NGHIÊN CỨU THÀNH PHẦN HÓA HỌC VÀ HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LÁ ĐÀO (PRUNUS PERSICA. S) Ở BẮC GIANG

Đồng Đức Thiện; Bùi Thái Nam; Nguyễn Thị Tâm Anh; Đinh Khánh Linh; Đinh Thúy Vân

doi:10.34238/tnu-jst.6432

NGHIÊN CỨU THÀNH PHẦN HÓA HỌC VÀ HOẠT TÍNH SINH HỌC CỦA LÁ ĐÀO (PRUNUS PERSICA. S) Ở BẮC GIANG

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 05/09/22 Ngày hoàn thiện: 19/10/22 Ngày đăng: 26/10/22

Các tác giả

1. Đồng Đức Thiện, Trường THPT Tân Yên 1 - Bắc Giang
2. Bùi Thái Nam, Trường THPT Tân Yên 1 - Bắc Giang
3. Nguyễn Thị Tâm Anh, Trường THPT Tân Yên 1 - Bắc Giang
4. Đinh Khánh Linh, Trường THPT Tân Yên 1 - Bắc Giang
5. Đinh Thúy Vân , Trường Đại học Sư phạm - ĐH Thái Nguyên

Tóm tắt

Cây đào (Prunus persica (L.) Batsch) thuộc họ hoa hồng (Rosaceae) có vùng phân bố chủ yếu ở các tỉnh miền núi phía Bắc. Các bộ phận của cây đào từ lâu đã được người dân sử dụng với nhiều mục đích như: hoa đào để chưng tết, quả đào dùng làm thực phẩm... Trong y học dân gian, các bộ phận của cây đào đều có tác dụng chữa bệnh như: Lá đào để chữa các bệnh ngoài da như ghẻ lở, viêm loét, mề đay, hắc lào…, hạt đào được sử dụng chữa ho, điều kinh, cầm máu, co tử cung cho phụ nữ sau sinh, hoa đào được dùng trị thủy thũng, thông tiểu tiện... Từ cao chiết ethanol (LĐ-ET) lá đào, tiến hành phân tích định lượng một số thành phần hóa học thu được kết quả sau: hàm ẩm (7,1%), hàm lượng tro toàn phần (8,5%), hàm lượng đường khử (11,8%), hàm lượng cellulose (12,6%), hàm lượng sterol (24,3%), hàm lượng flavonoid (7,5%) và hàm lượng terpenoid (12,8%) và tanin (11,7%). Cao chiết ethanol và ethyl acetate lá đào có hoạt tính kháng nấm và kháng viêm tốt, ức chế sự sản sinh NO với giá trị IC₅₀ lần lượt là 89,31 g/mL; 69,72 µg/mL. Từ kết quả này cho thấy, cao chiết ethyl acetate lá đào có hoạt tính kháng nấm và viêm tốt hơn cao chiết ethanol và có tiềm năng phát triển thành sản phẩm hỗ trợ chăm sóc sức khỏe con người.

Từ khóa

Prunus persica (L.); Hoa hồng; Kháng viêm; Kháng khuẩn; Kháng nấm

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] R. Kant, R. K. Shukla, and A. Shukla, “A Review on Peach (Prunus persica): An Asset of Medicinal Phytochemicals,” International Journal for Research in Applied Science & Engineering Technology, vol. 8, pp. 2186-2189, 2018.

[2] L. T. Do, Vietnamese medicinal plants and flavors. Medical Publishing House, pp. 706-707, 2004.

[3]A. Kazana, H. Koyub, I. C. Turuc, and O. Y. Celiktasa, “Supercritical fluid extraction of Prunus persica leaves and utilization possibilities as a source of phenolic compounds,” J. of Supercritical Fluids, vol. 92, pp. 55-59, 2014.

[4] A. H. Gilani, N. Aziz, S. M. Ali, and M. Saeed, “Pharmacological basis for the use of peach leaves in constipation,” J. Ethnopharmacology, vol. 73, pp. 87-93, 2000.

[5] G. Liakopoulos, S. Stavrianakou, and G. Karabourniotis, “Analysis of epicuticular phenolics of Prunus persica and Olea europaea leaves: evidence for the chemical origin of the UV-induced blue fluorescence of stomata,” Annals of Botany, vol. 87, pp. 641-648, 2001.

[6] L. V. Upyr and A. N. Komissarenko, “Coumarins of Persica vulgaris,” Chemistry of Natural Compounds, vol. 38 , p. 97, 2002.

[7] R. Raturi, S. C. Sati, P. P. Badoni, H. Singh, and M. D. Sati, “Chemical Constituents of Prunus persica Stem Bark,” J. Sci. Res, vol. 4, no. 3, pp. 769-774, 2012.

[8] H. Ozpinar, S. Dag, and E. Yigit, “Antibacterial effect of peach (Persica vulgaris Miller) leaves extract,” Cumhuriyet Medicinal J, vol. 35, pp. 172-178, 2013.

[9] M. Shirosaki, T. Koyama, and K. Yazawa, “Suppressive effect of peach leaf extract on glucose absorption from the small intestine of mice,” Bioscience Biotechnology Biochemistry, vol. 76, pp. 89-94, 2012.

[10] V. M. Dirsch, H. Stuppner, and A. M. Vollmar, “The Griess assay: suitable for a bio-guided fractionation of anti-inflammatory plant extracts,” Planta Med, vol. 64, pp. 423-426, 1998.

[11] K. Jiang, L. Chen, S. Wang, Y. Wang, Y. Li, and K. Gao “Anti-inflammatoryterpenoids from the leaves and twigs of Dysoxylum gotadhora,” J Nat Prod, vol. 78, pp. 1037-1044, 2015.

[12] E.-J. Joung, M.-S. Lee, J.-W. Choi et al., “Anti-inflammatory effects of phlorofucofuroeckol B-rich ethyl acetate fraction obtained from Myagropsis myagroides on lipopolysaccharide-stimulated RAW 264,7 cells and mouse edema,” Intern Immunopharm, vol. 14, pp. 471-480, 2012.

[13] K. Sowndhararajan, R. Santhanam, S. Hong, J.-W. Jhoo, and S. Kim, “Suppressive effects of acetone extract from the stem bark of three Acacia species on nitric oxide production in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264,7 macrophage cells,” Asian Pac J Trop Biomed, vol. 6, pp. 658-664, 2016.

[14] D. K. Trinh, A. H. Ly, D. P. Dang, H. Q. Nguyen, and T. T. H. Hoang, “Biosynthesis of silver nanoparticles by using extract of prunus persica leaves and its antibacterial activity,” Journal of science and technology, vol. 164, no. 4, pp. 153-156, 2017.

[15] C. Linlin, D. Huidan, C. Hengmin, Z. Zhicai, D. Junliang, L. Yinglun, W. Xun, and Z. Ling, "Inflammatory responses and inflammation-associated diseases in organs," Oncotarget. Impact Journals, LLC, vol. 9, no. 6, pp. 7204-7218, 2018.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.6432

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ