NGHIÊN CỨU CẢM ỨNG VÀ NUÔI CẤY TẠO RỄ TƠ CÂY VÚ BÒ  (Ficus simplicissima Lour.)

Vũ Thị Thu Thủy; Vũ Mạnh Cường; Trần Thị Hồng; Chu Hoàng Mậu; Nguyễn Thị Thu Ngà

doi:10.34238/tnu-jst.6552

NGHIÊN CỨU CẢM ỨNG VÀ NUÔI CẤY TẠO RỄ TƠ CÂY VÚ BÒ (Ficus simplicissima Lour.)

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 23/09/22 Ngày hoàn thiện: 19/10/22 Ngày đăng: 26/10/22

Các tác giả

1. Vũ Thị Thu Thủy, Trường Đại học Sư phạm – ĐH Thái Nguyên
2. Vũ Mạnh Cường, Trường Đại học Sư phạm – ĐH Thái Nguyên
3. Trần Thị Hồng, Trường Đại học Sư phạm – ĐH Thái Nguyên
4. Chu Hoàng Mậu, Trường Đại học Sư phạm – ĐH Thái Nguyên
5. Nguyễn Thị Thu Ngà , Trường Đại học Sư phạm – ĐH Thái Nguyên

Tóm tắt

Cây Vú bò (Ficus simplicissima Lour.) chứa flavonoid và saponin có khả năng chống oxy hóa mạnh, được dùng để điều trị một số bệnh như viêm nhiễm, dị ứng, loét dạ dày… Tuy nhiên, hàm lượng flavonoid tổng hợp tự nhiên trong cây Vú bò rất thấp (khoảng 0,897 mg/g lá tươi). Do đó, một phương pháp đã được đề xuất để tăng cường hàm lượng flavonoid trong cây Vú bò là ứng dụng kỹ thuật nuôi cấy mô tạo dòng rễ tơ tăng sinh khối. Nghiên cứu này trình bày kết quả quá trình cảm ứng và nuôi cấy tạo dòng rễ tơ thông qua A. rhizogenes ở cây Vú bò. Trong 2 loại vật liệu lây nhiễm với A. rhizogenes (đoạn thân, mô lá) thì mô lá là vật liệu thích hợp cho tạo rễ tơ. Mật độ vi khuẩn tương ứng với giá trị OD₆₀₀ = 0,8; nồng độ AS 150 μmol/l; thời gian nhiễm khuẩn 10 phút; thời gian đồng nuôi cấy 2 ngày; nồng độ cefotaxime 550 mg/l là những điều kiện thích hợp cho cảm ứng tạo rễ tơ từ mô lá. Môi trường MS ở trạng thái lỏng, không bổ sung chất điều hòa sinh trưởng, nuôi trong điều kiện lắc là môi trường thích hợp cho sự tăng trưởng rễ tơ. Kết quả kiểm tra sự có mặt của gen rolC bằng phương pháp PCR và sự vắng mặt của gen virD2 đã khẳng định 5 dòng rễ tơ được tạo ra từ cây Vú bò.

Từ khóa

Agrobacterium rhizogenes; Mô lá; Sinh khối; Vú bò; Rễ tơ

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] D. B. Dai, Natural compounds with biological activity against a number of diseases for humans and animals. Publisher Natural Science and Technology, 2008.

[2] I. Sivanesan and B. R. Jeong, “Induction and establishment of adventitious and hairy root cultures of Plumbago zeylanica L.,” Af J. Biotec., vol. 8, pp. 5294-5300, 2009.

[3] I. Casimiro, A. Marchant, R. P. Bhalerao, and T. Beeckman, “Auxin transport promotes Arabidopsis lateral root initiation,” Plant Cell, vol. 13, pp. 843-852, 2001.

[4] N. N. Ono and L. Tian, “The multiplicity of hairy root cultures: prolific possibilities,” Plant Sci., vol. 180, pp. 439-446, 2011.

[5] M. Kajala, G. Pauluzzi, D. Wang, M. A. Reynoso, K. Zumstein, J. Garcha, S. Winte, and H. Masson, “Hairy root transformation using Agrobacterium rhizogenes as a tool for exploring cell type-specific gene expression and function using tomato as a model,” Plant Physiol., vol. 166, pp. 455-469, 2014.

[6] T. N. T. Vu and H. M. Chu, “Establisment of Hairy Root Lines in Vietnam (Talinum paniculatum),” VNU Science Journal: Natural Science and Technology, vol. 33, no. 2S, pp. 233-241, 2017.

[7] T. T. Ninh, T. V. Le, H. A. La, T. T. Nguyen, and T. P. T. Nguyen, “Research on induction and culture of hairy roots of Salvia miltiorrhiza Bunge,” Journal of Science and Development, vol. 13, no. 2, pp. 251-258, 2015.

[8] T. H. Nguyen and V. V. Nguyen, “Research on rapid in vitro multiplication of hairy root biomass of Codonopsis javanica (Blume) Hook.f,” Journal of Forestry Science and Technology, vol. 10, pp. 34-40, 2017.

[9] S. Mehrotra, A. K. Kukreja, S. P. S. Khanuja, and B. N. Mishra, “Genetic transformation studies and scale up of hairy root culture of Glycyrrhiza glabra in bioreactor,” Elec J Biotechnol, vol. 11, no. 2, pp. 1-7, 2008.

[10] S. Majumdar, S. Garai, and S. Jha, “Genetic transformation of Bacopa monnieri by wild type strains of Agrobacterium rhizogenes stimulates production of bacopa saponins in transformed calli and plants,” Plant Cell Rep, vol. 30, no. 5, pp. 941-954, 2011.

[11] V. Veena and C. G. Taylor, “Agrobacterium rhizogenes: recent developments and promising applications,” In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, vol. 43, pp. 383-403, 2007.

[12] M. A. Shaghai-Maroof, K. M. Soliman, R. A. Jorgensen, and R. W. Allard, “Ribosomal DNAsepacer- length polymorphism in barley: mendelian inheritance, chromosomal location, and population dynamics,” Proc Natl Acad Sci, vol. 81, pp. 8014-8019, 1984.

[13] V. P. Sinkar, F. F. White, and M. P. Gordon, “Molecular biology of Ri-plasmid,” J. Biosci. - Indian Acad.Sci., vol. 11, pp. 47-57, 1987.

[14] K. Lièvre, A. Hehn, T. L. M. Tran, A. Gravot, B. Thomasset, F. Bourgaud, and E. Gontier, “Genetic transformation of the medicinal plant Ruta graveolens L. by an Agrobacterium tumefaciens - mediated method,” Plant Sci., vol. 168, pp. 883-888, 2005.

[15] H. M. Chu, Modern methods of genetic analysis in plant breeding. Thai Nguyen University Publishing House, 2008.

[16] Y. S. W. Manuhara, A. N. Kristanti, E. S. W. Utami, and A.Yachya, “Effect of Aeration and Inoculum Density on Biomass and Saponin Content of Talinum Paniculatum Gaertn. Hairy Roots in Balloon-Type Bubble Bioreactor,” J. of Pharm. and Biom. Sci., vol. 2, no. 4, pp. 47-52, 2012.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.6552

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ