HIỆU QUẢ CỦA IODINE, BỘT TỎI, VITAMIN C TRONG PHÒNG TRỊ BỆNH STREPTOCOCCOSIS Ở CÁ RÔ PHI QUY MÔ PHÒNG THÍ NGHIỆM

Phạm Thị Thanh; Trương Thị Mỹ Hạnh; Võ Văn Nha

doi:10.34238/tnu-jst.5987

HIỆU QUẢ CỦA IODINE, BỘT TỎI, VITAMIN C TRONG PHÒNG TRỊ BỆNH STREPTOCOCCOSIS Ở CÁ RÔ PHI QUY MÔ PHÒNG THÍ NGHIỆM

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 15/05/22 Ngày hoàn thiện: 24/06/22 Ngày đăng: 24/06/22

Các tác giả

1. Phạm Thị Thanh , Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
2. Trương Thị Mỹ Hạnh, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 1
3. Võ Văn Nha, Viện Nghiên cứu Nuôi trồng Thủy sản 3

Tóm tắt

Việc sử dụng thuốc và hóa chất để phòng trị bệnh cho cá rô phi đã nổi lên như mối quan tâm chính ở các vùng nuôi trồng thủy sản. Nghiên cứu này đã xác định tác dụng của Iodine, bột tỏi, Vitamin C trong việc ngăn ngừa và điều trị bệnh của cá rô phi (Oreochromis sp.) liên quan đến S. agalactiae. Dữ liệu liên quan đến Iodine, bột tỏi, Vitamin C được thu thập từ 30 cửa hàng thuốc trong nghiên cứu trước. S. agalactiae được nuôi cấy lắc trong môi trường nutrient broth ở nhiệt độ 30^oC trong 18h, khi mật độ vi khuẩn đạt 10⁷ cfu/mL tiến hành dùng để gây nhiễm vào cá. Kết quả nghiên cứu cho thấy, bột tỏi (0,1 g bột tỏi/kg cá) và Vitamin C (5 g/kg cá) có hiệu quả trị bệnh Streptococcosis ở cá rô phi với nhịp cho ăn 3 và 5 ngày, tỷ lệ sống của cá rô phi gây nhiễm S. agalactiae lần lượt tương ứng là 66,7 - 75,6% và 64,6 - 71,1% so với đối chứng dương (19,9%). Bột tỏi (0,1 g bột tỏi/kg cá) và Iodine (0,05 ml/100 lít nước) có hiệu quả trị bệnh Streptococcosis ở cá rô phi với nhịp cho ăn (bột tỏi) và đưa vào nước (Iodine) nhịp 3 và 5 ngày, tỷ lệ sống của cá rô phi gây nhiễm S. agalactiae lần lượt tương ứng là 64,4 và 71,1% so với đối chứng dương (19,9%). Trong khi đó, Vitamin C (5 g/kg cá) và Iodine (0,05 mL/100 lít nước) không có hiệu quả phòng bệnh Streptococcosis ở cá rô phi.

Từ khóa

Tilapia; Iodine; Garlic powder; Vitamin C; S. agalactiae

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] H. D. Nguyen, “The results of aquaculture in Hai Duong province in 2021 and implementation plan in 2022,” (in Vietnamese), Annual report, Department of Fisheries - Department of Agriculture and Rural Development, Hai Duong province, pp. 1-6, January 2022.

[2] D. M. Fracalossi, M. E. Allen, L. K. Yuyama, and O. T. Oftedal, “Ascorbic acid biosynthesis in Amazonian fishes,” Aquaculture, vol. 192, no. 2-4, pp. 321-332, 2001, doi: 10.1016/S0044-8486(00)00455-5.

[3] G. Merchie, P. Lavens, J. Radull, H. Nelis, A. De Leenheer, and P. Sorgeloos, “Evaluation of vitamin C-enriched Artemia nauplii for larvae of the giant freshwater prawn,” Aquac. Int., vol. 3, no. 4, pp. 355-363, 1995, doi: 10.1007/BF00121623.

[4] Q. Ai et al., “Effects of dietary vitamin C on growth and immune response of Japanese seabass, Lateolabrax japonicus,” Aquaculture, vol. 242, no. 1-4, pp. 489-500, 2004, doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.08.016.

[5] J.-Y. Lee and Y. Gao, “Review of the Application of Garlic, Allium sativum, in Aquaculture,” J. World Aquac. Soc., vol. 43, Aug. 2012, doi: 10.1111/j.1749-7345.2012.00581.x.

[6] T. H. Nguyen, T. V. Phan, T. Y. Pham, T. M. Le, and T. M. H. Truong “Antibacterial ability and prevention of acute hepatopancreatic necrosis disease in white leg shrimp (Penaeus vannamei) of fermented garlic (Allum sativum),” Vietnam Sci. Technol. Mag., vol. 63, no. 2, pp. 49-54, 2021.

[7] Y. Feng et al., “Effects of immune stress on performance parameters, intestinal enzyme activity and mRNA expression of intestinal transporters in broiler chickens,” Asian-Australasian J. Anim. Sci., vol. 25, no. 5, pp. 701-707, May 2012, doi: 10.5713/ajas.2011.11377.

[8] A. Mustafa, S. Hayat, and P. Quarrar, “Stress Modulated Physiological Responses in Nile Tilapia, Oreochromisniloticus, Treated with Non-Ascorbic Acid Supplemented Feed,” Adv. Zool. Bot., vol. 1, pp. 39-45, Sep. 2013, doi: 10.13189/azb.2013.010204.

[9] T. T. Mai and H. B. T. Bui. “Effect of adding garlic (Allium sativum) to feed on some immune parameters and antibacterial ability of red tilapia (Oreochromis sp.),” (in Vietnamese), Can Tho University - Journal of Science., vol. 54, no. 2, Special issue: Fisheries, pp. 168-176, 2018.

[10] M. A. O. Dawood, S. Koshio, and M. Á. Esteban, “Beneficial roles of feed additives as immunostimulants in aquaculture: a review,” Rev. Aquac., vol. 10, no. 4, pp. 950-974, 2018, doi: 10.1111/raq.12209.

[11] X. P. Liang, Y. Li, Y. M. Hou, H. Qiu, and Q. C. Zhou, “Effect of dietary vitamin C on the growth performance, antioxidant ability and innate immunity of juvenile yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco Richardson),” Aquaculture Research, vol. 48, no. 1. pp. 149-160, doi: 10.1111/are.12869.

[12] Q. T. Nguyen, M. Masashi, and M. P. Tran, “Disease situation and use of drugs and chemicals in snakehead fish (Channa striata) farming model in An Giang and Tra Vinh,” (in Vietnamese), Can Tho University - Journal of Science, vol. 56, Special issue: Fisheries, pp. 179-184, 2020.

[13] N. B. Buller, "Bacteria from Fish and Other Aquatic Animals: A Practical Identification Manual," Aquaculture, vol. 240, pp. 626-627, Oct. 2004, doi: 10.1016/j.aquaculture.2004.07.005.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.5987

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ