TỐI ƯU HÓA QUY TRÌNH CHIẾT XUẤT POLYPHENOL, FLAVONOID VÀ ĐÁNH GIÁ HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA CỦA LÁ DÂU TẰM THU HÁI  TẠI THỪA THIÊN HUẾ

Đoàn Thị Ái Nghĩa; Lê Trọng Nhân; Đặng Thị Quỳnh Hoa; Trần Xuân Phú; Phạm Thị Hiền Thư

doi:10.34238/tnu-jst.8954

TỐI ƯU HÓA QUY TRÌNH CHIẾT XUẤT POLYPHENOL, FLAVONOID VÀ ĐÁNH GIÁ HOẠT TÍNH CHỐNG OXY HÓA CỦA LÁ DÂU TẰM THU HÁI TẠI THỪA THIÊN HUẾ

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 10/10/23 Ngày hoàn thiện: 05/03/24 Ngày đăng: 11/03/24

Các tác giả

1. Đoàn Thị Ái Nghĩa , Trường Đại học Y Dược - ĐH Huế
2. Lê Trọng Nhân, Trường Đại học Y Dược - ĐH Huế
3. Đặng Thị Quỳnh Hoa, Trường Đại học Y Dược - ĐH Huế
4. Trần Xuân Phú, Trường Đại học Y Dược - ĐH Huế
5. Phạm Thị Hiền Thư, Trường Đại học Y Dược - ĐH Huế

Tóm tắt

Lá cây dâu tằm (Morus alba L.) có chứa nhiều hợp chất có hoạt tính sinh học như phenolic, alkaloid, polysacarit, vitamin. Dịch chiết giàu polyphenol và flavonoid có ý nghĩa quan trọng trong việc tạo ra sản phẩm giàu hoạt tính, đặc biệt là hoạt tính chống oxy hóa. Mục tiêu của nghiên cứu nhằm chiết xuất dịch chiết giàu polyphenol, flavonoid và đánh giá hoạt tính chống oxy hóa của dịch chiết từ lá cây dâu tằm thu hái tại Thừa Thiên Huế. Phương pháp đáp ứng bề mặt (RSM) được áp dụng để kiểm tra ảnh hưởng của các yếu tố chiết xuất đến hàm lượng polyphenol (TPC) và flavonoid (TFC). Đánh giá hoạt tính chống oxy hóa in vitro bằng phương pháp bắt gốc tự do DPPH. Điều kiện tối ưu chiết xuất lá dâu tằm: nồng độ dung môi 80%; tỷ lệ dung môi/dược liệu 34 (mL/g); nhiệt độ chiết xuất 49oC; thời gian chiết xuất 49 phút. Tại điều kiện chiết tối ưu, hàm lượng TPC và TFC thu được lần lượt là 170,06 ± 1,97 (mg Gallic Acid/g chất khô) và 26,11 ± 0,49 (mg Rutin/g chất khô). Khả năng chống oxy hóa của dịch chiết ở điều kiện tối ưu có giá trị IC50 = 42,07 μg/mL.

Từ khóa

Lá dâu tằm; Tối ưu hóa; Polyphenol; Flavonoid; Hoạt tính chống oxy hóa

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] L. T. Do, Vietnamese medicinal plants and herbs. Medical Publishing, 2004, pp. 720-723.

[2] Z. Wang, C. Tang, F. Dai, G. Xiao, and G. Luo, “HPLC determination of phenolic compounds in different solvent extracts of mulberry leaves and antioxidant capacity of extracts,” Int. J. Food Prop., vol. 24, pp. 544-552, Mar. 2021, doi: 10.1080/10942912.2021.1904980.

[3] M. T. Truong, L. T. Nguyen, L. A. Pham, and T. K. Hoang, “Total polyphenol content, free radical scavenging, alpha-glucosidase inhibition capacity, the efficacy in controlling blood glucose of diabetic rats of the mixture VOS extracted from the leaves of Cleistocalyx operculatus, Psidium guajava and Nelumbo nucifera,” Journal of Medicine and Pharmacy, vol. 3, no. 2, p. 50, April 2013.

[4] D. X. Nguyen and T. A. Nguyen, “Screening of plants with antixidant activity and application in fishery processing,” Cantho Journal of medicine and Pharmacy, vol. 28, pp. 59-68, 2013.

[5] J. Milán-Carrillo, A. Montoya-Rodríguez, R. Gutiérrez-Dorado, X. Perales-Sánchez, and C. Reyes-Moreno, “Optimization of Extrusion Process for Producing High Antioxidant Instant Amaranth Flour Using Response Surface Methodology,” Appl. Math., vol. 03, no. 10, pp. 1516-1525, 2012, doi: 10.4236/am.2012.330211.

[6] M. Radojković, Z. Zekovic, S. Jokic, and S. Vidovic, “Determination of optimal extraction parameters of mulberry leaves using Response Surface Methodology (RSM),” Romanian Biotechnol. Lett., vol. 17, pp. 7197-7310, Jan. 2012.

[7] Q. Yuan et al., “Extraction optimization, characterization and antioxidant activity in vitro of polysaccharides from mulberry (Morus alba L.) leaves,” Carbohydr. Polym., vol. 128, pp. 52-62, Sep. 2015, doi: 10.1016/j.carbpol.2015.04.028.

[8] H. Cui et al., “Flavonoids from Morus alba L. Leaves: Optimization of Extraction by Response Surface Methodology and Comprehensive Evaluation of Their Antioxidant, Antimicrobial, and Inhibition of α-Amylase Activities through Analytical Hierarchy Process,” Molecules, vol. 24, p. 2398, Jun. 2019, doi: 10.3390/molecules24132398.

[9] T. T. Vo, T. K. Phan, T. C. T. Nguyen, T. D. Nguyen, P. H. Le, and T. T. T. Truong, “Optimization of enzyme pectinase rate and time extract of mulberry (Morus alba L. Morus acidosa),” Vietnam Journal of Science and Technology, no. 2, pp. 43-49, Mar. 2023

[10] M. A. Bezerra, R. E. Santelli, E. P. Oliveira, L. S. Villar, and L. A. Escaleira, “Response surface methodology (RSM) as a tool for optimization in analytical chemistry,” Talanta, vol. 76, no. 5, pp. 965-977, Sep. 2008, doi: 10.1016/j.talanta.2008.05.019.

[11] H. Cui et al., “Flavonoids from Morus alba L. Leaves: Optimization of Extraction by Response Surface Methodology and Comprehensive Evaluation of Their Antioxidant, Antimicrobial, and Inhibition of α-Amylase Activities through Analytical Hierarchy Process,” Molecules, vol. 24, no. 13, Art. no. 2389, Jan. 2019, doi: 10.3390/molecules24132398.

[12] V. L. Singleton, R. Orthofer, and R. M. Lamuela-Raventós, “Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-ciocalteu reagent,” Methods Enzymol., Jan. 1999, doi: 10.1016/s0076-6879(99)99017-1.

[13] J. Zhishen, T. Mengcheng, and W. Jianming, “The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals,” Food Chem., Mar. 1999, doi: 10.1016/S0308-8146(98)00102-2.

[14] O. T. Asekun, S. O. Okoh, O. B. Familoni, and A. J. Afolayan, “Chemical Profiles and Antioxidant Activity of Essential Oils Extracted from the Leaf and Stem of Parkia biglobosa (Jacq) Benth,” Res. J. Med. Plants, vol. 7, no. 2, pp. 82-91, Jul. 2013, doi: 10.17311/rjmp.2013.82.91.

[15] W. Aboshora, “Effect of Extraction Method and Solvent Power on Polyphenol and Flavonoid Levels in Hyphaene Thebaica L Mart (Arecaceae) (Doum) Fruit, and its Antioxidant and Antibacterial Activities,” Trop. J. Pharm. Res., vol. 13, no. 12, pp. 2057-2063, Dec. 2014.

[16] P. Q. D. Nguyen, L. T. K. Nguyen, N. A. T. Doan, D. V. Tong, and T. T. T. Nguyen, “Chemical composition and antioxidant activity of extracts from the aerial parts of Glycosmis parviflora (Sims) Little”, TNU J. Sci. Technol., vol. 226, no. 14, pp. 230-237, Oct. 2021, doi: 10.34238/tnu-jst.4615.

[17] D.-S. Kim, Y. Kang, W. Jin, Y.-Y. Sung, G. Choi, and H. Kim, “Antioxidant activities and polyphenol content of Morus alba leaf extracts collected from varying regions,” Biomed. Rep., vol. 2, pp. 675-680, Sep. 2014, doi: 10.3892/br.2014.294.

[18] I. Thabti, N. Marzougui, W. Elfalleh, and A. Ferchichi, “Antioxidant composition and antioxidant activity of white (Morus alba L.), black (Morus nigra L.) and red (Morus rubra L.) mulberry leaves,” Acta Bot. Gallica Bull. Société Bot. Fr., vol. 158, pp. 205-214, Jun. 2011, doi: 10.1080/12538078.2011.10516267.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.8954

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ