Chia sẻ bài báo qua Email PHÂN LẬP THỰC KHUẨN THỂ TỪ BÙN ĐÁY AO NUÔI TÔM CÓ KHẢ NĂNG ỨC CHẾ VI KHUẨN Salmonella enterica subsp enterica serovar Enteritidis ATCC 49223 VÀ Vibrio spp.
Thông tin bài báo
Ngày nhận bài: 04/10/23 Ngày hoàn thiện: 07/03/24 Ngày đăng: 12/03/24Các tác giả
1. Trương Thị Bích Vân
, Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm – Trường Đại học Cần Thơ2. Nguyễn Thị Loan Anh, Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm – Trường Đại học Cần Thơ
Tóm tắt
Bốn mươi chín dòng thực khuẩn thể (ɸ) được phân lập từ nước và bùn đáy ao tôm. Chín dòng vi khuẩn được chọn làm ký chủ để nhận diện thực khuẩn bằng phương pháp agar hai lớp. Thực khuẩn thể (ɸ) Pm5 và ɸPm12 là hai dòng thực khuẩn thể có phổ ký chủ rộng nhất với lần lượt là 9/9 và 8/9 dòng vi khuẩn. Thực khuẩn thể ɸVT232 và ɸ5A là hai chủng có khả năng ly giải đặc hiệu đối với vi khuẩn Salmonella-enteritidis và Salmonella-typhimurium. Tuy nhiên, TKT ɸ5A có khả năng ly giải với nhiều vật chủ bao gồm Vibrio và Escherichia-coli. TKT ɸVT232 hứa hẹn là liệu pháp thay thế kháng sinh trong việc kiểm soát các bệnh nhiễm trùng do vi khuẩn Salmonella gây ra do tính ổn định trong phạm vi pH từ 5-10 và nhiệt độ từ -20ºC đến 60ºC. Từ kết quả ban đầu cho thấy các dòng thực khuẩn thể mở ra hướng ứng dụng tiềm năng chống lại các nhiễm khuẩn do vi khuẩn Salmonella gây nên trong chăn nuôi và thủy sản.
Từ khóa
Toàn văn:
PDFTài liệu tham khảo
[1] S. Hinchliffe, A. Butcher, and M. M. Rahman, “The AMR problem: demanding economies, biological margins, and co-producing alternative strategies,” Palgrave Commun, vol. 4, no. 1, Art. no. 1, Nov. 2018, doi: 10.1057/s41599-018-0195-4.
[2] K. Thornber, D. Verner-Jeffreys, S. Hinchliffe, M. M. Rahman, D. Bass, and C. R. Tyler, “Evaluating antimicrobial resistance in the global shrimp industry,” Reviews in Aquaculture, vol. 12, no. 2, pp. 966-986, 2020, doi: 10.1111/raq.12367.
[3] R. C. Okocha, I. O. Olatoye, and O. B. Adedeji, “Food safety impacts of antimicrobial use and their residues in aquaculture,” Public Health Reviews, vol. 39, no. 1, p. 21, Aug. 2018, doi: 10.1186/s40985-018-0099-2.
[4] A. Patel et al., “Prevalence of antibiotic resistant Salmonella spp. strains in shrimp farm source waters of Nagapattinam region in South India,” Marine Pollution Bulletin, vol. 155, Jun. 2020, Art. no. 111171, doi: 10.1016/j.marpolbul.2020.111171.
[5] I. Frans, C. W. Michiels, P. Bossier, K. A. Willems, B. Lievens, and H. Rediers, “Vibrio anguillarum as a fish pathogen: virulence factors, diagnosis and prevention,” Journal of Fish Diseases, vol. 34, no. 9, pp. 643-661, 2011, doi: 10.1111/j.1365-2761.2011.01279x.
[6] L. Gao et al., “Isolation and Characterization of a Lytic Vibriophage OY1 and Its Biocontrol Effects Against Vibrio spp.,” Frontiers in Microbiology, vol. 13, 2022. [Online]. Available: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmicb.2022.830692. [Accessed Sep. 16, 2023].
[7] M. D’Accolti, I. Soffritti, S. Mazzacane, and E. Caselli, “Bacteriophages as a Potential 360-Degree Pathogen Control Strategy,” Microorganisms, vol. 9, no. 2, p. 261, Jan. 2021, doi: 10.3390/microorganisms9020261.
[8] T. Abuladze, M. Li, M. Y. Menetrez, T. Dean, A. Senecal, and A. Sulakvelidze, “Bacteriophages Reduce Experimental Contamination of Hard Surfaces, Tomato, Spinach, Broccoli, and Ground Beef by Escherichia coli O157:H7,” Applied and Environmental Microbiology, vol. 74, no. 20, pp. 6230–6238, Oct. 2008, doi: 10.1128/AEM.01465-08.
[9] T. T. Tran, B. V. T Truong, and N. T. Nguyen, “Ability to resolve Escherichia coli bacteria of bacteriophages isolated from chicken farms in some Mekong Delta provinces," Journal of Livestock Science and Technology, vol. 233, pp. 83-89, 2018.
[10] N. H. Pham-Khanh et al., “Isolation, Characterisation and Complete Genome Sequence of a Tequatrovirus Phage, Escherichia phage KIT03, Which Simultaneously Infects Escherichia coli O157:H7 and Salmonella enterica,” Curr Microbiol, vol. 76, no. 10, pp. 1130-1137, Oct. 2019, doi: 10.1007/s00284-019-01738-0.
[11] N. Matamp and S. G. Bhat, “Phage Endolysins as Potential Antimicrobials against Multidrug Resistant Vibrio alginolyticus and Vibrio parahaemolyticus: Current Status of Research and Challenges Ahead,” Microorganisms, vol. 7, no. 3, Art. no. 3, Mar. 2019, doi: 10.3390/microorganisms7030084.
[12] C. Nikapitiya, H. P. S. U. Chandrarathna, S. H. S. Dananjaya, M. De Zoysa, and J. Lee, “Isolation and characterization of phage (ETP-1) specific to multidrug resistant pathogenic Edwardsiella tarda and its in vivo biocontrol efficacy in zebrafish (Danio rerio),” Biologicals, vol. 63, pp. 14-23, Jan. 2020, doi: 10.1016/j.biologicals.2019.12.006.
[13] I. Karunasagar, M. M. Shivu, S. K. Girisha, G. Krohne, and I. Karunasagar, “Biocontrol of pathogens in shrimp hatcheries using bacteriophages,” Aquaculture, vol. 268, no. 1, pp. 288-292, Aug. 2007, doi: 10.1016/j.aquaculture.2007.04.049.
[14] B. V. T. Truong, C. L. T. Nguyen, B. N. H. Le, H. K. T. Phan, and H. A. Pham, “Effective application of bacteriophages in the treatment of diseases caused by Vibrio parahaemolyticus on white leg shrimp (Litopenaeus vannamei),” Science and technology journal of agriculture and rural development, vol. 2, pp. 163-169, 2021.
[15] B. K. Chan, P. E. Turner, S. Kim, H. R. Mojibian, J. A. Elefteriades, and D. Narayan, “Phage treatment of an aortic graft infected with Pseudomonas aeruginosa,” Evolution, Medicine, and Public Health, vol. 2018, no. 1, pp. 60-66, Jan. 2018, doi: 10.1093/emph/eoy005.
[16] A. M. Kropinski, A. Mazzocco, T. E. Waddell, E. Lingohr, and R. P. Johnson, “Enumeration of Bacteriophages by Double Agar Overlay Plaque Assay,” in Bacteriophages: Methods and Protocols, Volume 1: Isolation, Characterization, and Interactions, M. R. J. Clokie and A. M. Kropinski, Eds., in Methods in Molecular BiologyTM., Totowa, NJ: Humana Press, 2009, pp. 69-76, doi: 10.1007/978-1-60327-164-6_7.
[17] R. Luzon-Hidalgo, V. A. Risso, A. Delgado, B. Ibarra-Molero, and J. M. Sanchez-Ruiz, “A protocol to study bacteriophage adaptation to new hosts,” STAR Protoc, vol. 2, no. 3, Aug. 2021, Art. no. 100784, doi: 10.1016/j.xpro.2021.100784.
[18] Y. Shang et al., “Isolation and Characterization of a Novel Salmonella Phage vB_SalP_TR2,” Frontiers in Microbiology, vol. 12, 2021. [Online]. Available: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmicb.2021.664810. [Accessed Jan. 31, 2023].
[19] S. Hagens and M. J. Loessner, “Bacteriophage for Biocontrol of Foodborne Pathogens: Calculations and Considerations,” Current Pharmaceutical Biotechnology, vol. 11, no. 1, pp. 58-68, Jan. 2010, doi: 10.2174/138920110790725429.
[20] B. Sui, L. Han, H. Ren, W. Liu, and C. Zhang, “A Novel Polyvalent Bacteriophage vB_EcoM_swi3 Infects Pathogenic Escherichia coli and Salmonella enteritidis,” Frontiers in Microbiology, vol. 12, 2021. [Online]. Available: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmicb.2021.649673. [Accessed Sep. 05, 2023].
[21] S.-H. Kim, D. E. Adeyemi, and M.-K. Park, “Characterization of a New and Efficient Polyvalent Phage Infecting E. coli O157:H7, Salmonella spp., and Shigella sonnei,” Microorganisms, vol. 9, no. 10, Oct. 2021, Art. no. 10, doi: 10.3390/microorganisms9102105.
[22] P. Yu, J. Mathieu, M. Li, Z. Dai, and P. J. J. Alvarez, “Isolation of Polyvalent Bacteriophages by Sequential Multiple-Host Approaches,” Applied and Environmental Microbiology, vol. 82, no. 3, pp. 808-815, Feb. 2016, doi: 10.1128/AEM.02382-15.
[23] K. Malki et al., “Bacteriophages isolated from Lake Michigan demonstrate broad host-range across several bacterial phyla,” Virology Journal, vol. 12, no. 1, p. 164, Oct. 2015, doi: 10.1186/s12985-015-0395-0.
[24] N. K. El-Dougdoug et al., “Control of Salmonella Newport on cherry tomato using a cocktail of lytic bacteriophages,” Int J Food Microbiol, vol. 293, pp. 60-71, Mar. 2019, doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2019.01.003.
[25] L. Jiang, R. Zheng, Q. Sun, and C. Li, “Isolation, characterization, and application of Salmonella paratyphi phage KM16 against Salmonella paratyphi biofilm,” Biofouling, vol. 37, no. 3, pp. 276-288, Mar. 2021, doi: 10.1080/08927014.2021.1900130.
[26] S. Cao et al., “Isolation and identification of the broad-spectrum high-efficiency phage vB_SalP_LDW16 and its therapeutic application in chickens,” BMC Vet Res, vol. 18, p. 386, Nov. 2022, doi: 10.1186/s12917-022-03490-3.
[27] Y. Liu et al., “Complete genomic sequence of bacteriophage P23: a novel Vibrio phage isolated from the Yellow Sea, China,” Virus Genes, vol. 55, no. 6, pp. 834-842, Dec. 2019, doi: 10.1007/s11262-019-01699-3.
[28] M. Yang et al., “Isolation and Characterization of the Novel Phages vB_VpS_BA3 and vB_VpS_CA8 for Lysing Vibrio parahaemolyticus,” Frontiers in Microbiology, vol. 11, 2020. [Online]. Available: https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fmicb.2020.00259. [Accessed: Nov. 29, 2022].
[29] Y. Ren et al., “Isolation and characterization of a novel phage vB_ValP_VA-RY-3 infecting Vibrio alginolyticus,” Virus Research, vol. 322, Dec. 2022, Art. no. 198945, doi: 10.1016/j.virusres.2022.198945.DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.8897
Các bài báo tham chiếu
- Hiện tại không có bài báo tham chiếu