ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG ỨC CHẾ SỰ HÌNH THÀNH  TINH THỂ CALCIUM OXALATE TRONG ĐIỀU KIỆN INVITRO  CỦA CAO CHIẾT CÂY TRÁI NỔ Ruellia tuberosa L.

Lê Trung Sơn; Nguyễn Minh Chơn

doi:10.34238/tnu-jst.9136

ĐÁNH GIÁ KHẢ NĂNG ỨC CHẾ SỰ HÌNH THÀNH TINH THỂ CALCIUM OXALATE TRONG ĐIỀU KIỆN INVITRO CỦA CAO CHIẾT CÂY TRÁI NỔ Ruellia tuberosa L.

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 02/11/23 Ngày hoàn thiện: 05/03/24 Ngày đăng: 11/03/24

Các tác giả

1. Lê Trung Sơn , Viện Công nghệ Thực phẩm và Sinh học – Đại học Cần Thơ
2. Nguyễn Minh Chơn, Viện Công nghệ Thực phẩm và Sinh học – Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Nghiên cứu này đánh giá khả năng ức chế và hòa tan tinh thể calcium oxalate gây sỏi thận của các chiết xuất từ cây Ruellia tuberosa L. Các bộ phận của cây (lá, thân và rễ) được chiết xuất bằng phương pháp ngâm trong ethanol 70%. Cao chiết từ rễ cho hiệu suất cao nhất 30,58% và có chứa các hợp chất flavonoid, terpenoid, tanin. Khả năng ức chế sự hình thành mầm tinh thể được đánh giá bằng phương pháp đo độ hấp thụ ở 620 nm. Cao chiết lá cho hoạt tính ức chế mạnh nhất ở giai đoạn hình thành mầm tinh thể với IC50 5,13 mg/mL. Đánh giá khả năng ức chế sự phát triển tinh thể được thực hiện và theo dõi bằng phương pháp đo độ hấp thụ ở bước sóng 214 nm trong 10 phút. Chiết xuất lá cũng cho kết quả ức chế phát triển tốt nhất với IC50 7,15 mg/mL. Khả năng ức chế sự kết tinh của tinh thể được thực hiện bằng phương pháp đo độ hấp thụ ở 620 nm trong 6 giờ. Cao chiết thân cho hoạt tính ức chế cao nhất với IC50 7,1 mg/mL. Khả năng hòa tan tinh thể được đánh giá bằng phương pháp chuẩn độ, cao chiết thân cho hiệu quả hòa tan cao 51,48% với hàm lượng 20 mg/mL. Kết quả cho thấy các chiết xuất R. tuberosa có khả năng ức chế quá trình hình thành sỏi thận, với chiết xuất lá ức chế hiệu quả giai đoạn đầu, chiết xuất thân ức chế giai đoạn sau và hòa tan tinh thể. Đây có thể là liệu pháp tự nhiên cho bệnh sỏi thận.

Từ khóa

Calcium oxalate; Ức chế sỏi; Tan sỏi; Sỏi thận; Ruellia tuberosa

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] P. Singh, P. C. Harris, D. J. Sas, and J. C. Lieske, "The genetics of kidney stone disease and nephrocalcinosis," Nature Reviews Nephrology, vol. 18, no. 4, pp. 224-240, 2022.

[2] E. G. Onal and H. Tekgul, "Assessing kidney stone composition using smartphone microscopy and deep neural networks," BJUI Compass, vol. 3, no. 4, pp. 310-315, 2022.

[3] R. Nirmaladevi, S. Kalpana, D. Kavitha, and P. R. Padma, "Evaluation of antilithiatic potential of Hibiscus rosa-sinensis Linn, in vitro," Journal of Pharmacy Research, vol. 5, no. 8, pp. 4353-4356, 2012.

[4] S. Kalpana, R. Nirmaladevi, T. S. Rai, and P. Karthika, "Inhibition of calcium oxalate crystallization in vitro by extract of banana cultivar monthan," Int J Pharm Pharmace Sci, vol. 4, pp. 649-653, 2013.

[5] M. Oner, P. G. Koutsoukos, and W. G. Robertson, "Chapter 24 - Kidney stone formation—Thermodynamic, kinetic, and clinical aspects," in Water-Formed Deposits, Z. Amjad and K. D. Demadis, Eds.: Elsevier, 2022, pp. 511-541.

[6] S. Saha and R. J. Verma, "Inhibition of calcium oxalate crystallisation in vitro by an extract of Bergenia ciliata," Arab J Urol, vol. 11, no. 2, pp. 187-92, 2013.

[7] J. A. McAteer and A. P. Evan, "The acute and long-term adverse effects of shock wave lithotripsy," Semin Nephrol, vol. 28, no. 2, pp. 200-213, 2008.

[8] P. H. Ho, "Ruellia tuberosa L.," in An Illustrated Flora of Vietnam, vol. 3: Tre Publishing House, 2003, p. 53.

[9] D. L. Chothani and S. H. Mishra, "In vitro anti-oxidant activity of Ruellia tuberosa root extracts," Free Radicals and Antioxidants, vol. 2, no. 4, pp. 38-44, 2012.

[10] M. N. Samy, S. Sugimoto, K. Matsunami, H. Otsuka, and M. S. Kamel, "Chemical Constituents and Biological Activities of Genus Ruellia," International Journal of Pharmaceutical Sciences And Research, vol. 2, no. 6, pp. 270-279, 2015.

[11] T. H. P. Nguyen, T. K. Do, T. T. N. Nguyen, T. D. Phan, and T. H. Phung, "Acute toxicity, antibacterial and antioxidant abilities of Elephantopus mollis H.B.K. and Elephantopus scaber L," CTU Journal of Innovation and Sustainable Development, vol. 12, no. 2, pp. 9-14, 2020.

[12] T. X. T. Dai, H. B. N. Lam, and T. T. A. Vo, "Studies on antibacterial and antioxidant activities of methanolic extract from Streptocaulon juventas Merr," Can Tho University Journal of Science, vol. 40, pp. 1-6, 2015.

[13] D. K. Jha, L. Panda, P. Lavanya, S. Ramaiah, and A. Anbarasu, "Detection and confirmation of alkaloids in leaves of Justicia adhatoda and bioinformatics approach to elicit its anti-tuberculosis activity," Appl Biochem Biotechnol, vol. 168, no. 5, pp. 980-90, 2012.

[14] L. Rajanna, R. Raju, and G. S. S. Sharma, "Preliminary Phytochemical Analysis and Haemolytic Activity Assay of Tuber Extract of Ruellia tuberosa L," Research & Reviews: A Journal of Life Sciences, vol. 7, no. 3, pp. 23-27, 2017.

[15] A. Aggarwal, S. Tandon, S. K. Singla, and C. Tandon, "Diminution of oxalate induced renal tubular epithelial cell injury and inhibition of calcium oxalate crystallization in vitro by aqueous extract of Tribulus terrestris," Int Braz J Urol, vol. 36, no. 4, pp. 480-488, 2010.

[16] R. S. Phatak and A. S. Hendre, "In-vitro antiurolithiatic activity of Kalanchoe pinnata extract," International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research, vol. 7, no. 2, pp. 275-279, 2015.

[17] A. Chaudhary, S. K. Singla, and C. Tandon, "In vitro Evaluation of Terminalia arjuna on Calcium Phosphate and Calcium Oxalate Crystallization," Indian J Pharm Sci, vol. 72, no. 3, pp. 340-345, 2010.

[18] L. Saso, G. Valentini, M. G. Leone, E. Grippa, and B. Silvestrini, "Development of an in vitro assay for the screening of substances capable of dissolving calcium oxalate crystals," Urol Int, vol. 61, no. 4, pp. 210-214, 1998.

[19] U. Atodariya, R. Barad, S. Upadhyay, and U. Upadhyay, "Anti-urolithiatic activity of Dolichos biflorus seeds," Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, vol. 2, no. 2, pp. 37-52, 2013.

[20] M. Zarrow, Experimental Endocrinology: A Sourcebook of Basic Techniques. Elsevier, 2012, pp. 387-389.

[21] H. Bandar, A. Hijazi, H. Rammal, A. Hachem, Z. Saad, and B. Badran, "Techniques for the extraction of bioactive compounds from Lebanese Urtica Dioica," American Journal of Phytomedicine and Clinical Therapeutics, vol. 1, no. 6, pp. 507-513, 2013.

[22] A. Safitri, A. Roosdiana, I. Rosyada, C. A. Evindasari, Z. Muzayyana, and R. Rachmawanti, "Phytochemicals screening and anti-oxidant activity of hydroethanolic extracts of Ruellia tuberosa L.," IOP Conference Series: Materials Science and Engineering, vol. 509, no. 1, 2019, Art. no. 012017.

[23] R. R. Gupta et al., "Prevalence and risk factors for kidney stones in fibrodysplasia ossificans progressiva," Bone, vol. 109, pp. 120-123, 2018.

[24] M. Gupta, S. Bhayana, and S. K. Sikka, "Role of urinary inhibitors and promoters in calcium oxalate crystallisation," Int J Research in Pharmacy and Chemistry, vol. 1, pp. 793-798, 2011.

[25] M. R. de Cogain et al., "Aqueous extract of Costus arabicus inhibits calcium oxalate crystal growth and adhesion to renal epithelial cells," Urolithiasis, vol. 43, no. 2, pp. 119-24, 2015.

[26] N. Cheraft-Bahloul et al., "Protective Effects of Pistacia lentiscus L. fruit extract against calcium oxalate monohydrate induced proximal tubular injury," J Ethnopharmacol, vol. 209, pp. 248-254, 2017.

[27] F. Atmani and S. R. Khan, "Effects of an extract from Herniaria hirsuta on calcium oxalate crystallization in vitro," BJU Int, vol. 85, no. 6, pp. 621-625, 2000.

[28] M. M. Malini, M. Lenin, and P. Varalakshmi, "Protective effect of triterpenes on calcium oxalate crystal-induced peroxidative changes in experimental urolithiasis," Pharmacol Res, vol. 41, no. 4, pp. 413-418, 2000.

"Times New Roman",serif;mso-fareast-font-family:Calibri;mso-fareast-theme-font:

minor-latin;mso-bidi-theme-font:minor-bidi;mso-ansi-language:PT-BR;mso-fareast-language:

EN-US;mso-bidi-language:AR-SA'>

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.9136

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ