VI NHÂN GIỐNG LAN ĐAI CHÂU (RHYNCHOSTYLIS GIGANTEA L.) THÔNG QUA GIAI ĐOẠN PROTOCORM
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 10/05/21                Ngày hoàn thiện: 12/06/21                Ngày đăng: 21/06/21Tóm tắt
Lan Đai châu là loài lan bản địa quý của Việt Nam có nguy cơ tuyệt chủng do mất môi trường sống thích hợp và sự khai thác quá mức của con người. Quy trình vi nhân thông qua phát sinh protocorm từ mô sẹo đã được xây dựng thành công để bảo tồn và phát triển nguồn gen loài lan này. Môi trường nuôi cấy bổ sung các chất điều hòa sinh trưởng BAP, NAA và dịch chiết khoai tây, chuối tiêu đến sự tạo protocorm, nhân sinh khối và tái sinh chồi đã được khảo sát. Môi trường MS bổ sung BAP 2,0 mg/l phù hợp cho tạo protocorm từ mô sẹo, tỉ lệ đạt 100%. Môi trường nhân protocorm phù hợp nhất là môi trường VW bổ sung BAP 1,0 mg/l, NAA 0,5 mg/l, nước dừa 100 ml/l, khoai tây 40 g/l, chuối tiêu 30 g/l cho sinh khối protocorm tăng 4,66 lần so với ban đầu. Môi trường VW bổ sung nước dừa 100 ml/l, khoai tây 40 g/l, chuối tiêu 30 g/l cho hiệu quả nhân sinh khối PLBs tăng 17,9 lần so với ban đầu và tái sinh chồi tốt nhất. Môi trường VW bổ sung NAA 1,0 mg/l, chuối tiêu 50 g/l phù hợp nhất cho ra rễ của chồi với số rễ đạt 4,0 rễ/chồi, chiều dài rễ đạt 2,33 cm. Quy trình vi nhân giống này có thể ứng dụng để sản xuất cây giống Đai châu với quy mô lớn.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] T. D. Dinh, V. D. Dang, and D. Q. Tran, "Effect of The Ecological Regions and Gibberellic Acid (GA3) Application on Growth and Flower Development of Rhynchostylis gigantea (Lindley) Rindley," (In Viettnamese), J. Sci. & Devel., vol. 12, no. 7, pp. 1049-1057, 2014.
[2] V. L. Bui, N. T. H. Phuong, L. T. A. Hong, and K. T. V. Tran, "High frequency shoot regeneration from Rhynchostylis gigantea (orchidaceae) using thin cell layers," Plant Growth Regulation, vol. 28, pp. 179–185, 1999.
[3] P. Pathak, S. Verma, A. Prakash, and K. C. Mahant, "Regeneration competence of an ornamentally important epiphytic orchird, Rhynchostylis gigantea (LINDL.) RIDL. Through leaf segments: A study in vitro.," J. Orchid Soc. India, vol. 31, pp. 97-101, 2017.
[4] J. T. Chen and W. C. Chang, "Efficient plant regeneration through somatic embryogenesis from callus cultures of Oncidium (Orchidaceae)," Plant Sci, vol. 160, pp. 87-93, 2000.
[5] Y. Ishii, T. Takamura, M. Goi, and M. Tanaka, "Callus in duction and somatic embryogenesis of Phalaenopsis," Plant Cell Rep, vol. 17, pp. 446-450, 1998.
[6] K. Tokuhara and M. Mii, "Induction of embryogenic callus and cell suspension culture from shoot tips excised from flower stalk buds of Phalaenopsis (Orchidaceae)," In Vitro Cell Devl Biol, vol. 37, pp. 457-461, 2001.
[7] J. T. Chen and W. C. Chang, "Plant regeneration from callus culture of Cymbidium ensifolium var. misericors," Plant Cell Rep, vol. 17, pp. 251-255, 1998.
[8] Z. Y. Li and L. Xu, "In vitro propagation of white-flower mutant of Rhynchostylis gigantea (Lindl.) Ridl. through immature seed-derived protocorm-like bodies," J Hortic For, vol. 1, no. 6, pp. 093-097, 2009.
[9] R. Suphat, T. Sompong, K. Nattaporn, and K. Soisiri, "Micropropagation of Chang Daeng (Rhynchostylis gigantea var. Sagarik) by embryogenic callus," Songklanakarin J. Sci. Technol., vol. 33, no. 6, pp. 659-663, 2011.
[10] S. M. S. Islam and B. Bhattacharjee, "Plant regeneration through somatic embryogenesis from leaf and root explants of Rhynchostylis retusa (L.) Blume," Appl Biol Res, vol. 17, no. 2, pp. 158-165, 2015.
[11] B. Bakul and S. M. I. Shahinul, "The effect of PGRs on in vitro development of protocorms, regeneration and mass multiplication derived from immature seeds of Rhynchostylis retusa (L.) Blume.," Global J. Biol. Biotech., vol. 4, no. 1, p. 121, 2015.
[12] T. T. H. Phan and V. D. Nguyen, "In vitro propagation of (Rhynchostylisgigantea L. ) orchid”," (In Vietnamses), VNU journal of science: Natural science and technology, vol. 33, no. 1, pp. 48-57, 2017.
[13] V. M. Tran, "Micropagation of Rhynchostylis gigantea orchird by somatic embryogenic cultures," CBU International Conference Proceedings, Prague, Czech Republic, 2019, vol. 7, pp. 969-974.
[14] T. Murashige and F. Skoog, "A revised medium for rapid growth and bio-assays with tobacco tissue cultures," Physiol Plant, vol. 15, pp. 473-497, 1962.
[15] E. F. Vacin and E. W. Went, "Some pH changes in nutrient solutions," Bot Gaz, vol. 110, pp. 605-613, 1949.
[16] G. V. Parab and S. Krishnan, "Rapid in vitro mass multiplication of orchids Aerides maculosa Lindl. and Rhynchostylis retusa (L.) Bl. from immature seeds," Indian Journal of Biotechnology, vol. 11, pp. 288 -294, 2012.
[17] V. T. Bui and T. H. G. Nguyen, "Clonal propagation of Rhynchostylis retusa (L.) Blume from immature seeds by in vitro culture," (In Vietnamese), Vietnam Agricultural Science and Technology Journal, vol. 79, no. 6, pp. 25-29, 2017.
[18] T. T. Dang, N. B. H’Yon, T. T. H. Nguyen, V. K. Dinh, V. D. Nong, T. V. Tran, V. H. Quach, and K. C. Vu, "Micropropagation of Dendrobium heterocarpum Lindl.," (In Vietnamese), Journal of Biotechnology, vol. 16, pp. 127-135, 2018.x
DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.4467
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu