TẠO DÒNG VÀ GIẢI TRÌNH TỰ TOÀN BỘ GENE E2 CỦA VIRUS DỊCH TẢ HEO CỔ ĐIỂN Ở MỘT SỐ TRẠI HEO TẠI MIỀN NAM VIỆT NAM | Nam | TNU Journal of Science and Technology

TẠO DÒNG VÀ GIẢI TRÌNH TỰ TOÀN BỘ GENE E2 CỦA VIRUS DỊCH TẢ HEO CỔ ĐIỂN Ở MỘT SỐ TRẠI HEO TẠI MIỀN NAM VIỆT NAM

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 09/06/22                Ngày hoàn thiện: 29/07/22                Ngày đăng: 31/07/22

Các tác giả

1. Nguyễn Minh Nam Email to author, Trường Đại học Quốc gia Tp.HCM
2. Nguyễn Thị Phương Bình, Công Ty TNHH Dịch vụ chăn nuôi P&Y , Tp. HCM, Việt Nam
3. Lại Công Danh, Trường Đại học Nông Lâm, Tp. HCM
4. Nguyễn Ngọc Hải, Trường Đại học Nông Lâm, Tp. HCM

Tóm tắt


Bệnh dịch tả heo cổ điển (Classical swine fever disease) là một bệnh lâu đời, nguy hiểm và gây thiệt hại kinh tế đáng kể cho ngành chăn nuôi heo trên toàn thế giới. Trình tự gene mã hóa protein E2 là một cơ sở quan trọng để đánh giá, so sánh đa dạng di truyền của CSFV và phát triển vaccine. Nghiên cứu này được tiến hành nhằm tạo ra các dòng E. coli mang plasmid chứa đầy đủ trình tự gene E2. 21 mẫu dương tính với CSFV đã được thu thập được biến nạp vào các dòng E. coli DH5α. Các plasmid sau đó được tinh sạch và giải trình tự nhằm đánh giá hiệu quả của phương pháp tạo dòng. Kết quả cho thấy nghiên cứu đã tạo thành công 21 dòng vi khuẩn E. coli mang toàn bộ gene E2 của CSFV. Các trình tự này tương đồng cao (87,94 – 98,84%) khi so sánh với 100 trình tự có độ tương đồng cao nhất trên NCBI. Ngoài ra, 19 trình tự tương đồng rất cao với các chủng thuộc phân nhóm 2.1c (95,00 – 96,34%) và 2 trình tự với phân nhóm 2.2 (92,05 – 93,03%). Nghiên cứu này là cơ sở cho việc áp dụng kĩ thuật tạo dòng E. coli mang gene E2 trong việc phân tích di truyền của CSFV một cách ổn định, cũng là cơ sở cho sự tạo ra các protein E2 tái tổ hợp phục vụ việc phát triển vaccine tiểu đơn vị chống CSFV sau này.


Từ khóa


CSFV; Gene E2; Giải trình tự; Tạo dòng; Dịch tả heo cổ điển

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo


[1] P. Lowings, G. Ibata, J. Needham, and D. Paton, "Classical swine fever virus diversity and evolution," Journal of General Virology, vol. 77, no. 6, pp. 1311-1321, 1996.

[2] D. Paton, A. McGoldrick, I. Greiser-Wilke, S. Parchariyanon, J.-Y. Song, P. Liou, T. Stadejek, J. Lowings, H. Björklund, and S. Belak, "Genetic typing of classical swine fever virus," Veterinary microbiology, vol. 73, no. 2-3, pp. 137-157, 2000.

[3] M.-C. Deng, C.-C. Huang, T.-S. Huang, C.-Y. Chang, Y.-J. Lin, M.-S. Chien, and M.-H. Jong, "Phylogenetic analysis of classical swine fever virus isolated from Taiwan," Veterinary microbiology, vol. 106, no. 3-4, pp. 187-193, 2005.

[4] C. Pan, M. Jong, T. Huang, H. Liu, S. Lin, and S. Lai, "Phylogenetic analysis of classical swine fever virus in Taiwan," Archives of Virology, vol. 150, no. 6, pp. 1101-1119, 2005.

[5] W. Gong, J. Wu, Z. Lu, L. Zhang, S. Qin, F. Chen, Z. Peng, Q. Wang, L. Ma, and A. Bai, "Genetic diversity of subgenotype 2.1 isolates of classical swine fever virus," Infection, Genetics and Evolution, vol. 41, pp. 218-226, 2016.

[6] A. Kamakawa, H. T. V. Thu, and S. Yamada, "Epidemiological survey of viral diseases of pigs in the Mekong delta of Vietnam between 1999 and 2003," Veterinary Microbiology, vol. 118, no. 1-2, pp. 47-56, 2006.

[7] A. Töpfer, D. Höper, S. Blome, M. Beer, N. Beerenwinkel, N. Ruggli, and I. Leifer, "Sequencing approach to analyze the role of quasispecies for classical swine fever," Virology, vol. 438, no. 1, pp. 14-19, 2013.

[8] U. Fahnøe, A. G. Pedersen, P. C. Risager, J. Nielsen, G. J. Belsham, D. Höper, M. Beer, and T. B. Rasmussen, "Rescue of the highly virulent classical swine fever virus strain “Koslov” from cloned cDNA and first insights into genome variations relevant for virulence," Virology, vol. 468, pp. 379-387, 2014.

[9] A. Postel, S. Schmeiser, J. Bernau, A. Meindl-Boehmer, G. Pridotkas, Z. Dirbakova, M. Mojzis, and P. Becher, "Improved strategy for phylogenetic analysis of classical swine fever virus based on full-length E2 encoding sequences," Veterinary research, vol. 43, no. 1, pp. 1-15, 2012.

[10] M. Beer, K.V. Goller, C. Staubach, and S. Blome, "Genetic variability and distribution of Classical swine fever virus," Animal Health Research Reviews, vol. 16, no. 1, pp. 33-39, 2015.

[11] M. König, T. Lengsfeld, T. Pauly, R. Stark, and H.-J. Thiel, "Classical swine fever virus: independent induction of protective immunity by two structural glycoproteins," Journal of virology, vol. 69, no. 10, pp. 6479-6486, 1995.

[12] A. Clavijo, M. Lin, J. Riva, and E.-M. Zhou, "Application of competitive enzyme-linked immunosorbent assay for the serologic diagnosis of classical swine fever virus infection," Journal of veterinary diagnostic investigation, vol. 13, no. 4, pp. 357-360, 2001.

[13] H. Zhang, W. Wen, Z. Zhao, J. Wang, H. Chen, P. Qian, and X. Li, "Enhanced protective immunity to CSFV E2 subunit vaccine by using IFN-γ as immunoadjuvant in weaning piglets," Vaccine, vol. 36, no. 48, pp. 7353-7360, 2018.

[14] S. Yao, D. J. Hart, and Y. An, "Recent advances in universal TA cloning methods for use in function studies," Protein Engineering, Design and Selection, vol. 29, no. 11, pp. 551-556, 2016.

[15] Y. Qi, B.-Q. Zhang, Z. Shen, and Y.-H. Chen, "Candidate vaccine focused on a classical swine fever virus epitope induced antibodies with neutralizing activity," Viral immunology, vol. 22, no. 3, pp. 205-213, 2009.

[16] X.-N. Dong and Y.-H. Chen, "Marker vaccine strategies and candidate CSFV marker vaccines," Vaccine, vol. 25, no. 2, pp. 205-230, 2007.

[17] A. Bouma, A. De Smit, E. De Kluijver, C. Terpstra, and R. Moormann, "Efficacy and stability of a subunit vaccine based on glycoprotein E2 of classical swine fever virus," Veterinary microbiology, vol. 66, no. 2, pp. 101-114, 1999.

[18] M. Hulst, D. Westra, G. Wensvoort, and R. Moormann, "Glycoprotein E1 of hog cholera virus expressed in insect cells protects swine from hog cholera," Journal of Virology, vol. 67, no. 9, pp. 5435-5442, 1993.

[19] P. Van Rijn, A. Bossers, G. Wensvoort, and R. Moormann, "Classical swine fever virus (CSFV) envelope glycoprotein E2 containing one structural antigenic unit protects pigs from lethal CSFV challenge," Journal of General Virology, vol. 77, no. 11, pp. 2737-2745, 1996.

[20] G. Wensvoort, "Topographical and functional mapping of epitopes on hog cholera virus with monoclonal antibodies," Journal of general virology, vol. 70, no. 11, pp. 2865-2876, 1989.

[21] N. H. Nguyen, B. T. P. Nguyen, D. T. Do, T. Q. Nguyen, D. T. M. Nguyen, and M. N. Nguyen, "Genetic diversity and molecular characterization of classical swine fever virus envelope protein genes E2 and Erns circulating in Vietnam from 2017 to 2019," Infection, Genetics and Evolution, vol. 96, no. p. 105140, 2021.

[22] T. T. P. Le, T. T. H. Nguyen, V. P. Kim, X. H. Tran, A. T. Bui, H. Dang, D. T. Tran, C. J. Morrissy, F. Wong, V. Stevens, and K. Davies, "Genetic analysis of swine cholera virus in some southern provinces of Vietnam," Journal of Veterinary science and technology, vol. XVII, no. 2, pp. 5-11, 2010.




DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.6139

Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved