ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG BẢO QUẢN VÀ THỜI GIAN BẢO QUẢN ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG DÊ

Nguyễn Lâm Khánh Duy; Bùi Thanh Liêm; Ngô Phạm Nhật Vy; Trần Thị Thanh Khương

doi:10.34238/tnu-jst.9186

ẢNH HƯỞNG CỦA MÔI TRƯỜNG BẢO QUẢN VÀ THỜI GIAN BẢO QUẢN ĐẾN CHẤT LƯỢNG TINH TRÙNG DÊ

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 11/11/23 Ngày hoàn thiện: 05/03/24 Ngày đăng: 11/03/24

Các tác giả

1. Nguyễn Lâm Khánh Duy, Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
2. Bùi Thanh Liêm, Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
3. Ngô Phạm Nhật Vy, Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ
4. Trần Thị Thanh Khương , Viện Công nghệ Sinh học và Thực phẩm - Đại học Cần Thơ

Tóm tắt

Môi trường bảo quản dạng lỏng và thời gian bảo quản đóng vai trò quan trọng trong việc duy trì và ổn định chất lượng tinh trùng. Mục tiêu của nghiên cứu là xác định nguồn carbon thích hợp và thời gian tối ưu để bảo quản tinh trùng tốt nhất. Nghiên cứu đã đánh giá vai trò của ba nguồn carbon khác nhau trong môi trường bảo quản: glucose, fructose và sucrose. Thí nghiệm được thiết kế bao gồm 6 nghiệm thức tương ứng với 6 loại môi trường bảo quản, mỗi nghiệm thức lặp lại 8 lần. Mẫu tinh dịch sau khi thu nhận được pha loãng với môi trường bảo quản theo tỷ lệ 1:10, sau đó bảo quản mẫu ở nhiệt độ 15°C. Việc đánh giá chất lượng theo các mốc thời gian cụ thể là 0 giờ, 6 giờ, 12 giờ, 24 giờ, 48 giờ và 72 giờ. Kết quả nghiên cứu cho thấy chất lượng tinh trùng giảm dần theo thời gian bảo quản. Đánh giá tinh trùng dưới kính hiển vi cho thấy, sau 72 giờ bảo quản, tinh trùng dê có chất lượng tốt nhất được ghi nhận trên môi trường Tris Citrate Sucrose-2. Cụ thể, tỷ lệ di động tổng số là 71,61%, tỷ lệ di động tiến tới là 64,91%, tỷ lệ sống của tinh trùng là 74,50% và độ nguyên vẹn của màng tinh trùng là 57,59%. Từ nghiên cứu này cho thấy sucrose cải thiện chất lượng tinh trùng tốt hơn glucose và fructose, môi trường Tris Citrate Sucrose-2 giúp giữ chất lượng tinh trùng tốt nhất và thời gian bảo quản thích hợp là 72 giờ.

Từ khóa

Dê; Môi trường bảo quản; Nguồn carbon; Tinh dịch; Tinh trùng

Toàn văn:

PDF (English)

Tài liệu tham khảo

[1] T. N. Bui, Overview of livestock production and consumption in Vietnam, Goat production and marketing systems from Laos to Vietnam, 2022.

[2] M. Ali, I. R. K. Muhammad, A. Mustansar, H. Nasir, A. Waqas, M. Imran, and Z. T Muhammad, “Optimal timing of artificial insemination and changes in vaginal mucous characteristics relative to the onset of standing estrus in Beetal goats,” Animal Reproduction Science, vol. 213, February 2020, Art. no. 1062492020.

[3] S. Sadeghi, R. D. Gallego, B. García-Colomer, E. A. Gómez, J. L. Yániz, J. Gosálvez, C. López-Fernández, and M. A. Silvestre, “Effect of Sperm Concentration and Storage Temperature on Goat Spermatozoa during Liquid Storage,” Biology (Basel), vol. 9, no. 9, p. 300, Sep. 2020.

[4] P. Sengupta, D. Durairajanayagam, and A. Agarwal, “Fuel/Energy Sources of Spermatozoa,” in Male Infertility, S. Parekattil, S. Esteves, A. Agarwal, Eds. Springer: Cham, 2020, pp. 323-335.

[5] S. S. du Plessis, A. Agarwal, G. Mohanty, and M. van der Linde, “Oxidative phosphorylation versus glycolysis: what fuel do spermatozoa use?” Asian Journal of Andrology, vol. 17, no. 2, pp. 230-235, March-April. 2015.

[6] Z. Gibb and R. Aitken, “Physiological and Pathological Aspects of Sperm Metabolism,” in The Sperm Cell: Production, Maturation, Fertilization, Regeneration, R. Yanagimachi (Author) and C. De Jonge & C. Barratt, Eds. Cambridge: Cambridge University Press, 2017, pp. 109-125.

[7] C. A. Province, E. L. Squires, B. W. Pickett, and R. P Amann, “Cooling Rates, Preservation Temperatures and Fertility of Extended Equine Spermatozoa,” Theriogenology, vol. 23, no. 6, pp. 925-934, June 1985.

[8] T. T. Ngo, T. T. Chi, V. H. Yen, N. T. Dung, T. T. L. Chi, and S. T. Long, “Effects of adding chicken egg yolk and caffeine in extender on the quality of goat semen,” Vietnam Journal of Agricultural Science, vol. 18, no. 10, pp. 870-878, 2020.

[9] H. Paulenz, L. Söderquist, R. Pérez-Pé, and K. A. Berg, “Effect of Different Extenders and Preservation Temperatures on Sperm Viability of Liquid Ram Semen,” Theriogenology, vol. 57, no. 2, pp. 823-836, January 2002.

[10] R. I. El-Sheshtawy, G. A. Sisy, and W. S. El-Nattat, “Effects of different concentrations of sucrose or trehalose on the post-thawing quality of cattle bull semen,” Asian Pacific Journal of Reproduction, vol. 4, no. 1, pp. 26-31, March 2015.

[11] NRC, “National research council: nutrient requirements of small ruminants,” National Academy Press, Washington D.C., 2007.

[12] World Health Organization, WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen, 5th ed, World Health Organization, ‎2010‎.

[13] F. G. Fumuso, S. M. Giulianob, M. G. Chavesa, D. M. Neilda, M. H. Miragayaa, M. C. Gambarottac, and M. I. Carreteroa, “Seminal plasma affects the survival rate and motility pattern of raw llama spermatozoa,” Animal Reproduction Science, vol. 192, pp. 99-106, May 2018.

[14] A. Agha-Rahimi, M. Khalili, A. Nabi, and S. Ashourzadeh, “Vitrification is not superior to rapid freezing of normozoospermic spermatozoa: effects on sperm parameters, DNA fragmentation and hyaluronan binding,” Reprod Biomed Online, vol. 28, no. 3, pp. 352-358, March 2014.

[15] S. Ramu and R. S. Jeyendran, “The hypo-osmotic swelling test for evaluation of sperm membrane integrity,” Methods in Molecular Biology, vol. 927, pp. 21-25, 2013.

[16] E. Gororo, P. T. Zulu, F. P. Chatiza, and C. Mhuka, “Effects of different extenders and preservation temperatures on longevity of small East African goat (Capra hircus) semen,” Small Ruminant Research, vol. 175, pp. 83-89, June 2019.

[17] R. J Aitken, “Reactive oxygen species as mediators of sperm capacitation and pathological damage,” Molecular Reproduction and Development, vol. 84, no. 10 pp. 1039-1052, October 2017.

[18] J. Li, I. Barranco, A. Tvarijonaviciute, M. F. Molina, E. A. Martinez, H. Rodriguez-Martinez, I. Parrilla, and J. Roca, “Seminal plasma antioxidants are directly involved in boar sperm cryotolerance,” Theriogenology, vol. 107, pp. 27-35, February 2018.

[19] H. X. Khoi, K. Shimizu, Y. Yoneda, I. Minagawa, Y. Abe, Y. Kuwabara, T. Sasanami, and T. Kohsaka, “Monitoring the reactive oxygen species in spermatozoa during liquid storage of boar semen and its correlation with sperm motility, free thiol content and seasonality,” Andrologia, vol. 53, no. 11, December 2021, Art. no. e142372021.

[20] F. Ren, Q. Fang, T. Y. Feng, Y. Li, Y. H. Wang, H. J. Zhu, and J. H. Hu, “Lycium barbarum and Laminaria japonica polysaccharides improve Cashmere goat sperm quality and fertility rate after cryopreservation,” Theriogenology, vol. 129, pp. 29-36, April 2019.

[21] Y. M. Zhao, L. P. Gao, H. L. Zhang, J. X. Guo, and P. P. Guo, “Grape seed proanthocyanidin extract prevents ddp-induced testicular toxicity in rats,” Food Funct, vol. 5, no. 3, pp. 605-611, March 2014.

[22] L. Fraser, M. Gorszczaruk, M. Lecewicz, and J. Strzezek, “Age-related changes and seasonal variations in boar sperm metabolism during liquid preservation at 5° and 16 °C,” Journal of Animal and Feed Sciences, vol. 12, no. 4, pp. 803-811, October 2003.

[23] L. Fraser, M. Lecewicz, and J. Strzezek, “Fluorometric assessments of viability and mitochondrial status of boar spermatozoa following liquid preservation,” Polish Journal of Veterinary Sciences, vol. 5, no. 2, pp. 85-92, 2002.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.9186

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ