HIỆU QUẢ CHẤT CHIẾT THẢO DƯỢC PHÒNG NGỪA BỆNH GAN THẬN MỦ Ở CÁ TRA (Pangasianodon hypophthalmus) CỦA CHẤT CHIẾT THẢO DƯỢC

Nguyễn Thị Trúc Linh; Hồng Mộng Huyền

doi:10.34238/tnu-jst.9563

HIỆU QUẢ CHẤT CHIẾT THẢO DƯỢC PHÒNG NGỪA BỆNH GAN THẬN MỦ Ở CÁ TRA (Pangasianodon hypophthalmus) CỦA CHẤT CHIẾT THẢO DƯỢC

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 07/01/24 Ngày hoàn thiện: 25/03/24 Ngày đăng: 05/04/24

Các tác giả

1. Nguyễn Thị Trúc Linh , Trường Đại học Trà vinh
2. Hồng Mộng Huyền, Trường Đại học Kiên Giang

Tóm tắt

Nghiên cứu được thực hiện nhằm khảo sát hoạt tính kháng vi khuẩn Edwardsiella ictaluri của các chất chiết thảo dược. Cụ thể gồm có lá duối (Streblus asper), lá kim quýt (Triphasia trifolia), lá keo dậu (Leucaena leucocephala), lá bằng lăng (Lagerstroemia speciosa), lá đinh lăng (Polyscias fruticosa), lá diếc (Limnophila aromatica), lá khế (Averrhoa carambola), lá sa kê (Artocarpus altilis), lá ngà voi (Sansevireria Cylindrica) và lá lẻ bạn (Tradescantia discolor). Nghiên cứu đánh giá hiệu quả chất chiết thảo dược thông qua các thử nhiệm in-vitro và in-vivo đối với vi khuẩn E. ictauri gây bệnh gan thân mũ trên cá tra (Pangasianodon hypophthalmus). Kết quả cho thấy 7/10 chất chiết thảo dược có hoạt tính kháng E. ictaluri, trong đó chất chiết keo dậu có hoạt tính cao nhất với đường kính vòng vô trùng 35,67 mm; MIC, MBC tương ứng 0,78 mg/mL và 2,34 mg/mL. Bổ sung chất chiết keo dậu 1% vào thức ăn sẽ hỗ trợ cá tra cải thiện tăng trưởng và tăng hoạt tính kháng khuẩn huyết thanh đối với vi khuẩn E. ictaluri. Kết quả này có thể được xem xét để nghiên cứu sâu hơn về sử dụng dược liệu như một phương pháp thay thế kháng sinh chống nhiễm bệnh do vi khuẩn trên cá tra.

Từ khóa

Cá tra; Edwardsiella ictaluri; Chất chiết thảo dược; Hoạt tính kháng khuẩn; Keo dậu

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo

[1] M. Crumlish, T. D. Tran, J. F. Turnbull, T. N. N. Nguyen, and H. W. Ferguson, “Identification of Edwardsiella ictaluri from diseased freshwater catfish, Pangasius hypophthalmus (Sauvage), cultured in the Mekong Delta, Vietnam,” Journal of Fish Diseases, vol. 25, no. 12, pp. 733-736, 2002.

[2 T. D. Tran, F. Haesebrouck, P. Sorgeloos, M. Baele, A. Decostere, and N. A. Tuan, “Antimicrobial resistance of Edwardsiella ictaluri isolates from natural outbreaks of bacillary necrosis of Pangasianodon hypophthalmus,” Can Tho University Journal of Science, vol. 15a, pp. 162-171, 2010.

[3] R. Harikrishnan, C. Balasundaram, and M. S. Heo, “Impact of plant products on innate and adaptive immune system of cultured finfish and shellfish,” Aquaculture, vol. 317, no. 1-4, pp. 1-15, 2011.

[4] S. Direkbusarakom, “Application of medicinal herbs to aquaculture in Asia,” Walailak Journal of Science and Technology, vol. 1, no. 1, pp. 7-14, 2004.

[5] K. D. Huynh, “Antibacterial activity of some medicinal plants in the Mekong Delta of Viet Nam against common fish pathogens,” Can Tho University Journal of Science, vol. 15b, pp. 222-229, 2010.

[6] T. B. H. Bui and T. T. H. Tran, “Effects of Pomegranate (Punica granatum) extract on growth performance and immune responses of striped catfish (Pangasianodon hypophthalmus),” Can Tho University Journal of Science, vol. 56 (Aquaculture), pp. 161-169, 2020.

[7] M. Reverter, N. Tapissier‐Bontemps, S. Sarter, P. Sasal, and D. Caruso, “Moving towards more sustainable aquaculture practices: a meta‐analysis on the potential of plant‐enriched diets to improve fish growth, immunity and disease resistance,” Reviews in Aquaculture, vol. 13, no. 1, pp. 537-555, 2021.

[8] T. T. L. Nguyen, T. T. H. Luu, T. T. Nguyen, V. D. Pham, T. N. Nguyen, Q. P. Truong, and M. H. Hong, “A comprehensive study in efficacy of Vietnamese herbal extracts on whiteleg shrimp (Penaeus vannamei) against Vibrio parahaemolyticus causing acute hepatopancreatic necrosis disease (AHPND),” Israeli Journal of Aquaculture – Bamidgeh, vol. 75, no. 2, pp. 1-22, 2023.

[9] M. H. Hong, T. H. Vo, and T. T. H. Tran, “Effects Ricinus communis L. extraction on survival rate, growth performance of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei),” TNU Journal of Science and Technology, vol. 228, no. 13, pp. 73-81, 2023.

[10] V. H. Nguyen, “The use of medicinal plants as immunostimulants in aquaculture: A review,” Aquaculture, vol. 446, pp. 88-96, 2015.

[11] M. Reverter, N. Tapissier-Bontemps, P. Sasal, and D. Saulnier, “Use of medicinal plants in aquaculture,” Diagnosis and Control of Diseases of Fish and Shellfish, vol. 9, pp. 223-261, 2017.

[12] K. P. P. Nguyen, Fractionation Method for Organic Compounds. Viet Nam National University Ho Chi Minh Press, 2007, p. 528.

[13] S. Abutbul, A. Golan-Goldhirsh, O. Barazani, and D. Zilberg, “Use of Rosmarinus officinalis as a treatment against Streptococcus iniae in tilapia (Oreochromis sp.),” Aquaculture, vol. 238, no. 1-4, pp. 97-105, 2004.

[14] M. Najiah, Z. Nadirah, S. Arief, L. W. Zahrol, A. D. Tee, Ranzi, and R. J. Aida, “Antibacterial activity of Malaysian edible herbs extracts on fish pathogenic bacteria,” Research Journal of Medicinal Plant, vol. 5, no. 6, pp. 772-778, 2011.

[15] J. Oonmetta-aree, T. Suzuki, P. Gasaluck, and G. Eumkeb, “Antimicrobial properties and action of galangal (Alpinia galanga Linn.) on Staphylococcus aureus,” LWT-Food Sci Technol., vol. 39, no. 10, pp. 1214-1220, 2006.

[16] A. M. M. Abd-El-Rhman, “Antagonism of Aeromonas hydrophila by propolis and its effect on the performance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus,” Fish & shellfish immunology, vol. 27, no. 3, pp. 454-459, 2009.

[17] V. Lorian, Eds., Antibiotics in laboratory medicine. Disk susceptibility test, Fourth Edition. London: Williams and Walkins Awaverly, p.1, 1998.

[18] H. Novita, A. D. Novitaningrum, B. D. Madusari, M. F. I. Nugraha, M. A. Rajamuddin, R. Yunita, and W. Enggarini, “Antibacterial activity of Anadendrum microstachyum and Selaginella plana against two pathogenic bacteria (Edwardsiella ictaluri and Streptococcus agalactiae) causing freshwater fish diseases,” IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, vol. 535, no. 1, p. 012025, 2020.

[19] H. Syawal, A. R. Siregar, Y. Yuharmen, and I. Effendi, “Phytochemical analysis and inhibitory effect of Bruguiera gymnorrhiza leaf extract on Aeromonas salmonicida, Aeromonas hydrophila and Edwardsiella ictalurid,” Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation, vol. 14, no. 4, pp. 1926-1933, 2021.

[20] T. M. D. Tran, T. T. Nguyen, and T. T. H. Tran, “In vitro antibacterial activity of several plant extracts against fish bacterial pathogens,” Can Tho University Journal of Science, vol. 13, pp. 106-112, 2020.

[21] M. M. Cowan, “Plant products as antimicrobial agents,” Clinical Microbiology Reviews, vol. 12, no. 4, pp. 564-582, 1999.

[22] N. Canillac and A. Mourey, “Antibacterial activity of the essential oil of Picea excelsa on Listeria, Staphylococcus aureus and coliform bacteria,” Food Microbiology, vol. 18, no. 3, pp. 261-268, 2001.

[23] M. Reverter, N. Bontemps, D. Lecchini, B. Banaigs, and P. Sasal, “Use of plant extracts in fish aquaculture as an alternative to chemotherapy: current status and future perspectives,” Aquaculture, vol. 433, pp. 50-61, 2024.

[24] C. Bulfon, D. Volpatti, and M. Galeotti, “Current research on the use of plant‐derived products in farmed fish,” Aquaculture Research, vol. 46, no. 3, pp. 513-551, 2015.

[25] M. Abdel-Tawwab, F. Samir, A. S. Abd El-Naby, and M. N. Monier, “Antioxidative and immunostimulatory effect of dietary cinnamon nanoparticles on the performance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) and its susceptibility to hypoxia stress and Aeromonas hydrophila infection,” Fish Shellfsh Immunol., vol. 74, pp. 19-25, 2018.

[26] M. Tan and Z. Sun, “Dietary dandelion extract improved growth performance, immunity, intestinal morphology and microbiota composition of golden pompano Trachinotus ovatus,” Aquacult. Rep., vol. 18, 2020, Art. no. 100491.

[27] D. L. Chowdhury, N. P. Sahu, P. Sardar, A. D. Deo, M. L. Bedekar, L. P. Singha, and M. L. Maiti, “Feeding turmeric in combination with ginger or garlic enhances the digestive enzyme activities, growth and immunity in Labeo rohita fingerlings,” Anim. Feed Sci. Technol., vol. 277, 2021, Art. no.114964.

[28] C. Purbomartono and A. Isnansetyo, “Improving resistance against Aeromonas hydrophila and growth performance by oral administration of fucoidan from Padina boergesenii Allender & Kraft, 1983 in catfish (Clarias sp.),” Aquaculture, Aquarium Conservation & Legislation, vol. 16, no. 3, pp. 1294-1304, 2023.

[29] R. J. Jones, “The value of Leucaena leucocephala as a feed for ruminants in the tropics,” World Anim. Rev., vol. 31, pp. 13-23, 1979.

[30] J. P. F. D’Mello and T. Acamovic, “Leucaena leucocephala in poultry nutrition, A review,” Animal Feed Science and Technology, vol. 26, pp. 1-28, 1989.

[31] V. K. Verma, K. V. Rani, N. Sehgal, and O. Prakash, “Immunostimulatory effect of artificial feed supplemented with indigenous plants on Clarias gariepinus against Aeromonas hydrophila,” Fish Shellfish Immunol, vol. 35, pp. 1924-1931, 2013.

[32] V. K. Verma, K. V. Rani, N. Sehgal, and O. Prakash, “Enhanced disease resistance in the Indian snakehead, Channa punctata against Aeromonas hydrophila, through 5 % feed 523 supplementation with F. benghalensis (aerial root) and L. leucocephala (pod seed),” Aquacult. Int., vol. 23, no. 5, pp. 1127-1140, 2015.

DOI: https://doi.org/10.34238/tnu-jst.9563

Các bài báo tham chiếu

Hiện tại không có bài báo tham chiếu



Ghi nhớ