ỨNG DỤNG VI KHUẨN LACTIC TRONG SẢN XUẤT THỬ NGHIỆM NƯỚC TẨY RỬA SINH HỌC TỪ NƯỚC CHUA TÀU HỦ | Châu | TNU Journal of Science and Technology

ỨNG DỤNG VI KHUẨN LACTIC TRONG SẢN XUẤT THỬ NGHIỆM NƯỚC TẨY RỬA SINH HỌC TỪ NƯỚC CHUA TÀU HỦ

Thông tin bài báo

Ngày nhận bài: 20/11/19                Ngày hoàn thiện: 12/06/20                Ngày đăng: 10/07/20

Các tác giả

1. Lưu Minh Châu, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
2. Trần Thị Thảo Nguyên, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
3. Lý Thị Thùy Duyên, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
4. Trần Thị Xuân Nghi, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
5. Lê Quốc Việt, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
6. Bùi Hoàng Đăng Long, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
7. Nguyễn Ngọc Thạnh, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ
8. Huỳnh Xuân Phong Email to author, Viện Nghiên cứu và Phát triển Công nghệ Sinh học - Đại học Cần Thơ

Tóm tắt


Nghiên cứu này nhằm sản xuất thử nghiệm nước tẩy rửa sinh học từ quá trình lên men acid lactic bằng nước chua tàu hủ. Mười chủng vi khuẩn lactic được thử nghiệm lên men acid lactic ở 37°C và được khảo sát khả năng kháng khuẩn với chủng chỉ thị là Bacillus subtilis. Điều kiện tối ưu cho quá trình lên men acid lactic được khảo sát và dịch lên men được kiểm tra khả năng tẩy rửa carbohydrate, protein và lipid. Kết quả có 6 chủng (L. casei L9, L. acidophilus L11 và L. plantarum (L26, L30, L37 và L52)) được tuyển chọn do có khả năng lên men tốt với hàm lượng acid lactic trong khoảng 2,78-3,08 g/L. Sáu chủng này đều có đặc tính kháng khuẩn chỉ thị B. subtilis. Trong đó, chủng L. plantarum L30 có khả năng tạo vùng kháng khuẩn cao nhất, đạt 16,33 mm. Điều kiện thích hợp cho sản xuất acid lactic từ nước chua tàu hủ của chủng L30 được xác định với hàm lượng đường 7,73% (w/v), pH 5,54 và mật số giống chủng 107 tế bào/mL với hàm lượng acid lactic đạt 10,03 g/L và 10,39 g/L ở quy mô 100 mL và 1 L. Dịch lên men ở nồng độ acid lactic 1,0% (w/v) có khả năng tẩy rửa carbohydrate, protein và lipid với hiệu suất lần lượt là 96,49%, 93,31% và 90,91%. Hàm lượng chất hoạt động bề mặt phù hợp cho khả năng tẩy rửa được xác định ở 10% CAPB với hiệu suất tẩy rửa carbohydrate, protein và lipid đạt lần lượt là 97,91% , 98,08%, 93,00%.


Từ khóa


Khả năng kháng khuẩn; lên men acid lactic; nước chua tàu hủ; nước tẩy rửa sinh học; vi khuẩn lactic.

Toàn văn:

PDF

Tài liệu tham khảo


[1]. D. L. Nguyen, Microbial Technology, Vol. 2, Industrial Microbiology, Ho Chi Minh city National University Publishing House, 2002.

[2]. Y. Sudiyani, S. Alawiyah, Y. Anita, and I. B. Adilina, “Characterization of waste water from tofu industry,” International Conference on Chemical Sciences, Yogyakarta, Indonesia, 2007.

[3]. Widayat, Philia, John, Wibisono, and Jessica, “Cultivation of microalgae Chlorella sp. on fresh water and waste water of tofu industry,” The 2nd International Conference on Energy, Environmental and Information System (ICENIS 2017), Semarang, Indonesia, 2018.

[4]. N. N. T. Huynh, T. P. D. Ngo, X. P. Huynh, K. Sonomoto, T. Zendo, and H. D. L. Bui, “Selection of thermotolerant lactic acid bacteria producing high antibacterial activity and production of biomass from tofu sour liquid,” Can Tho University Journal of Science, vol. 7, pp. 51-57, 2017.

[5]. T. M. Le, T. H. Nguyen, T. T. Pham, T. H. Nguyen, and T. L. C. Le, Analytical Methods in Fermentation Technology. Science and Technics Publishing House, Hanoi, Vietnam, 2009.

[6]. H. Annuk, J. Shchepetova, T. Kullisaar, E. Songisepp, M. Zilmer, and M. Mikelsaar, “Characterization of intestinal lactobacilli as putative probiotic candidates,” Journal of Applied Microbiology, vol. 94, no. 3, pp. 403-412, 2003.

[7]. M. DuBois, K. A. Gilles, J. K. Hamilton, P. A. Rebers, and F. Smith, “Colorimetric method for determination of sugars and related substances,” Analytical Chemistry, vol. 28, no. 3, pp. 350-356, 1956.

[8]. M. M. Bradford, “A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding,” Analytical Biochemistry, vol. 72, no. 1-2, pp. 248-254, 1976.

[9]. F. A. Atiku, I. M. Fakai, A. A. Wara, A. U. Birnin-Yauri, and M. A. Musa, “Production of soap using locally available alkaline extract from millet stalk: A study on physical and chemical properties of soap,” International Journal of Advanced Research in Chemical Science, vol. 1, no. 7, pp. 1-7, 2014.

[10]. F. Leroy, and L. De Vuyst, “Growth of the bacteriocin-producing Lactobacillus sakei strain CTC 494 in MRS broth is strongly reduced due to nutrient exhaustion: a nutrient depletion model for the growth of lactic acid bacteria,” American Society for Microbiology Journals, vol. 67, no. 10, pp. 4407-4413, 2001.

[11]. S. J. W. H. O. Elferink, J. Krooneman, J. C. Gottschal, S. F. Spoelstra, F. Faber, and F. Driehuis, “Anaerobic conversion of lactic acid to acetic acid and 1,2-propanediol by Lactobacillus buchneri,Applied and Environmental Microbiology, vol. 67, no. 1, pp. 125-132, 2001.

[12]. A. C. Ouwehand, and S. Vesterlund, “Antimicrobial components from acid lactic bacteria,” In “Lactic Acid Bacteria: Microbiological and Functional Aspects”, Edited by S. Salminen, A. V. Wright, CRC Press, 2004.

[13]. M. Lertcanawanichakul, “Isolation and selection of anti-candida albicans producing lactic acid bacteria,” Walailak Journal Science & Technology, vol. 2, no. 2, pp. 179-187, 2005.

[14]. K. Khalisanni, “An overview of lactic acid bacteria,” International Journal of Bioscience, vol. 1, no. 3, pp. 1-13, 2011.

[15]. T. P. D. Ngo, N. T. Nguyen, X. P. Huynh, H. D. L. Bui, and N. P. T. Hoang, “Selection of thermotolerant lactic acid bacteria and the application in lactic acid fermentation,” Vietnam Journal of Science, Technology and Engineering, vol. 14, no. 3B, pp. 58-64, 2017.

[16]. M. N. Dang, and Q. T. Nguyen., “A study on Lactic acid fermentation of sugar palm (Arenga Pinnata) sap by Lactobacillus casei,Science & Technology Development Journal, vol. 17, no. 3, pp. 65-71, 2014.

[17]. S. R. Kadam, S. S. Patil, K. B. Bastawde, J. M. Khire, and D. V. Gokhale, “Improve stress of Lactobacillus delbrueckii NCIM 2365 to produce lactic acid,” Biochemical Process, vol. 41, pp. 120-126, 2006.

[18]. D. Lichtenberg, H. Ahyayauch, and F. M. Gõni, “The mechanism of detergent solubilization of lipid bilayers,” Biophysical Journal, vol. 105, no. 2, pp. 289-299, 2013.

[19] A. Gholami, M. Golestaneh, and Z. Andalib, “A new method for determination of cocami-dopropyl betaine synthesized from coconut oil through spectral shift of Eriochrome Black T,” Spectrochimica Acta Part A: Molecular and Biomolecular Spectroscopy, vol. 192, pp. 122-127, 2018.

[20] Ministry of Science and Technology, “Vietnam Standard TCVN 6971:2001 - Synthetic detergent for kitchen”, Hanoi, 2001.


Các bài báo tham chiếu

  • Hiện tại không có bài báo tham chiếu
Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Thái Nguyên
Phòng 408, 409 - Tòa nhà Điều hành - Đại học Thái Nguyên
Phường Tân Thịnh - Thành phố Thái Nguyên
Điện thoại: 0208 3840 288 - E-mail: jst@tnu.edu.vn
Phát triển trên nền tảng Open Journal Systems
©2018 All Rights Reserved