27/10/25Các tác giả
1. Đàm Thị Bích Hạnh, 1) Học viện Khoa học và Công nghệ - VAST, 2) Trường Đại học Tây Nguyên2. Vũ Thị Thu Lê, Trường Đại học Nông Lâm - ĐH Thái Nguyên
3. Đỗ Tiến Lâm, Viện Hóa học - VAST
4. Đỗ Văn Huy, Phòng khám Đa khoa Tâm Phúc, Krông pắc, Đắk Lắk
5. Ngũ Trường Nhân
, Trường Đại học Tây Nguyên
Tóm tắt
Bài báo với mục đích đánh giá tác dụng ức chế tyrosinase và chống oxy hoá của các cao chiết tổng từ các bộ phận và các cao chiết phân đoạn: n-hexane, ethyl acetate và methanol từ vỏ quảloài Dẻ Trùng Khánh (Castanea mollissima Blume)thu hái ở huyện Trùng Khánh, tỉnh Cao Bằng. Việc đánh giá được tiến hành theo phương pháp ức chế gốc tự do 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl và phương pháp ức chế enzyme tyrosinase. Kết quả nghiên cứu cho thấy cao tổng từ vỏ quả thể hiện hoạt tính ức chế enzyme tyrosinase mạnh nhất với giá trị IC50 là 325,43 ± 14,78 μg/mL. Trong khi đó, dịch chiết lá, vỏ thân và cành thể hiện tác dụng ức chế enzyme vừa phải với giá trị IC50 nằm trong khoảng từ 336,43- 406,42 µg/mL. Thử nghiệm đánh giá hoạt tính chống oxy hóa in vitro cao chiết ethyl acetate thể hiện hoạt tính chống oxy hóa tốt nhất với khả năng dập tắt gốc tự do SC là 74,14 ± 0,4%, tương ứng với giá trị SC50 là 18,76 µg/mL. Cao chiết n-hexanecókhả năng dập tắt gốc tự do với giá trị SC là 60,49 ± 1,1%, tương ứng với giá trị SC50 là 51,32 µg/mL. Các cao chiết còn lại biểu hiện hoạt tính ở mức trung bình và yếu.Điều này cho thấy, các lớp chất biểu hiện hoạt tính chống gốc tự do đa phần nằm trong các cao chiết kém phân cực và phân cực trung bình.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] T. B. Nguyen, The catalog of Vietnamese plant species, Hanoi: Hanoi Agriculture Publishing House; 2003, pp. 227-269.
[2] T. T. L. Vu, S. L. Wang, T. T. T. Ho, Q. T. Luc, T. Q. Phan, T. K. T. Phan, T. B. H. Dam, T. K. P. Phan, A. D. Nguyen, and V. B. Nguyen, “Elucidation of potent mammalian enzymes inhibitors targeting anti‑diabetes drug from Castanea mollissima blume, 1851: an edible herbal collected in Vietnamvia experimental and computation approaching,” Res. Chem. Intermed, vol. 50, pp. 6065–6086, 2024.
[3] T. T. Phung, D. X. Tran, T. K. Do, A. Ahmad, V. Q. Nguyen, T. T. A. Truong, H. A. La, and N. M. Truong, “Phenolic compositions and antioxidant properties in bark, flower, inner skin, kernel and leaf extracts of Castanea crenata Sieb. etZucc,” Antioxidants (Basel), vol. 6, pp. 31-46, 2017.
[4] F. Yang, Q. Liu, S. Pan, C. Xu, and Y. L. Xiong, “Chemical Composition and Quality Traits of Chinese Chestnuts (Castanea mollissima) Produced in Different Ecological Regions,” Food Bioscience, vol. 11, pp. 33-42, 2015.
[5] A. Kremer, A. G. Abbott, J. E. Carlson, P. S. Manos, C. Plomion, P. Sisco, M. E. Staton, S. Ueno, and G. G. Vendramin, “Genomics of Fagaceae,” Tree Genetics and Genomes, vol. 8, pp. 563-610, 2012.
[6] L. Zhang, H. Y. Gao, M. Baba, Y. Okada, T. Okuyama, L. J. Wu, and L. B. Zhan, “Extracts and Compounds with Anti-Diabetic Complications and Anti-Cancer Activity from Castanea mollissina Blume (Chinese chestnut) ,” BMC Complementary and Alternative Medicine, vol. 14, no. 1, pp. 1-9, 2014.
[7] Q. L. Le, L. H. H. Nguyen, V. M. Le, B. C. Phung, and H. D. Nguyen, “Depigmenting effect of Sophora japonica L. in b16f10 melanoma cells,” Journal of Science Technology and Food, vol. 17, no. 1, pp. 14-20, 2018.
[8] J. G. Vaughan and C. A. Geissler, The New Oxford Book of Food Plants, 2nd edition. Oxford University Press, New York/Oxford, 1997.
[9] T. Ozcan, L. Yilmaz-Ersan, A. Akpinar-Bayizit, and B. Delikanli, “Antioxidant Properties of Probiotic Fermented Milk Supplemented with Chestnut Flour (Castanea sativa Mill.),” J. Food Process Preserv., vol. 41, no. 5, 2017, Art. no. e13156.
[10] Y. Lim, J.-W. Park, O.-K. Kwon, J.-W. Lee, H.-S. Lee, S. Lee, S. Choi, W. Li, H. Jin, S.-B. Han, “Anti-inflammatory effects of a methanolic extract of Castanea seguinii Dode in LPS-induced RAW264. 7 macrophage cells,” International Journal of Molecular Medicine, vol. 41, pp. 391-398, 2014.
[11] S. H. Han, M. S. Hur, M. J. Kim, W. H. Jung, M. Park, J. H. Kim, H. J. Shin, Y. B. Choe, K. J. Ahn, Y. W. Lee, “In vitro anti-Malassezia activity of Castanea crenata shell and oil-soluble Glycyrrhiza extracts,” Annals of Dermatology, vol. 29, pp. 321-326, 2017.
[12] G. Squillaci, F. Apone, L. M. Sena, A. Carola, A. Tito, M. Bimonte, A. De Lucia, G. Colucci, F. La Cara, and A. Morana, “Chestnut (Castanea sativa Mill.) Industrial Wastes as A Valued Bioresource for The Production of Active Ingredients,” Process Biochem., vol. 64, pp. 228-236, 2018.
[13] A. Basile, S. Sorbo, S. Giordano, L. Ricciardi, S. Ferrara, D. Montesano, C. R. Castaldo, M. L. Vuoto, and L. Ferrara, “Antibacterial and Allelopathic Activity of Extract from Castanea sativa Leaves,” Fitoterapia, vol. 71, pp. 110-116, 2000.
[14] P. Comandini, M. J. Lerma-García, E. F. Simó-Alfonso, and T. G. Toschi, “Tannin Analysis of Chestnut Bark Samples (Castanea sativa Mill.) by HPLC-DAD-MS,” Food Chem., vol. 157, pp. 290-295, 2014.
[15] M. Brenner and V. J. Hearing, “The protective role of melanin against UV damage in human skin,” Photochem. Photobiol., vol. 84, no. 3, pp. 539–549, 2008.
[16] A. Hering, M. Gucwa, B. Wielgomas, and J. R. Ochocka, “Photoprotection and antiaging activity of extracts from Honeybush (Cyclopia sp.)—in vitro wound healing and inhibition of the skin extracellular matrix enzymes: tyrosinase, collagenase, elastase and hyaluronidase,” Pharmaceutics, vol. 15, no. 5, 2023, Art. no. 1542.
[17] W. W. Brand et al., "Use of a Free Radical Method to Evaluate Antioxidant Activity,” Lebenm Wissu Technol, vol. 2, no. 1, pp. 25-30, 1995.
[18] S. Gorinstein et al., "Comparison of the contents of the main biochemical compounds and antioxidant activity of some Spanish olive oils as determined by four different radical scavenging tests,” Journal of Nutritional Biochemistry, vol. 14, pp. 154-159, 2003.
[19] A. Kumar et al., "Antioxidant Activity and Pharmacological Screening of Tinospora Cordifolia (Thunb.)," The Bioscan, vol. 8, no. 2, pp. 689-693, 2013.
DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.13604
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu