Chia sẻ bài báo qua Email NGHIÊN CỨU BẢO QUẢN TINH CÁ CHÉP (Cyprinus carpio) NHẬP NỘI TRONG NITƠ LỎNG
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 14/12/22 Ngày hoàn thiện: 16/05/23 Ngày đăng: 16/05/23Các tác giả
1. Kim Thị Thoa
, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I2. Trần Thị Mai Hương, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
3. Phạm Hồng Nhật, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
4. Lê Văn Khôi, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
5. Mai Văn Tài, Viện nghiên cứu Nuôi trồng thủy sản I
Tóm tắt
Cá chép là một trong những loài cá nuôi nước ngọt quan trọng trên thế giới và ở Việt Nam. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm xác định dung dịch bảo quản, tỷ lệ pha loãng và phương pháp làm lạnh phù hợp nhằm xây dựng quy trình kỹ thuật bảo quản lạnh sâu tinh trùng cá chép nhập nội (dòng Szarvas P3 và Tata) từ Hungary. Nghiên cứu sử dụng các loại dung dịch bảo quản khác nhau là dung dịch Kurokura 2 và dung dịch Grayling (có glucose) ở 2 tỷ lệ pha loãng 1:3 và 1:8; 2 phương pháp làm lạnh là sử dụng máy làm lạnh có cài đặt chương trình và làm lạnh trực tiếp trên hơi nitơ lỏng. Kết quả thí nghiệm cho thấy, sử dụng dung dịch bảo quản Kurokura 2, tỷ lệ pha loãng tinh: dung dịch bảo quản là 1: 8, chất chống đông Methanol 10% và phương pháp làm lạnh chạy chương trình (Ram 1: Hạ từ 4oC xuống - 4oC, tốc độ hạ nhiệt 4oC/phút. Ram 2: Hạ từ - 4oC xuống - 80oC, tốc độ hạ nhiệt 11oC/phút, sau đó mẫu tinh nhanh chóng được chuyển vào lưu giữ trong bình nitơ lỏng) cho hoạt lực tinh sau bảo quản cao nhất lần lượt đạt 80,8% và 78,3% ở cá chép Szarvas P3 và Tata so với đối chứng sử dụng tinh tươi 85,8% và 85,4% 1 tháng sau bảo quản (p<0,05).
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] N. K. Agarwal, “Cryopreservation of Fish Semen,” Himal. Aquat. Biodivers. Conserv. New Tools Biotechnol., 2011, pp. 104-127.
[2] T. R. Tiersch, H. Yang, J. A. Jenkins, and Q. Dong, “Sperm cryopreservation in fish and shellfish,” Spermatology, vol. 65, pp. 493-508, 2007.
[3] I. Magyary, B. Urbányi, and L. Horváth, “Cryopreservation of common carp (Cyprinus carpio L.) sperm II. Optimal conditions for fertilization,” Journal of Applied Ichthyology, vol. 12, no. 2. pp. 117-119, 1996.
[4] S. Martínez-Páramo et al., “Cryobanking of aquatic species HHS Public Access,” Aquaculture, vol. 472. pp. 156-177, 2017.
[5] T. T. Kim, T. M. Tran, Q. H. Le, H. N. Pham, V. D. Nguyen, D. N. Ngo and V. M. Nguyen, “Applied Nito-method techonology for cryobanking of aquatic species in Vietnam (in Vietnamese). Final report, Research Institute for Aquaculture No.1, 2010.
[6] T. T. Kim, H. N. Pham, H. D. Nguyen, T. B. N. Tran, N. S. Hoang, V. D. Nguyen, V. T. Khuong, Q. T. Trinh, A. T. Le, “Cryopressevation of some important aquatic species in Vietnam (in Vietnamese), Final report, Research Institute for Aquaculture No.1, 2014.
[7] H. N. Pham, T. T. Kim, V. D. Nguyen, T. T. T. Nguyen and H. D. Nguyen, “Sperm cryopressevation of aquatic animals in Vietnam (in Vietnamese), Science technology in Aquaculture, 2016, pp. 1–10.
[8] Á. Horváth, E. Miskolczi, and B. Urbányi, “Cryopreservation of common carp sperm,” Aquatic Living Resources, vol. 16, no. 5. pp. 457–460, 2003.
[9] Y. Bozkurt, İ. Yavas, and F. Karaca, “Cryopreservation of Brown Trout (Salmo trutta macrostigma) and Ornamental Koi Carp (Cyprinus carpio) Sperm,” in Current Frontiers in Cryopreservation, 2012, pp. 293-304.
[10] M. M. Hassan, M. Nahiduzzaman, S. N. Al Mamun, M. A. Taher, and M. A. R. Hossain, “Fertilization by refrigerator stored sperm of the Indian major carp, Labeo calbasu (Hamilton, 1822),” Aquac. Res., vol. 45, pp. 150-158, 2014.
[11] E. Akçay, Y. Bozkurt, S. Seçer, and N. Tekin, “Cryopreservation of Mirror Carp Semen,” Turkish J. Vet. Anim. Sci., vol. 28, pp. 837-843, 2004.
[12] H. Kurokura, R. Hirano, M. Tomita, and M. Iwahashf, “Cryopreservation of Carp Sperm,” Aquaculture, vol. 37, pp. 267-273, 1984.
[13] E. Lubzens et al., “Carp (Cyprinus carpio L.) spermatozoa cryobanks - Strategies in research and application,” Aquaculture, vol. 155, no. 1-4, pp. 13-30, 1997.
[14] S. Bibi et al., “Identification of suitable extender and cryoprotectant for cryopreservation of Labeo rohita milt,” Aquac. Res., vol. 53, no. 17, pp. 5857-5864, 2022.
[15] M. Sultana, M. Nahiduzzaman, M. M. Hassan, M. U. H. Khanam, and M. A. R. Hossain, “Fertility of cryopreserved common carp (Cyprinus carpio) spermatozoa,” Rajshahi Univ. Zool. Soc., vol. 28, pp. 51-55, 2010.
[16] F. Lahnsteiner, B. Berger, A. Horvath, B. Urbanyi, and T. Weismann, “Cryopreservation of Spermatozoa Ln Cyprinid Fishes,” Theriogenology, vol. 54, pp. 1477-1498, 2000.
[17] G. Bernáth et al., “Improvement of Common Carp (Cyprinus Carpio) Sperm Cryopreservation Using a Programable Freezer,” Gen. Comp. Endocrinol., vol. 237, pp. 78-88, 2016.
[18] S. S. du Plessis, A. Agarwal, G. Mohanty, and M. van der Linde, “Oxidative phosphorylation versus glycolysis: what fuel do spermatozoa use?,” Asian J. Androl., vol. 17, pp. 230-235, 2015.
[19] R. I. Arifiantini, T. L. Y. B. Purwantara, and D. Sajuthi, “Effect of Different Cryoprotective Agents on Skim Milk and Dimitropoulus Extender for Stallion Semen Cryopreservation,” J. Indones. Trop. Anim. Agric., vol. 35, pp. 68-74, 2010.
[20] V. T. Do, “Research on sperm characters and cypropreservation of goat in Vietnam (in Vietnamese),” PhD. Thesis, Institute of Biotechnology, Hanoi, 153 p., 2000.
[21] H. Irawan, V. Vuthiphandchai, and S. Nimrat, “The effect of extenders, cryoprotectants and cryopreservation methods on common carp (Cyprinus carpio) sperm,” Animal Reproduction Science, vol. 122, no. 3-4, pp. 236-243, 2010.
DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.7095
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu